陳 燕 吳英姿 羅紹駒 胡 浩 莫灼錨 張?jiān)娷姟?/p>
1.中山大學(xué)附屬第三醫(yī)院中醫(yī)科 (廣東 廣州,510630) 2.中山大學(xué)附屬第一醫(yī)院中醫(yī)科
隨著社會(huì)壓力的增加和生活節(jié)奏的加快,越來(lái)越多的人表現(xiàn)出脾虛相關(guān)癥狀,而研究發(fā)現(xiàn)脾虛導(dǎo)致的內(nèi)環(huán)境變化可能為腫瘤生長(zhǎng)提供有利的土壤,正如《衛(wèi)生寶鑒》所云“凡人脾胃虛弱,飲食不節(jié)或生冷過(guò)度,不能克化,致積聚結(jié)塊”[1]。我們前期研究發(fā)現(xiàn),脾虛內(nèi)環(huán)境中有機(jī)陰離子轉(zhuǎn)運(yùn)肽(Oatp)2b1的分布及功能發(fā)生改變,此變化是脾虛濕濁轉(zhuǎn)運(yùn)障礙的物質(zhì)基礎(chǔ)之一,且與肝癌的發(fā)生和發(fā)展密切相關(guān)[2-4]。腫瘤干細(xì)胞(CSCs)干性的表達(dá)被認(rèn)為是腫瘤發(fā)病、復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移的根源,研究發(fā)現(xiàn)機(jī)體受到內(nèi)環(huán)境影響產(chǎn)生不同的腫瘤微環(huán)境,可能引發(fā)CSCs相關(guān)信號(hào)通路和表面分子標(biāo)志物發(fā)生改變,其“干性”也可能隨之發(fā)生變化[5,6],但脾虛內(nèi)環(huán)境變化對(duì)肝癌CSCs干性的影響鮮有報(bào)道。本研究將觀察脾虛內(nèi)環(huán)境變化對(duì)CSCs干性及其相關(guān)信號(hào)通路PTEN/AKT的影響,進(jìn)一步探討脾虛內(nèi)環(huán)境與肝癌的關(guān)系。
1.1 動(dòng)物和細(xì)胞 SPF級(jí)C57BL/6小鼠60只(體重18~22 g,5~6周齡,雄性)以及Hepa1-6小鼠肝癌細(xì)胞株,由廣東省醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,動(dòng)物合格證號(hào)[SYXK(粵)2013-0002]。所有小鼠飼養(yǎng)于廣東省醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心SPF環(huán)境。本實(shí)驗(yàn)嚴(yán)格遵守實(shí)驗(yàn)動(dòng)物福利和倫理原則,并通過(guò)廣東省醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)倫理審查(No.13201711-20)。
1.2 試劑和儀器 利血平購(gòu)于Sigma公司。DMEM、Trypsin-EDTA、血清購(gòu)于Gibco公司。Transwell板和Matrigel膠購(gòu)于Corning公司。CCK8試劑盒購(gòu)于北京金式金生物科技有限公司。主要使用儀器如下:超凈工作臺(tái)(蘇靜集團(tuán),SW-CJ-2FD),生物安全柜(蘇靜集團(tuán),BHC-1300IIA/B3),二氧化碳培養(yǎng)箱(Thermo,3111),低溫冷凍離心機(jī)(Thermo,ST16R),臺(tái)式低速離心機(jī)(湖南滬康,TDZ5-WS),顯微鏡(OLYMPUS,BX61),顯微境成像系統(tǒng)(OLYMPUS,DP72),研究級(jí)倒置顯微鏡(mshOt,MF51),臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)(湖南湘儀,TGL-16),熒光PCR儀(Bio-Rad,CFX96)。
