李志坤,祝 瑋,王晗婕,鄭雪峰,郭國慶,張吉鳳
(暨南大學基礎(chǔ)醫(yī)學與公共衛(wèi)生學院解剖學系,認知與發(fā)育障礙神經(jīng)科學創(chuàng)新實驗室,廣東廣州510632)
SPAST是遺傳性痙攣性截癱(hereditary spastic paraplegia,HSP)的致病基因,約有40%的HSP系由SPAST基因突變所致[1-2]。單純型HSP患者神經(jīng)系統(tǒng)的主要病理改變?yōu)槠べ|(zhì)脊髓束的退行性變,表現(xiàn)為雙下肢的痙攣性癱瘓[3];而復(fù)雜型HSP常伴有認知功能異常,包括學習記憶減退和注意力缺陷等不同程度的認知障礙[4-5]。認知功能障礙發(fā)生的原因是什么,是否與SPAST編碼的spastin蛋白的功能缺失有關(guān)?spastin是AAA型ATP酶活性的蛋白,主要功能是把微管切割成短的片段,以釋放微管的動力[6],除了AAA型ATP酶結(jié)構(gòu)域,spastin的N端還具有一個疏水的HR結(jié)構(gòu)域,以及MIT和MTBD結(jié)構(gòu)域,MTBD負責把spastin錨定于微管,而MIT結(jié)構(gòu)域則參與細胞內(nèi)膜管的形成和物質(zhì)的轉(zhuǎn)運[7]。我們前期研究顯示,spastin的MIT結(jié)構(gòu)域能夠與AMPA受體結(jié)合,參與谷氨酸能受體的轉(zhuǎn)運[8],從而改變培養(yǎng)神經(jīng)元的樹突棘可塑性,提示spastin介導(dǎo)的AMPA受體轉(zhuǎn)運功能可能與認知功能障礙有關(guān)。為了驗證我們的推測,本研究特意干擾小鼠海馬部位spastin蛋白的表達,用膜片鉗技術(shù)檢測突觸傳遞的功能,并評估小鼠的行為學表現(xiàn),借以明確spastin是否參與小鼠認知功能的調(diào)控。
SPF級C57BL/6小鼠,雄性,4周齡,15~17 g,購于遼寧長生生物技術(shù)股份有限公司,許可證號:SYXK(遼)2020-0001。分籠飼養(yǎng),自由飲水食,控制環(huán)境溫度(24±2)℃,相對濕度(50±10)%,晝夜交替時間為8:00與20:00。動物實驗均遵照《中華人民共和國實驗動物管理條例》,并通過暨南大學倫理委員會審查批準。
小鼠腦立體定位注射儀(瑞沃德);微量注射泵(KDscientific);冰凍切片機CM1860和振動切片機1200s(Leica);動物實驗行為分析系統(tǒng)(Clever Sys Inc);雙極同心圓刺激電極(FHC);拉制儀P97及Integrated Patch Amplifier(Shutter);正 置 顯 微 鏡Eclipse FN1(Nikon);數(shù)字切片掃描儀(Pannoramic)。spastinⅠ抗、GADPHⅠ抗及河豚毒素(tetrodotoxin,TTX)購 自Sigma;辣 根 過 氧 化 物 酶(horseradish peroxidase,HRP)標記的Ⅱ抗(ABclonal);苦毒寧(picrotoxin,PTX)購自Tocris;高爾基染液試劑盒(ZCIBIO);重組腺相關(guān)病毒(recombinant adeno-associated virus,rAAV)載 體rAAV-U6-shSpastin-CMVEGFP-pA和rAAV-U6-Scramble-CMV-EGFP-pA(樞密科技有限公司)。
3.1 實驗分組4周齡雄性C57BL/6小鼠60只,體重15~17 g,隨機分為實驗(sh-Spastin)組和對照(control)組,每組30只。
