外施GA3對中秋酥脆棗內源激素及果實品質的影響

李昕輝，張 勖，王 森，陳 娟

（中南林業科技大學 經濟林育種與栽培國家林業局重點實驗室，湖南 長沙 410004）

棗樹Zizyphus jujubeMill 為鼠李科Rhamnaceae棗屬Zizyphus植物[1]，原產中國，栽培歷史悠久。通過幾千年的馴化和培育，品種資源豐富[2]，已經成為中國名優特產樹種[3]，也是我國重要的經濟林樹種[4]，不僅食用價值高[5-6]，還可用于加工產業，如棗酒[7]、棗醋、棗飲料[8]等。隨著人們對果實口感的要求越來越高，果實品質的提高也勢在必行［9］，果實品質已成為當前及未來經濟林果樹產業健康發展和市場競爭力的核心。

在果樹實際生產中，通過外施植物激素是提高果實品質的重要方式之一。GA3作為一種植物生長促進激素[10]，以化學信號的方式影響植物內源激素系統，控制植株的生理生化，在植物整個生長發育過程起到重要作用[11]。目前外源GA3在果樹上的應用研究較多，鄭強卿等[12]在花期對棗樹噴施GA3，可以增加果實的口感和單果質量，果實品質提高。李文楊等[9]對葡萄幼果施用外源GA3，可以影響葡萄的生長和發育，誘導葡萄果實膨大，提高了果實的可溶性糖含量。也有研究[13]認為是外源植物激素提高了源對營養物質的輸送能力，增強了源葉的供應能力從而對果實發育產生影響。中秋酥脆棗是“糖棗”芽變選育出的新品種[14]，果大、皮薄，酥脆，可食率高。并具有產量高、適應性強、耐貯運等諸多優點，已成為我國南方地區鮮食棗主栽品種[15]。隨著中秋酥脆棗種植面積的增加，如何保持并改善其果實品質也成為必然趨勢。

本研究以中秋酥脆棗為試驗材料，通過在花蕾期對棗樹外施不同濃度的GA3，研究果實發育不同時期內源激素含量的變化和果實品質的變化，以此探尋提高中秋酥脆棗果實品質的有效方案，為中秋酥脆棗的實際生產和可持續發展提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 試驗地概況

本試驗以南方鮮食棗中的中秋酥脆棗為試驗材料，于2019—2020年在湖南省祁東縣新豐果業中秋酥脆棗試驗基地進行。祁東縣位于湖南省衡陽市西南部、湘江中游北岸，氣候溫和，光照較足，春秋季雨量充足，夏季干旱少雨，土壤類型以紫色土為主。試驗園是南北走向的塊狀田地。試驗材料為9 a 生，樹勢中等，長勢一致，無明顯病蟲害的棗樹。株行距是2 m×3.5 m，試驗樹采用正常的抹芽、摘心、修剪、環割和施肥等棗園管理。

1.2 試驗設計

于2020年6月初進行試驗，于花蕾期分別對棗花噴施400（G1）、200（G2）、100 mg/L(G3)的GA3，以噴施清水為對照（CK），共4 個處理，每處理取3 個重復，并隨機選取試驗園中生長發育一致的15 株棗樹，在每株樹上，選取東、南、西、北4 個方向，長勢一致的二次枝各2 個，每處理每棵樹共選取8 個二次枝作為試驗枝，掛牌標記注明所噴施的激素種類和濃度，在二次枝上摘去已開放的花朵和棗丁，留下處于花蕾期的花朵，選擇晴朗無風天氣，于早上7:00 開始噴施相應濃度的激素。

于噴施后的2 h、4 h、6 h、8 h、12 h、24 h、36 h、2 d、3 d、5 d、10 d、15 d、20 d、30 d、40 d各個時期采樣，花期采花，果期采果，一部分用于相關生理指標的測量，另一部分放入液氮速凍保存，帶回實驗室貯于-80 ℃冰箱備用。

1.3 試驗方法

1.3.1 果實形態特征測定

待中秋酥脆棗開始結果后，每處理每次分別從試驗樹的4個方向上的棗吊采樣，采摘下的果實，立即用游標卡尺測定其縱橫徑，并測定其果形指數；用1/1 000 的電子天平稱量果實單質量，每個果實均測3 次重復。