1.3 動(dòng)物分組及脾虛模型建立 所有小鼠在廣東省醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心飼養(yǎng)1周后隨機(jī)分為A組(空白組)、B組(脾虛組)、C組(肝癌組)、D組(脾虛肝癌組),每組15只。B組和D組小鼠給予0.1 mg/kg利血平皮下注射,A組和C組小鼠則皮下注射等量的生理鹽水,1次/d,連續(xù)14 d,根據(jù)脾虛積分表評(píng)分,脾虛模型成模率100%[7]。
1.4 磁珠分離法分選CD133+Hepa1-6細(xì)胞 將培養(yǎng)好的2×107個(gè)Hepa1-6小鼠肝癌細(xì)胞加入300 μl磷酸緩沖液(PBS+0.5% BSA+2mmol/L EDTA),加入100 μl FCR Block緩沖液,再加入100 μl CD133磁珠,輕輕混勻后在冰上孵化30 min,用磷酸緩沖液洗一遍。將柱子放在分離架上,用磷酸緩沖液濕潤(rùn)后,再加入樣品,然后用磷酸緩沖液洗柱子3次;再將柱子放入15 ml離心管,加入1 ml磷酸緩沖液,快速推入,離心后收集CD133+Hepa1-6細(xì)胞培養(yǎng)備用[8]。
1.5 脾虛肝癌模型建立 參照前期研究建立脾虛肝癌小鼠模型[9]。將C組和D組小鼠麻醉,碘伏消毒,沿左肋緣下方開(kāi)腹,切口控制1 cm左右,暴露肝臟左葉;以無(wú)菌微量進(jìn)樣器抽取分選好的小鼠肝癌細(xì)胞CD133+Hepa1-6細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞密度為5×107個(gè)/ml,緩慢注射入肝臟,20 μl/只,無(wú)菌棉簽壓迫30 s,關(guān)閉腹腔縫合。SPF環(huán)境常規(guī)飼養(yǎng)28 d后,麻醉動(dòng)物后頸椎脫臼處死,取肝組織和癌組織用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
1.6 肝癌組織CD133+細(xì)胞培養(yǎng) 將C組和D組新鮮的肝癌組織用1× Hank′s液洗滌后剪碎,加入4 ml 0.5% dispase酶4℃消化過(guò)夜,離心棄上清后再加入0.25%胰蛋白酶37℃消化15 min,離心過(guò)篩網(wǎng),收集沉淀,用10% DMEM培養(yǎng)3 d傳代繼續(xù)培養(yǎng)。參照1.4方法分選CD133+肝癌細(xì)胞并培養(yǎng)。
1.7 CD133+肝癌細(xì)胞體外增殖實(shí)驗(yàn) CD133+肝癌細(xì)胞按1×103個(gè)/孔接種于96孔培養(yǎng)板,37℃、5% CO2條件培養(yǎng)24 h后進(jìn)行CCK8檢測(cè),每孔加入10 μl CCK8試劑,37℃、5% CO2條件孵育4 h,用酶標(biāo)儀檢測(cè)在450 nm處的吸光值OD。
1.8 CD133+肝癌細(xì)胞侵襲和遷移實(shí)驗(yàn) 將Matrigel膠平鋪于小室24孔板上,室溫下孵育1 h,待膠凝固后出現(xiàn)白色層使用。Transwell板中的下室加入10% 胎牛血清DMEM培養(yǎng)液。將生長(zhǎng)為對(duì)數(shù)期的CD133+肝癌細(xì)胞胰酶消化后,無(wú)血清培養(yǎng)液清洗、重懸后,調(diào)為5×105個(gè)/ml濃度,在上室內(nèi)進(jìn)行接種,每孔中加入200 μl 細(xì)胞稀釋液(1×105個(gè)細(xì)胞),37℃、5% CO2條件培養(yǎng)16 h后,顯微鏡下觀察拍照,計(jì)數(shù)進(jìn)入下室的細(xì)胞數(shù)量。