3.2 海馬定向注射參照Keiser等[9]實驗室病毒注射方法。首先用異氟烷深度麻醉C57BL/6小鼠,固定于腦立體定位儀,參照小鼠大腦立體定位圖譜確定海馬CA1的位置,前囟(bregma)為原點(0,0,0),在bregma后2.4 mm(AP:-2.4 mm),左、各1.6 mm(ML:±1.6 mm),用1 mm直徑的顱骨鉆小心開骨窗,然后用消毒過的針頭輕輕挑開硬腦膜,使用微量注射泵作微量注射,深度為-1.65 mm(DV:-1.65 mm),注射前將微量注射器下降至-1.70 mm并停留1 min,再上抬至-1.65 mm,實驗組注射rAAV-U6-shSpastin-CMV-EGFP-pA,對照組注射rAAV-U6-Scramble-CMV-EGFP-pA,注射量為0.3μL,速度為0.03μL/min,注射完畢后繼續(xù)留針10 min,待病毒充分擴散后緩慢拔出,用骨蠟封閉骨窗,消毒縫合置小鼠于37℃電熱毯上至蘇醒。
3.3 Western blot參照本實驗室Western blot方法[10]。注射病毒載體21 d后,每組隨機選取3只小鼠,異氟烷麻醉,將小鼠腦組織浸入配制好的氧飽和冷凍人工腦脊液中修塊,去除小腦組織后以橫斷面為底用瞬間粘合膠固定于振動切片機底座,使用振動切片機獲取5~6片300μm厚的含海馬區(qū)腦片,立即轉(zhuǎn)移至呈冰水混合物的人工腦脊液中,體視顯微鏡下參照小鼠大腦圖譜快速取小鼠海馬CA1區(qū)于EP管中,并加入細胞裂解液。剪碎腦組織并超聲破碎組織,然后低溫離心(10 000×g,10 min),取上清進行BCA蛋白定量。10%的SDS-PAGE,轉(zhuǎn)膜后,脫脂奶粉室溫封閉1 h后,孵育兔抗spastin多克隆抗體(1∶1 000稀釋)和鼠抗GADPH多克隆抗體(1∶5 000稀釋)過夜,室溫加入HRP標記的Ⅱ抗(1∶5 000稀釋),孵育1 h。增強化學發(fā)光法顯影,全自動凝膠成像系統(tǒng)拍照。用ImageJ分析條帶的灰度值,待測蛋白相對表達水平=待測蛋白灰度值/內(nèi)參蛋白灰度值,GADPH為內(nèi)參照。
3.4 冰凍切片制備小鼠用異氟烷深度麻醉,冷生理鹽水經(jīng)心臟灌注,4%多聚甲醛固定。開顱取腦后4%多聚甲醛固定過夜。15%、30%蔗糖梯度脫水,Leica冰凍切片機進行連續(xù)冠狀切片,片厚30μm。
3.5 尼氏染色為確定重組的sh-Spastin腺相關(guān)病毒載體的表達范圍,在病毒載體注射C57BL/6小鼠海馬的CA1區(qū)表達21 d后,取冰凍切片進行進行尼氏染色:切好的腦片貼于玻片上晾干過夜,次日經(jīng)ddH2O洗2 s,5%甲苯胺藍水溶液處理10 s,ddH2O洗2s,經(jīng)75%、85%、95%和100%乙醇梯度脫水(各2 min),經(jīng)二甲苯Ⅰ和二甲苯Ⅱ(各5 min)進行透明化,中性樹脂封片后鏡檢。
3.6 HE染色按美侖HE染色試劑盒使用說明書方法,取冰凍切片進行腦片貼片后,室溫晾干過夜,用ddH2O洗10 s進行水化;蘇木精染液染3 min,自來水沖洗10 s;1%鹽酸乙醇洗3 s后自來水沖洗10 min;伊紅染液染30 s,自來水沖洗30s;經(jīng)75%、85%、95%和100%乙醇梯度脫水(各2 min)后經(jīng)二甲苯Ⅰ、二甲苯Ⅱ(各5 min)透明;中性樹脂封片后鏡檢。
3.7 高爾基染色按高爾基染色試劑盒使用說明書的方法,在注射病毒載體21 d后,用異氟烷深度麻醉處死,取腦組織于4%多聚甲醛液固定48 h,將實驗部位(從背側(cè)海馬開始到腹側(cè)海馬結(jié)束)切成2~3 mm厚腦組織塊,加入高爾基染色液將腦組織完全浸沒,放置陰涼通風處避光處理14 d(每隔3 d更換一次新染液),染色完成后取出腦組織塊經(jīng)15%和30%的蔗糖溶液脫水處理,經(jīng)濃氨水處理45 min,蒸餾水洗1 min,定影液處理45 min,蒸餾水洗1 min,30%的蔗糖溶液脫水處理2 d,用振動切片機將腦組織切成100μm厚的腦片,貼于明膠玻片晾干后經(jīng)75%、85%、95%和100%乙醇梯度脫水(各2 min)、二甲苯Ⅰ和二甲苯Ⅱ(各5 min)進行透明,中性樹脂封片后用數(shù)字切片掃描儀進行全景多層掃描成像。