1.3.2 可溶性糖的測定

采用蒽酮比色法測定成熟果實的可溶性糖含量[16]。將分析純蔗糖在80 ℃下烘干準確稱取1 g，加水溶解轉入100 ml 容量瓶，加入0.5 ml 濃硫酸，用蒸餾水定容，即得1%蔗糖標準液；稀釋得到100 ug/L 蔗糖標準液，取不同量的100 ug/L標準液與蒸餾水加入刻度試管，再次加入0.5 ml的恩酮乙酸乙酯和5 mL 濃硫酸，震蕩沸水浴保溫1 min，冷卻后在630 nm 波長下測定其吸光度，以不同量標準液對應的糖含量為橫坐標，以吸光度為縱坐標，繪制標準曲線。

取樣品提取液進行以上相同操作，在630 nm下測定吸光度，根據標準曲線求出糖含量。計算公式如下：可溶性糖含量（%）=（C·Vt·N）/（W·Vs·104）。

C：標準曲線上求出的糖量ug；Vt：提取液總體積ml；Vs：測定時取用的樣品提取液體積ml；N：稀釋倍數；W：樣品質量g。

1.3.3 可溶性蛋白的測定

采用考馬斯亮藍法測定成熟果實中可溶性蛋白質的含量[16]。分別配置蛋白質含量為0、20、40、60、80、100 ml 的100 ug/ml 濃度的標準蛋白質溶液，加入5 ml 考馬斯亮藍G-250 溶液和蒸餾水，搖勻，靜置2 min，在595 nm 下測定吸光度。以標準蛋白質含量（ug）為橫坐標，以吸光度為縱坐標繪制標準曲線。準確稱取剪碎混合后的鮮樣0.5～1.0 g，研磨成勻漿，沖洗研缽，轉至離心管，在4 000 r/min下離心20 min，將上清液轉入10 ml 容量瓶并定容，即得待測樣品提取液。吸取0.1 ml 提取液，放入刻度試管中，加入5 ml 考馬斯亮藍溶液，混合靜置2 min，在595 nm 下測定吸光度，并通過標準曲線查得蛋白質含量。計算公式如下：樣品中蛋白質含量（mg/g）=（X·Vt·N）/（W·Vs·1 000）。

X：根據樣品吸光度求出的蛋白質質量（ug）；Vt：提取液總體積（ml）；W：樣品鮮質量；Vs：測定時加樣量（ml）；N：稀釋倍數。

1.3.4 可溶性固形物的測定

可溶性固形物使用便攜手持折光儀進行檢測[16]。首先零點校正，打開手持式折光儀蓋板，在棱鏡玻璃面上滴2 滴蒸餾水，蓋上蓋板，檢查視中明暗交界線是否處在刻度的零線上，若與零線不重合，則旋動刻度調節螺旋，使分界線剛好在零線上。測量時打開蓋板，用吸水紙將棱鏡表面的蒸餾水擦干，然后在棱鏡玻璃面上滴2 滴待測液，進行觀測，讀取視野中明暗交界線上的刻度即為果實中的可溶性固形物的含量（%），記錄相同部位的果實，重復測定3～5 次，結果以重復測得的平均值作為最終的實驗結果。

1.3.5 維生素C 的測定

采用二甲苯萃取比色法測定維生素C的含量[16]。首先制作標準曲線，取具塞大試管6 個，分別吸取抗壞血酸標準溶液0、1、2、2.5、3、4 mL，用1%草酸補充至4 mL，各管中抗壞血酸含量相應為0.05、0.10、0.125、0.15、0.20 mg。各管中加入染料溶液2 mL，隨即加入二甲苯5 mL，迅速搖動約0.5 min，靜置后二甲苯與水層分離，將上層二甲苯萃取液輕輕倒入1 cm 比色杯，在500 nm 波長下測定吸光度值。以二甲苯作空白調零，建立標準系列抗壞血酸毫克數與相應的吸光度值的回歸方程。

取2 g 樣品放至研缽中，加入3 mL 2%草酸研磨均勻，然后將勻漿轉至100 mL 容量瓶中，殘渣用1%草酸沖洗后一并倒入容量瓶中，加入30%硫酸鋅1 mL，搖動容量瓶，再加入15%亞鐵氰化鉀1 mL，以除去脂溶性色素，再用1%草酸定容，搖勻過濾到小燒杯中，得到樣品提取液。