1.9 肝臟和肝癌組織CD133、PTEN、AKT及Oatp2b1 mRNA水平檢測(cè) 采用熒光定量Real Time PCR方法檢測(cè),基因庫(kù)查找目的基因mRNA序列,在CDS區(qū)設(shè)計(jì)引物,引物序列見(jiàn)表1。逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)條件為:37℃ 15 min,98℃ 5 min,10℃。熒光定量PCR反應(yīng)條件為:95℃ 30 s,然后95℃ 5 s、62℃ 30 s、72℃ 1 min,40循環(huán),然后95℃ 15 s,55℃ 1 min,95℃ 15 s。采用2-ΔΔCt法計(jì)算目的基因相對(duì)表達(dá)量。

表1 引物序列
1.10 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,計(jì)量資料采用方差分析,計(jì)數(shù)資料采用χ2檢驗(yàn)。P<0.05時(shí),差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 各組小鼠體重和腫瘤體積觀察 D組和C組由于腫瘤的生長(zhǎng)而體重較A、B組增大。與C組相比,D組小鼠的體重和腫瘤體積明顯增大(P<0.01)。見(jiàn)圖1。

圖1 腫瘤體積和小鼠體重比較 (與C組比較,*P<0.01)
2.2 CD133+肝癌細(xì)胞體外增殖能力觀察 癌組織分離出CD133+細(xì)胞進(jìn)行體外增殖,3 d后D組CD133+肝癌細(xì)胞OD值明顯高于C組,說(shuō)明脾虛肝癌組小鼠癌組織分選出的CD133+肝癌細(xì)胞增殖更快(P<0.05,P<0.01)。見(jiàn)圖2。

圖2 兩組CD133+肝癌細(xì)胞體外增殖能力比較(與C組比較,*P<0.05,**P<0.01)
2.3 CD133+肝癌細(xì)胞遷移和侵襲能力觀察 遷移和侵襲實(shí)驗(yàn)中,小室內(nèi)D組小鼠CD133+肝癌細(xì)胞數(shù)明顯高于C組,即脾虛肝癌組CD133+肝癌細(xì)胞遷移和侵襲能力明顯強(qiáng)于肝癌組(P<0.05)。見(jiàn)圖3。

圖3 兩組CD133+肝癌細(xì)胞遷移和侵襲能力比較(與C組比較,*P<0.05)
2.4 各組肝臟和癌組織中Oatp2b1、CD133、PTEN和AKT mRNA表達(dá)情況 與A組相比,Oatp2b1 mRNA在B組、C組和D組肝組織以及D組癌組織中表達(dá)升高(P<0.01);與C組相比,D組肝組織中Oatp2b1 mRNA表達(dá)明顯降低,而癌組織中則表達(dá)明顯升高(P<0.01)。見(jiàn)圖4。在癌組織中,與C組相比,D組CD133 mRNA表達(dá)明顯升高(P<0.01),PTEN mRNA表達(dá)降低(P<0.05),而AKT mRNA的表達(dá)也明顯升高(P<0.01),見(jiàn)圖5。

圖4 Oatp2b1 mRNA在各組肝組織和癌組織中的比較(與A組比較,*P<0.01;與C組比較,#P<0.01)

圖5 CD133、PTEN和AKT mRNA在癌組織中的比較(與C組比較,*P<0.05,**P<0.01)
肝癌的死亡率位居全球腫瘤第3位,目前通過(guò)早發(fā)現(xiàn)早治療,肝癌患者生存期顯著延長(zhǎng),但腫瘤復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移是導(dǎo)致肝癌患者死亡的重要原因,目前研究證實(shí)肝癌復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移后5年死亡率高達(dá)70%以上,迫切需要更加完善的理論認(rèn)識(shí)和治療手段[10]。