3.8 新事物認知實驗參照Cohen等[11]新事物認知實驗方法:將小鼠置于40 cm×60 cm×40 cm無蓋的測試箱中,適應(yīng)5 min后于測試箱內(nèi)放兩個材質(zhì)、大小、顏色均相同的圓柱體,把小鼠頭部朝向圓柱體訓練5 min,1 h后將其中一個圓柱體換成同材質(zhì)同顏色的正方體(邊長與圓柱體直徑一樣),測試5 min,用Topscanlite 3.0軟件分析小鼠對新舊物體的嗅探時間與次數(shù)。正常小鼠對新物體有明顯偏好,表現(xiàn)為嗅探時間與次數(shù)顯著增加。
3.9 Morris水迷宮實驗參照Nunez等[12]的Morris水迷宮實驗方法:水迷宮實驗分適應(yīng)、訓練、測試、反向訓練和反向測試5個階段。適應(yīng)階段:第1天逃生平臺(N象限)高出水面1 cm,把小鼠面朝池壁放入S象限自由游泳尋找逃生平臺。訓練階段:第2、3天逃生平臺位于水面下1 cm,把小鼠面朝池壁放入S象限自由游泳尋找逃生平臺,記錄逃生潛伏期。測試階段:將逃生平臺撤走,把小鼠從S象限中點放入池中60 s,記錄游泳軌跡,分析穿越平臺所在象限的次數(shù)及持續(xù)時間。反向訓練階段:將逃生平臺放于E象限正中且位于水面下,測試小鼠分別從W、S的中點及交點放入池中,記錄潛伏期。反向測試階段:待測小鼠從W與S交點放入池中并自由游泳60 s,分析穿越新平臺所在象限的次數(shù)及在此象限的持續(xù)時間。逃生潛伏期反映小鼠的空間學習能力,穿越平臺所在象限的次數(shù)及持續(xù)時間則反映小鼠的空間記憶能力。
3.10 腦片電生理檢測參照Guo等[13]腦片電生理記錄方法。在rAAV病毒注射后21 d,異氟烷深度麻醉C57BL/6小鼠,用冷凍高糖人工腦脊液(artificial cerebrospinal fluid,ACSF;含212 mmol/L蔗糖、10 mmol/L葡萄糖、26 mmol/L Na2CO3、3 mmol/L KCl、1.25 mmol/L NaH2PO4、3 mmol/L MgCl2、1 mmol/L Ca-Cl2、15 mmol/L抗壞血酸鈉和3 mmol/L丙酮酸鈉)經(jīng)心臟灌注。打開顱骨,快速取腦轉(zhuǎn)移至預(yù)冷的氧飽和高糖ACSF中,振動切片機冠狀切片,片厚300 μm,隨后轉(zhuǎn)入氧飽和ACSF(含124 mmol/L NaCl、10 mmol/L葡萄糖、26 mmol/L NaHCO3、3 mmol/L KCl、1.25 mmol/L NaH2PO4、3 mmol/L MgCl2和1 mmol/L CaCl2),恒溫水浴箱34℃孵育30 min,之后室溫孵育1 h備用。在電壓鉗模式下,首先分別記錄微小興奮性突觸后電流(miniature excitatory postsynaptic current,mEPSC)和誘發(fā)的興奮性突觸后電流(evoked excitatory postsynaptic current,evoked EPSC);其次通過記錄間隔100 ms的配對脈沖刺激產(chǎn)生的EPSC,分析配對脈沖比值(paired pulse ratio,PPR)即后一個刺激的EPSC/前一個刺激的EPSC的振幅比。最后在電流鉗模式下,進行群峰電位(population spike,PS)的記錄。首先記錄一段10 min的基線(群峰電位幅值為最大幅值的30%),然后給高頻刺激(high-frequency stimulation,HFS;4個100 Hz的串刺激,間隔10 s),接著以1/15 Hz的頻率給予測試刺激記錄40 min以上的群峰電位,誘發(fā)長時程增強(long-term potentiation,LTP;群峰電位幅值超過基礎(chǔ)電位的20%并能夠維持至少30 min)。
用SPSS 16.0統(tǒng)計軟件進行分析。數(shù)據(jù)均采用均數(shù)±標準誤(mean±SEM)表示,組與組之間的比較用t檢驗。以P<0.05作為差異性檢驗水平。
圖1A顯示,經(jīng)過尼氏染色的小鼠腦切片,其海馬部位的細胞帶清晰可見,CA1區(qū)細胞帶周圍均可見綠色熒光,說明病毒載體的注射位置正確,并且均在海馬CA1區(qū)正常表達。
