陳倩,陳幽蘭,戴彥成,張亞利,張紫薇,陳禹君,唐志鵬
1.上海中醫藥大學附屬龍華醫院,上海中醫藥大學脾胃病研究所,上海 200032; 2.廣州中醫藥大學第一附屬醫院,廣東 廣州 510405; 3.上海中醫藥大學附屬上海市中西醫結合醫院,上海 200082
潰瘍性結腸炎(ulcerative colitis,UC)是一種累及結腸的慢性炎癥性疾病,發病率在世界范圍內呈上升趨勢,發病機制尚不明確,包括遺傳易感性、上皮屏障缺陷、免疫反應失調和環境因素[1]。臨床常用藥物包括氨基水楊酸制劑、激素、硫唑嘌呤等,但長期使用這些藥物會降低療效,且伴隨著各種不良反應,積極探索中醫藥治療UC的機制,可為UC的研究和治療提供新方向。健脾清腸方是本課題組在長期臨床實踐中總結的治療UC有效方劑[2-4],前期實驗研究表明,健脾清腸方能明顯改善葡聚糖硫酸鈉(DSS)誘導UC小鼠結腸炎癥狀,其機制可能與抑制核因子-κB活化,下調白細胞介素(IL)-1β、IL-8、腫瘤壞死因子-α等炎性介質,改善小鼠結腸上皮屏障功能有關[5-7]。此外,健脾清腸方還能通過抑制腸道炎癥級聯反應、減少Cajal間質細胞自噬,調節DSS誘導的UC小鼠腸動力異常[8]。本研究以吡羅昔康誘導IL-10-/-小鼠慢性結腸炎為模型,觀察健脾清腸方對模型小鼠炎癥因子水平的影響,探討其作用機制。
IL-10-/-C57BL/6背景種鼠6只,購于上海南方模式生物科技股份有限責任公司,動物生產許可證號SCXK(滬)2017-0010。采用胚胎干細胞打靶方式,在IL-10基因exon1兩側分別插入loxP位點,即條件性敲除(CKO)小鼠。該flox小鼠與Dppa3-Cre品系小鼠交配,獲得IL-10敲除(KO)小鼠模型。種鼠在上海中醫藥大學SPF級動物實驗中心飼養及繁殖,動物生產許可證號SCXK(滬)2020-0009,上海南方模式生物科技股份有限責任公司提供基因檢測服務。本研究獲得上海中醫藥大學實驗動物倫理委員會審查批準(PZSHUTCM190912020)。
健脾清腸方(黃芪30g,黃連3g,黨參15g,馬齒莧30g,地榆15g,三七6g,白及3g,木香6g,甘草6 g),飲片由上海中醫藥大學附屬龍華醫院中藥房提供。取上述藥物6劑,浸泡后煎煮2次,濃縮至藥液體積為600 mL。旋轉蒸發器中濃縮后,將濃縮藥液置于四環凍干機制成凍干粉后密封,置于-20 ℃冰箱保存。
吡羅昔康,美國Sigma公司,批號STBJ5445;模型飼料由純化飼料(AIN93G)作為基礎料合成,江蘇協同醫藥生物工程有限公司,批號20190907;糞便隱血試劑盒,珠海貝索企業,批號B190802;Trizol,美國Invitrogen公司,批號15596018;反轉錄試劑盒PrimeScriptTMRT reagent Kit、熒光定量PCR試劑盒TB Green?Premix Ex TaqTM,日本TaKaRa公司,批號分別為AJ60658A、AJ61156A;小鼠IL-6、IL-1β ELISA檢測試劑盒,武漢伊萊瑞特生物科技股份有限公司,批號分別為NVLMK4NSMU、EXVY4GIJG5。NanoDrop 2000超微量分光光度計(美國Thermo Scientific公司),StepOnePlus型實時熒光定量PCR儀(美國 Applied Biosystems 公司),PCR儀(德國Eppendorf公司),Synergy4多功能酶標儀(美國BioTek公司)。
IL-10-/-小鼠經飼養、繁殖后,對F6代98只小鼠剪尾進行基因檢測,結果顯示,其中48只小鼠IL-10-/-基因敲除。基因檢測結果見圖1(部分)。野生型(WT)即為IL-10基因未敲除,CKO為雜合子基因型,有且僅有在Dppa3-Cre表達情況下為IL-10 KO小鼠。