研究表明機(jī)體內(nèi)環(huán)境變化與癌基因、抑癌基因、黏附因子、免疫調(diào)節(jié)等因素密切相關(guān),除了受遺傳影響,大部分腫瘤是機(jī)體內(nèi)外環(huán)境因素和遺傳因素共同作用的結(jié)果,機(jī)體內(nèi)環(huán)境發(fā)生有利于腫瘤細(xì)胞生長(zhǎng)的變化在腫瘤發(fā)病機(jī)制中起著極其重要的作用[11]。著名中醫(yī)腫瘤專(zhuān)家于爾辛提出“肝癌的本是脾虛”的學(xué)術(shù)觀點(diǎn),并證實(shí)以脾為主辨證治療,可以改善荷瘤機(jī)體整體狀況,形成不利于肝癌生長(zhǎng)的內(nèi)環(huán)境,通過(guò)改善“患癌的土壤”而預(yù)防轉(zhuǎn)移、復(fù)發(fā)[12]。我們前期研究發(fā)現(xiàn)脾虛小鼠Oatp2b1表達(dá)發(fā)生變化,且脾虛內(nèi)環(huán)境促進(jìn)小鼠肝癌的生長(zhǎng),但其具體機(jī)制尚不明確。
本研究采用利血平皮下注射法構(gòu)建脾虛小鼠模型,小鼠出現(xiàn)精神疲倦、形體消瘦、食欲下降、大便稀溏等癥狀,說(shuō)明脾虛模型建模成功[7]。在脾虛基礎(chǔ)上,建立小鼠原位移植肝癌模型,結(jié)果發(fā)現(xiàn)脾虛肝癌小鼠腫瘤體積明顯大于非脾虛肝癌小鼠,脾虛肝癌小鼠的體重也隨著腫瘤的增大而明顯增加,神疲、食欲下降等癥狀也較肝癌組明顯。由此可見(jiàn)脾虛內(nèi)環(huán)境有利于小鼠肝癌生長(zhǎng)和發(fā)展。
Oatp2b1是人和動(dòng)物體內(nèi)重要的膜轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白,在有機(jī)陰離子的轉(zhuǎn)運(yùn)中起著重要作用,介導(dǎo)內(nèi)、外源物質(zhì)的跨膜轉(zhuǎn)運(yùn),對(duì)保持機(jī)體和細(xì)胞內(nèi)外環(huán)境的穩(wěn)態(tài)平衡起重要作用,Oatp2b1功能失調(diào),將引起“濕濁”的吸收、分布和排泄障礙而導(dǎo)致疾病的發(fā)生[3]。我們前期研究Oatp2b1可能是脾虛濕濁內(nèi)環(huán)境下肝癌發(fā)生和發(fā)展的“因濕致瘀”的物質(zhì)基礎(chǔ)之一,其在各組織中的表達(dá)異常導(dǎo)致濕邪不能正常外排瘀阻于肝,從而促進(jìn)肝癌發(fā)生和發(fā)展[2, 4]。在本研究中,脾虛狀態(tài)下濕濁轉(zhuǎn)運(yùn)障礙,機(jī)體發(fā)生代償反應(yīng),故脾虛小鼠肝組織Oatp2b1 mRNA的表達(dá)高于空白組。在肝癌造模成功后,脾虛肝癌組肝組織Oatp2b1 mRNA表達(dá)低于非脾虛肝癌小鼠肝組織,提示脾虛內(nèi)環(huán)境下肝組織Oatp2b1功能下調(diào),機(jī)體內(nèi)濕濁等毒素排泄障礙。我們還觀察到肝癌組癌組織Oatp2b1 mRNA表達(dá)低于肝組織;而脾虛肝癌組癌組織中,Oatp2b1 mRNA表達(dá)則高于肝組織,且明顯高于非脾虛肝癌小鼠癌組織。此結(jié)果表明脾虛內(nèi)環(huán)境中,癌組織Oatp2b1 mRNA表達(dá)發(fā)生代償性反應(yīng)而升高,在非脾虛肝癌小鼠體內(nèi)則沒(méi)有出現(xiàn)該現(xiàn)象。以上結(jié)果提示機(jī)體脾虛內(nèi)環(huán)境中Oatp2b1發(fā)生了變化,這種變化可能是導(dǎo)致脾虛有利于肝癌發(fā)生的重要原因。