HE染色顯示,實驗組海馬的組織學結(jié)構(gòu)與對照組相比無顯著變化,見圖1B;同時實驗組和對照組小鼠的體重也無顯著差異,見圖1C。這說明干擾spastin的表達對海馬神經(jīng)元的形態(tài)以及小鼠的生長發(fā)育均沒有影響。
Western blot結(jié)果顯示,實驗組海馬組織中spastin蛋白的表達顯著低于對照組(P<0.05),說明sh-Spastin可有效干擾海馬spastin蛋白的表達,見圖1D、E。

Figure 1.The expression of spastin in hippocampus CA1 area was knocked down by sh-Spastin.A:representative schematic diagram of stereotactic injection(21 d after rAAV injection,×200);B:HEstaining showed that spastin knockdown did not change the structure of hippocampus(×200);C:the body weight of mice after injection of rAAV for 21 d(n=17);D and E:the protein level of spastin in hippocampuswas detected by Western blot(n=3).Mean±SEM.*P<0.05 vs control group.圖1 sh-Spastin敲減海馬CA1區(qū)spastin的表達
新事物認知實驗的結(jié)果顯示,訓練階段對照組小鼠對兩相同物體嗅探次數(shù)的差異無統(tǒng)計學意義(左側(cè)31.5±2.7,右側(cè)32.5±1.3,P>0.05),嗅探時間的差異亦無統(tǒng)計學意義[左側(cè)(30.7±3.7)s,右側(cè)(31.7±4.6)s,P>0.05],實驗組小鼠對兩相同物體嗅探次數(shù)的差異無統(tǒng)計學意義(左側(cè)25.4±2.5,右側(cè)23.5±2.1,P>0.05),嗅探時間的差異亦無統(tǒng)計學意義[左 側(cè)(23.2±2.7)s,右 側(cè)(21.0±2.3)s,P>0.05];而測試階段對照組小鼠對新物體的嗅探次數(shù)顯著多于舊物體(新物體38.6±1.6,舊物體25.5±2.0,P<0.05),對新物體的嗅探時間也顯著長于舊物體[新物體(40.5±2.2)s,舊物體(21.8±2.5)s,P<0.05],實驗組小鼠對新舊物體嗅探次數(shù)的差異無統(tǒng)計學意義(新物體17.1±1.6,舊物體15.5±1.8,P>0.05),嗅探時間的差異也無統(tǒng)計學意義[新物體(25.4±2.2)s,舊 物 體(22.4±2.6)s,P>0.05],見圖2。

Figure 2.Spastin knockdown in hippocampus reduced the preference of the mice for novel object.A:schematic diagram of novel object recognition(NOR)test;B:tracks of mice in different stages of NOR test;Cand D:the sniffing times and time of the mice for objects in training and testing stages,respectively.Mean±SEM.n=16.*P<0.05 vs control group.圖2 海馬區(qū)spastin敲減后小鼠對新奇物體的偏好減少