圖1 F6代小鼠部分基因檢測結果
IL-10-/-小鼠,6~8周齡,采用SPSS25.0軟件生成隨機數,分為空白組、模型組和健脾清腸方低、中、高劑量組,每組8只,雌雄各半。參考文獻[9]方法,將吡羅昔康以200 ppm添加于飼料中誘導IL-10-/-小鼠10 d,制備慢性結腸炎模型。根據實驗動物和人體表面積折算系數計算小鼠給藥劑量15 g/(kg?d)作為健脾清腸方中劑量,健脾清腸方低、高劑量分別為10、22.5 g/(kg?d)[10]。造模的同時開始小鼠灌胃給藥,給藥組小鼠予0.3 mL健脾清腸方灌胃,模型組和空白組予等體積生理鹽水灌胃。每日1次,連續14 d。
1.5.1 小鼠疾病活動指數
每日觀察小鼠一般情況,稱量體質量,觀察糞便性狀,檢驗糞便隱血情況,進行疾病活動指數評分(見表1),計算各項分數平均數作為最終結果,進行統計評估。

表1 慢性結腸炎小鼠疾病活動指數評分
1.5.2 HE染色
取小鼠近端結腸,10%中性福爾馬林緩沖液固定,沖洗組織包埋盒4 h,石蠟包埋,切片,HE染色,中性樹膠封片,顯微鏡下觀察并拍照。
1.5.3 白細胞介素-6、白細胞介素-1β基因表達檢測 稱取50 mg小鼠結腸組織,加1 mL Trizol,反復勻漿直至液體澄清,室溫靜置,吸取上清液;加入氯仿待分層出現后,12 000 r/min離心15 min,吸取上層水相(RNA層);加等體積異丙醇混勻,離心后棄上清,RNA沉淀為小塊;加入75%乙醇1 mL,輕微震蕩洗滌,離心后棄上清,倒置EP管,自然控干RNA沉淀;加入適量RNA-free水溶解RNA,進行RNA濃度測定。參照Takara試劑盒說明書反轉錄為cDNA,在StepOnePlus實時熒光定量PCR儀上進行PCR擴增和檢測。引物由上海閃晶分子生物科技有限公司設計并合成(見表2),并用Blast程序進行驗證。RT-PCR反應:配制20 μL反應體系,按試劑盒說明書進行反應擴增。以β-actin基因為內參,以2-ΔΔCt法分析mRNA表達水平。

表2 PCR各基因引物序列
1.5.4 白細胞介素-6、白細胞介素-1β含量測定
稱取50 mg小鼠結腸組織,加1 mL預冷PBS,勻漿30 s后取出,勻漿管置于冰上,靜置5 min,再反復勻漿,直至勻漿管中未見明顯結腸組織,最后將勻漿液5 000×g離心5 min,取上清液備用;將組織勻漿液稀釋5倍作為待測樣品,于酶標板各孔中加入標準品或樣品各100 μL,37 ℃孵育90 min;倒去孔內液體后加入100 μL生物素化抗體工作液,37 ℃孵育60 min;洗滌后加入100 μL酶結合物工作液,37 ℃孵育30 min;洗滌后加入90 μL底物溶液,37 ℃孵育15 min,立即加入50 μL終止液,于酶標儀450 nm波長處測量各孔光密度(OD值),繪制標準曲線,計算各組樣品濃度。
采用SPSS25.0統計軟件進行分析。實驗數據以±s表示,符合正態分布和方差齊性檢驗用方差分析,組間比較用LSD-t檢驗。P<0.05表示差異有統計學意義。
空白組小鼠表現為反應靈敏,皮毛光澤,體質量正常增長,糞便麥粒狀;模型組小鼠表現為蜷臥懶動、反應遲鈍、毛色黯淡、爪甲發白,體形消瘦,糞質較軟,甚至出現肉眼血便,其中因便血嚴重、體質量下降明顯死亡2只;健脾清腸方各劑量組小鼠上述表現均有不同程度改善。給藥第10日,健脾清腸方高劑量組小鼠體質量較模型組小鼠明顯增加(P<0.05),給藥第14日,健脾清腸方各劑量組小鼠體質量較模型組差異無統計學意義(P>0.05)。結果見表3。
表3 各組小鼠體質量增長率比較(±s,%)