越來(lái)越多的研究證實(shí),肝癌CSCs自我更新、分化和增殖是肝癌發(fā)生和惡化的根源[13]。CSCs隱藏在腫瘤中,不易被識(shí)別和清除,是通過(guò)細(xì)胞表面標(biāo)志物的表達(dá)來(lái)識(shí)別的,而CD133是肝癌CSCs的生物標(biāo)志物之一[14]。腫瘤微環(huán)境是CSCs生長(zhǎng)的“土壤”,微環(huán)境是受機(jī)體內(nèi)環(huán)境影響的,機(jī)體受到內(nèi)環(huán)境影響產(chǎn)生不同的腫瘤微環(huán)境,引發(fā)CSCs相關(guān)信號(hào)通路和表面分子標(biāo)志物改變,導(dǎo)致CSCs與非CSCs之間存在動(dòng)態(tài)的相互轉(zhuǎn)換,機(jī)體內(nèi)環(huán)境改變可能導(dǎo)致CSCs的增加[15]。靖林林等[16]研究發(fā)現(xiàn)腫瘤微環(huán)境的免疫抑制和能量代謝障礙在病機(jī)上以脾虛為主,腫瘤微環(huán)境對(duì)腫瘤細(xì)胞進(jìn)行了重新編程,是癌毒轉(zhuǎn)化的關(guān)鍵因素,并賦予CSCs分化潛能和干性,CSCs是至虛之處的毒根深藏。本研究結(jié)果顯示,脾虛肝癌組癌組織CD133+肝癌細(xì)胞體外增殖、遷移和侵襲能力明顯高于肝癌組,提示脾虛內(nèi)環(huán)境變化促進(jìn)了肝癌CSCs干性能力的發(fā)揮。
研究證實(shí)CD133+肝癌細(xì)胞具有高度致瘤性,在肝癌的生長(zhǎng)、復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移中起重要作用,被認(rèn)為是難以從根源上清除肝癌細(xì)胞的重要原因[17]。我們對(duì)癌組織中的CD133 mRNA進(jìn)行了檢測(cè),結(jié)果顯示脾虛肝癌小鼠癌組織CD133 mRNA表達(dá)明顯高于非脾虛肝癌小鼠,提示脾虛內(nèi)環(huán)境有利于CD133+肝癌細(xì)胞生長(zhǎng)。
磷酸酶及第10號(hào)染色體缺失的張力蛋白同源區(qū)(PTEN)是機(jī)體內(nèi)一個(gè)重要的抑癌基因,在干細(xì)胞的自我更新、基因組的穩(wěn)定性方面起著重要作用,PTEN的異常表達(dá)與腫瘤侵襲和不良預(yù)后密切相關(guān)。AKT通路負(fù)責(zé)由磷脂酰肌醇-3羥基激酶始動(dòng)的生物信息的傳導(dǎo),其活化可促進(jìn)腫瘤細(xì)胞生長(zhǎng)、增殖和血管生成,促進(jìn)侵襲和轉(zhuǎn)移。PTEN通過(guò)下調(diào)磷脂酰肌醇依賴(lài)性激酶AKT的活化來(lái)實(shí)現(xiàn)其抑癌作用,PTEN/AKT信號(hào)通路失衡在維持CSCs的干性方面發(fā)揮重要作用[18]。本研究結(jié)果顯示,與肝癌組相比,脾虛肝癌組小鼠癌組織PTEN mRNA表達(dá)降低,而AKT mRNA表達(dá)則明顯升高,提示脾虛內(nèi)環(huán)境中抑癌基因PTEN表達(dá)被下調(diào),PTEN/AKT信號(hào)通路失衡,導(dǎo)致AKT活化,此現(xiàn)象可能是脾虛內(nèi)環(huán)境中CD133+肝癌細(xì)胞生長(zhǎng)及其干性能力增強(qiáng)的原因之一。
綜上所述,本研究提示脾虛內(nèi)環(huán)境有利于肝癌發(fā)生和發(fā)展,可能與脾虛濕濁轉(zhuǎn)運(yùn)障礙的內(nèi)環(huán)境中PTEN/AKT信號(hào)通路失衡促進(jìn)肝癌細(xì)胞干性能力發(fā)揮有關(guān),脾虛內(nèi)環(huán)境可能是肝癌干細(xì)胞生長(zhǎng)的有利土壤。但仍需進(jìn)一步探討其他肝癌干細(xì)胞標(biāo)志物的表達(dá)情況,而脾虛內(nèi)環(huán)境變化Oatp2b1表達(dá)異常是否參與調(diào)控PTEN/AKT信號(hào)通路仍需進(jìn)一步研究。