水迷宮實驗的結(jié)果顯示,對照組和實驗組的小鼠在適應(yīng)階段均能找到逃生平臺。在訓練階段,相比對照組小鼠,實驗組小鼠找到逃生平臺的潛伏期顯著延長[在第2天(D2),對照組(13.0±1.8)s,實驗組(20.9±2.6)s,P<0.05;在第3天(D3),對照組(6.1±0.8)s,實驗組(12.7±1.5)s,P<0.05],見圖3B。在測試階段,與對照組小鼠相比,實驗組小鼠穿越逃生平臺所在象限的次數(shù)顯著減少(對照組8.1±0.8,實驗組6.1±0.3,P<0.05),在逃生平臺所在象限持續(xù)的時間均顯著減少[對照組(17.8±1.2)s,實驗組(13.2±0.7)s,P<0.05],見圖3C~F。當把逃生平臺轉(zhuǎn)移至新象限,實驗組小鼠找到逃生平臺的潛伏期顯著增加[在第5天(D5),對照組(6.5±1.0)s,實驗組(14.8±3.1)s,P<0.05],見圖3B。在反向測試階段,實驗組小鼠穿越新平臺所在象限的次數(shù)顯著 減 少(對 照 組8.7±0.8,實 驗 組6.0±0.7,P<0.05),在目標象限持續(xù)的時間也顯著減少[對照組(22.7±2.0)s,實驗組(13.7±0.8)s,P<0.05],見圖3G~J。
為了明確小鼠認知功能障礙發(fā)生的細胞形態(tài)變化的基礎(chǔ),我們用高爾基染色觀察了海馬錐體神經(jīng)元突起及樹突棘的改變。結(jié)果顯示,干擾海馬spastin表達后,錐體神經(jīng)元樹突總長度的差異無統(tǒng)計學意義[對照組(1 048±98)μm,實驗組(1 049±64)μm,P>0.05],神經(jīng)元樹突分支數(shù)目的差異無統(tǒng)計學意義(對照組24.7±3.5,實驗組20.1±1.3,P>0.05),見圖4A~C;Sholl分析顯示,對照組和實驗組神經(jīng)元樹突交叉點數(shù)的差異無統(tǒng)計學意義,見圖4D。進一步分析樹突棘的密度,結(jié)果顯示,與對照組相比,基樹突神經(jīng)元樹突棘的密度顯著降低[對照組(9.4±0.5)No./10μm,實 驗 組(6.3±0.5)No./10 μm,P<0.05],頂樹突神經(jīng)元樹突棘密度顯著降低[對照組(10.1±0.4)No./10μm,實驗組(8.6±0.8)No./10μm,P<0.05],見圖4E、4F、4H;對樹突棘形態(tài)進行的分析顯示,與對照組相比,基樹突成熟的樹突棘密度顯著降低[對照組(3.7±0.5)No./10μm,實驗組(2.2±0.3)No./10μm,P<0.05],頂樹突成熟的樹突棘密度也顯著降低[對照組(4.9±0.5)No./10μm,sh-Spastin:(3.4±0.4)No./10μm,P<0.05],見圖4G、I。

Figure 3.Spastin knockdown in hippocampus led to impaired spatial memory of the mice.A:flow chart of Morris water maze test;B:line graph of escape latency of mice;Cand G:tracks of mice swimming in probe and reversal probe stages;D,E,F(xiàn),H,I and J:target quadrant crossovers,target quadrant duration and velocity in probe and reversal probe stages.Mean±SEM.n=11-17.*P<0.05 vs control group.圖3 海馬區(qū)spastin敲減后小鼠空間記憶能力下降
全細胞膜片鉗記錄mEPSC的結(jié)果顯示,與對照組相比,實驗組小鼠CA1區(qū)錐體細胞mEPSC的振幅顯著降低[對照組(15.4±1.0)pA,實驗組(8.4±0.5)pA,P<0.05],頻率亦顯著降低[對照組(1.3±0.1)Hz,實驗組(0.5±0.1)Hz,P<0.05],見圖5A~C。全細胞膜片鉗記錄evoked EPSC的結(jié)果顯示,與對照組相比,evoked EPSC的最大振幅顯著降低[對照組(806±28)pA,實驗組(476±15)pA,P<0.05],見圖5D、E。PPR結(jié)果顯示,實驗組與對照組之間PPR差異無統(tǒng)計學意義(對照組1.72±0.12,實驗組1.66±0.03,P>0.05),見圖5F、G。