表3 各組小鼠體質量增長率比較(±s,%)
注:與模型組比較,#P<0.05
組別 只數 第1日 第10日 第14日 空白組 8 1.12±1.82 7.10±3.66 7.50±6.91模型組 6 -2.09±1.77 -13.63±6.24 -4.92±7.62健脾清腸方低劑量組 8 -2.45±3.99 -11.59±7.76 0.39±6.01健脾清腸方中劑量組 8 -1.35±2.73 -11.86±5.01 0.33±3.29健脾清腸方高劑量組 8 0.39±6.07 -6.08±7.76# 1.89±6.63
與模型組比較,給藥第10日,健脾清腸方低、高劑量組小鼠疾病活動指數評分顯著減少(P<0.05);給藥第14日,健脾清腸方各劑量組小鼠疾病活動指數評分顯著減少(P<0.05);健脾清腸方各劑量組小鼠疾病活動指數評分比較差異無統計學意義(P>0.05)。結果見表4。
表4 各組小鼠疾病活動指數評分比較(±s)

表4 各組小鼠疾病活動指數評分比較(±s)
注:與模型組比較,#P<0.05
組別 只數 第1日 第10日 第14日 模型組 6 1.10±0.25 3.10±0.63 2.19±0.57 健脾清腸方低劑量組 8 1.25±0.43 2.50±0.78# 1.58±0.53#健脾清腸方中劑量組 8 1.05±0.30 2.57±0.66 1.48±0.50#健脾清腸方高劑量組 8 1.00±0.42 2.11±0.72# 1.39±0.65#
模型組小鼠結腸組織出現明顯黏膜損傷,腺體排列紊亂,大量炎性細胞浸潤及潰瘍形成;健脾清腸方各劑量組小鼠結腸組織結構完整,黏膜充血水腫較模型組減輕,炎性細胞明顯減少,腸黏膜有不同程度修復,腺體排列較為規整,潰瘍形成情況明顯緩解。結果見圖2。

圖2 各組小鼠結腸組織形態(HE染色)
與空白組比較,模型組小鼠結腸組織IL-6、IL-1β mRNA表達明顯升高(P<0.05);與模型組比較,健脾清腸方各劑量組小鼠結腸組織IL-6、IL-1β mRNA表達明顯降低(P<0.05);健脾清腸方各劑量組小鼠結腸組織IL-6 mRNA表達差異無統計學意義(P>0.05);與健脾清腸方中劑量組比較,健脾清腸方高劑量組小鼠結腸組織IL-1β mRNA表達明顯降低(P<0.05)。結果見圖3。

圖3 各組小鼠結腸組織IL-6、IL-1β mRNA表達比較(±s)
與空白組比較,模型組小鼠結腸組織IL-6、IL-1β含量明顯增加(P<0.05);與模型組比較,健脾清腸方各劑量組小鼠結腸組織IL-6、IL-1β含量明顯減少(P<0.05)。結果見圖4。