為了進一步檢測突觸傳遞效能是否受損,我們在海馬切片上檢測了小鼠海馬CA1錐體神經(jīng)元的PS,以評估LTP是否受到影響。圖6A顯示了LTP檢測過程中PS記錄示意圖。高頻刺激后,對照組和實驗組海馬區(qū)均能被誘導(dǎo)產(chǎn)生LTP,實驗組LTP的水平顯著低于對照組(P<0.05),見圖6B、C;LTP初始階段(高頻刺激后0~10 min),實驗組PS的幅度與對照組相比顯著降低[對照組(176±9)%,實驗組(124±5)%,P<0.05];在LTP的維持階段(高頻刺激后30~40 min),PS的幅度也顯著降低[對照組(166±6)%,實驗組(117±2)%,P<0.05],見圖6D。
本實驗通過小鼠大腦立體定位注射spastin干擾病毒敲減海馬spastin的表達,在不影響小鼠自身生長發(fā)育的情況下,分析神經(jīng)元樹突棘發(fā)育異常及其失功能是否參與認知功能障礙。實驗首先明確了海馬CA1區(qū)干擾spastin的表達后,可導(dǎo)致小鼠認知功能障礙,表現(xiàn)為海馬spastin敲減的小鼠對新事物的偏好降低,空間學習記憶能力下降;然后通過形態(tài)學分析檢測到海馬錐體細胞樹突棘缺失,同時成熟的樹突棘數(shù)量減少。進一步用腦片電生理技術(shù)記錄到海馬的突觸傳遞功能發(fā)生障礙,從而明確了干擾spastin的表達系通過抑制突觸傳遞而介導(dǎo)小鼠認知功能障礙。
編碼spastin蛋白的SPAST基因突變是導(dǎo)致HSP的重要原因[1-2],HSP患者主要表現(xiàn)為雙下肢的運動功能障礙,然而復(fù)雜型HSP除運動障礙外,往往還伴隨著認知功能異常,如注意力、學習記憶能力下降等[4-5]。影像學的資料顯示,HSP患者大腦出現(xiàn)皮質(zhì)萎縮、白質(zhì)變薄和脫髓鞘等病變[14-16],提示SPAST基因突變通過影響中樞神經(jīng)系統(tǒng)導(dǎo)致患者認知功能障礙。SPAST全基因敲除的小鼠不僅表現(xiàn)為運動功能障礙,而且工作記憶和聯(lián)想記憶受損[17],為了明確HSP認知功能障礙是否由于與學習記憶相關(guān)的重要腦區(qū)——海馬區(qū)域的失功能造成的,在本研究中我們特異性的干擾小鼠海馬區(qū)spastin的表達,結(jié)果顯示spastin敲減的小鼠新舊物體的識別能力和空間學習記憶能力均降低,從而明確了HSP認知功能障礙受海馬區(qū)spastin功能的調(diào)控。

Figure 5.Spastin knockdown in hippocampus inhibited the function of synapse.A:representative traces of mEPSC for 1 s and 10 s(left)and average traces of mEPSC(right);Band C:cumulative probability distribution plots of amplitude and inter-event intervals of mEPSC(the bar charts inside indicated amplitude and frequency of mEPSC;n=7-11);D and E:representative recording of evoked EPSCand input-output curves(n=7-9);F and G:representative recording of paired pulse ratio(PPR)and bar chart of PPR(n=6-8).Mean±SEM.*P<0.05 vs control group.圖5 海馬區(qū)spastin敲減后突觸功能受到抑制
作為一種微管切割蛋白,spastin主要通過其AAA結(jié)構(gòu)域行使微管切割、釋放微管動力末端的功能,從而改變神經(jīng)元突起的形成[6]。細胞水平的研究顯示,過表達spastin促進突起分支的形成,提高樹突野的復(fù)雜性,而干擾spastin則抑制突起分支形成并降低樹突野的復(fù)雜性[18]。我們在體用病毒注射敲減小鼠海馬spastin后,并沒有觀察到樹突長度和分支的改變,而觀察到位于樹突表面的樹突棘的密度顯著降低,尤其是成熟樹突棘的密度降低最為顯著。樹突棘作為興奮性神經(jīng)元的突觸后組份,在突觸傳遞和可塑性中扮演著重要的角色。臨床上諸多神經(jīng)精神性疾病所致的認知功能障礙,比如阿爾茨海默病、精神分裂癥、自閉癥和抑郁癥等[18-20],都集中體現(xiàn)在樹突棘結(jié)構(gòu)和功能的改變上[21]。我們通過腦片電生理記錄到mEPSC幅度和頻率在spastin敲減后顯著降低,說明敲減spastin不僅造成了樹突棘結(jié)構(gòu)的改變也同時影響了樹突棘的功能。前期我們的研究也發(fā)現(xiàn)過表達spastin可明顯增加離體培養(yǎng)神經(jīng)元mEPSC的頻率和幅度[18],這充分說明了spastin可通過改變樹突棘可塑性參與認知功能的調(diào)控。此外,spastin改變樹突棘可塑性可能與AMPA受體的轉(zhuǎn)運相關(guān),AMPA受體是樹突棘表面重要的離子型谷氨酸受體,介導(dǎo)了90%以上的興奮性突觸后電流,研究顯示spastin的MIT結(jié)構(gòu)域與AMPA受體亞單位存在直接相互作用,而且過表達spastin可促進AMPA受體GluA2亞單位在樹突表面的表達[18]。雖然spastin主要功能是切割微管,然而其MIT結(jié)構(gòu)域還參與細胞內(nèi)膜結(jié)構(gòu)的形成以及物質(zhì)的轉(zhuǎn)運[22],提示spastin有可能通過促進AMPA受體轉(zhuǎn)運改變樹突棘的結(jié)構(gòu)和功能,這有待我們后續(xù)進一步的研究。

Figure 6.Spastin knockdown inhibited CA3-CA1 LTP in hippocampus.A:schematic diagram of population spike(PS)recording;B:representative recordings of PSbefore(Pre)and after(Post)high-frequency stimulation(HFS);C:changes of PSamplitude(%of baseline)after a HFS,measured from control(7 cells,7 mice)or sh-Spastin(6 cells,6 mice)groups;D:PSamplitude(%of baseline)0 min to 10 min and 30 min to 40 min after HFS(n=10).Mean±SEM.*P<0.05 vs control group.圖6 敲減spastin后海馬區(qū)CA3-CA1突觸LTP被抑制
突觸傳遞的LTP是反應(yīng)學習記憶等認知功能的重要指標[23],無論何種原因造成的樹突棘結(jié)構(gòu)和功能的改變,需最終體現(xiàn)在突觸傳遞可塑性的變化上。我們實驗中記錄的LTP的結(jié)果顯示,干擾spastin的表達后,誘導(dǎo)出的LTP的幅度較對照組顯著降低,說明敲減spastin后樹突棘結(jié)構(gòu)和功能的改變進一步造成了突觸傳遞效能的減弱,從而導(dǎo)致了小鼠認知功能障礙的發(fā)生。
綜合我們的結(jié)果,雖然spastin的主要功能是切割微管,然而缺失spastin改變了樹突棘的形態(tài)結(jié)構(gòu),而導(dǎo)致突觸傳遞功能受損,從而引起學習記憶等認知功能障礙,缺失spastin所致的突觸傳遞功能受損可能是HSP患者出現(xiàn)認知功能障礙的原因。