圖4 各組小鼠結腸組織IL-6、IL-1β含量比較(±s)
UC屬中醫學“休息痢”“久痢”“腸澼”等范疇,臨床表現為腹痛、腹瀉、里急后重、黏液膿血便等癥。《景岳全書》有“泄瀉之本,無不由于脾胃……飲食失節,起居不時,以致脾胃受傷,則水反為濕,谷反為滯,精華之氣不能輸化,乃至合污下降,而瀉痢作矣”,詳述脾虛導致瀉痢的病理過程。《沈氏尊生書》記載“大抵痢之病根,皆由濕蒸熱壅,以至氣血凝滯,漸至腸胃之病”。脾喜燥惡濕,水濕羈留于腸間,郁久化熱,濕熱搏結,下注大腸,損傷腸道脂膜血絡,腐而為膿,從而導致UC發生。由此可知,脾氣虛弱是UC的發病基礎,濕熱瘀結是UC的重要病理因素。
本實驗采用的IL-10-/-小鼠是一種廣泛用于分析炎癥性腸病(IBD)病因的基因工程模型,由Kühn等[11]于1993年建立。IL-10是一種具有強烈抗炎活性的細胞因子,可阻斷多種炎性細胞的誘導合成。研究表明,IL-10及其受體的突變參與了早發性IBD的發病,證實IL-10-/-小鼠模型具有臨床相關性[12-13]。IL-10-/-小鼠出生后3~6個月可自發產生慢性IBD,可能與腸道黏膜暴露于食物和細菌抗原中,這些抗原刺激免疫系統,由于缺乏IL-10抑制免疫反應,促炎細胞因子持續過量產生有關,導致腸道炎癥[14]。研究表明,當暴露于非甾體抗炎藥如吡羅昔康時,IL-10-/-小鼠2周內迅速發展為中重度結腸炎,并在停藥后轉為慢性病程[15-16]。IL-10-/-小鼠腸道炎癥具有與人類IBD相似的組織學特征,包括固有層和黏膜下層炎性細胞浸潤,隱窩膿腫、潰瘍和腸壁增厚[17]。經典的DSS模型是通過化學試劑破壞小鼠腸黏膜屏障,從而引發炎性反應,這與人類IBD由飲食、免疫、感染等多種因素誘發的機制有較大差別,且DSS模型維持時間短,具有一定自愈性,對慢性UC模型而言,需DSS反復刺激才能維持炎癥癥狀[18]。與DSS模型比較,IL-10-/-小鼠由于缺失了免疫相關的IL-10基因而表現出結腸炎癥和病理變化,在停藥后轉為慢性病程不會自愈,能更好地模擬人類IBD,對我們深入探究該疾病的發病機制具有重要意義。本實驗HE染色結果顯示,模型組小鼠結腸上皮出現明顯潰瘍,腺體排列紊亂,有大量炎性細胞浸潤,提示造模成功。
IL-6是一種功能廣泛的多效性細胞因子,在IBD慢性炎性反應的持續發展中起關鍵作用[19]。研究表明,DSS誘導的小鼠血清和結腸組織IL-6增多,表明IL-6參與了UC的發病,可能是監測UC活動度和療效的標志性細胞因子之一[20]。IL-1β屬IL-1家族細胞因子,由單核巨噬細胞和腸上皮細胞產生,可激活致病性T細胞,參與機體炎癥反應[21]。免疫細胞通過調節IBD患者全身細胞因子水平,從而影響局部腸道炎癥和組織損傷,阻斷這些炎癥介質是減輕甚至逆轉IBD癥狀的機制之一[22]。本實驗結果表明,模型組小鼠結腸組織IL-6、IL-1β含量及mRNA表達均明顯升高,證實IL-6、IL-1β參與了吡羅昔康誘導的IL-10-/-小鼠實驗性結腸炎的產生,而健脾清腸方干預能調節小鼠腸道炎癥因子分泌,降低炎癥因子水平。
健脾清腸方由9味中藥組成,每味中藥都含有多種化合物,其中包括已知抗UC的成分。如黃芪主要活性成分黃芪多糖可減輕DSS誘導的小鼠結腸炎嚴重程度,其作用機制可能與抑制核因子-κB激活有關[23];黨參主要有效成分黨參多糖和黨參皂苷能協同調節促炎/抗炎因子平衡,增強機體免疫應答,抑制病原菌定殖,從而減輕UC小鼠結腸炎癥狀[24];馬齒莧提取物可減輕UC小鼠疾病嚴重程度,其作用機制可能與下調炎性因子、激活PPARγ有關[25]。
綜上,健脾清腸方可促進損傷的結腸黏膜修復,可能與下調IL-10-/-小鼠腸道局部IL-6、IL-1β的轉錄與表達水平有關,多種化合物協同效應可能是健脾清腸方發揮治療UC作用的關鍵所在,在今后的研究中仍需進一步探索。