取2 ml 提取液至具塞大試管中，依次加入1%草酸2 ml、染料2 ml，二甲苯5 ml，按標準曲線的方法測定吸光度。計算公式如下：抗壞血酸含量（mg/100g）=(X·Vt·100)/(W·Vs)。

X：提取液中含抗壞血酸的mg 數；Vt：提取液總體積ml；W：樣品鮮質量g；Vs：測定用樣品體積ml。

1.3.5 內源激素的測定

采用酶聯免疫法[17-18]測定中秋酥脆棗各個時期的內源激素含量。每處理每時期測3次取平均值。

1.4 數據處理

所有的數據使用Excel 2019 和SPSS 19.0 軟件進行統計和分析。

2 結果與分析

2.1 外源GA3 對中秋酥脆棗內源激素GA3 的影響

不同處理果實的內源GA3含量變化如圖1，中秋酥脆棗在噴施2 h 后各處理的GA3含量發生顯著變化，達到顯著差異水平，其中G1、G2、G3 處理的GA3含量均顯著高于CK，G1 的GA3含量高達262.75 ng/g，CK 的為128.62 ng/g，由高到低依次為G1＞G2＞G3＞CK；噴施后2 h至36 h，各處理的GA3含量基本保持平穩，變化趨勢不大，CK 處理的GA3含量最低；從36 h 開始，各處理的GA3含量發生急劇變化，含量開始快速增加，且增加速率G1＞G2＞G3＞CK，G1、G2、G3 處理在第2 天即達到峰值，分別為433.09、385.11、330.35 ng/g，CK 為199.91 ng/g，G1、G2、G3 第2 天的GA3含量均顯著高于CK；隨后G1、G2、G3 處理的GA3含量開始急劇下降，之后趨于平緩，G1、G2、G3 第2 天到第3 天的下降速率較快，3 d 后的下降速率比較平緩，而CK從36 h 至第5 天期間一直呈緩慢上升趨勢，到第5 天達到峰值為305.41 ng/g，隨后才開始緩慢下降；至第40 天G1、G2、G3、CK 的含量分別為218.58、191.55、199.18、146.65 ng/g，從高到低依次為G1＞G3＞G2＞CK，G1、G2、G3 均顯著高于CK，G2 和G3 無顯著性差異；CK 和G3處理40 d 的GA3 含量與2 h 的無顯著差異，G1、G2 處理40 d 的GA3含量都要顯著少于2 h 的。

圖1 不同處理對中秋酥脆棗GA3 含量的影響加入誤差線Fig.1 Effects of different treatments on the content of GA3 in Mid-Autumn Crispy Jujube

2.2 外源GA3 對中秋酥脆棗內源激素NAA 的影響

不同處理果實的內源NAA 含量變化如圖2，中秋酥脆棗在花后噴施2 h 后各處理的NAA 含量達到顯著差異水平，由高到低依次為G1＞G2＞G3＞CK，其中G1、G2、G3 處理的NAA 含量均顯著高于CK，G1 的NAA 含量高達36.00 ug/g，CK 的為15.11 ug/g；噴施后2 h 至36 h，各處理的NAA 含量基本保持平穩，變化趨勢不大，CK 處理的NAA 含量始終最低；從36 h 開始，各處理的NAA 含量變化顯著，NAA 含量快速增加，且增加速率G1＞G2＞G3＞CK，G1、G2、G3 在第2 天達到峰值，分別為53.98、44.79、42.98 ug/g，CK 處理第2 天的NAA 含量為30.38 ug/g，G1、G2、G3 處理均極顯著高于CK，G2 和G3 無顯著性差異；隨后G1、G2、G3 處理的NAA 含量開始急劇下降，第2 天到第3 天的下降速率較快，3 d 后的下降速率比較平緩，而CK 從36 h 至10 d期間一直呈緩慢上升趨勢，到第10 天達到峰值為41.20 ug/g，隨后才開始緩慢下降；到第40 天G1、G2、G3、CK 的含量分別為29.75、25.14、22.08、24.04 ug/g，從高到低依次為G1＞G2＞G3＞CK，G1、G2 均顯著高于CK，CK 和G3 無顯著性差異。但CK 處理40 d 的NAA 含量顯著高于2 h 的含量，G3 處理40 d 的NAA 含量與2 h 的無顯著差異，G1 和G2 處理40d 的NAA 含量都要顯著低于2 h 的含量。

圖2 不同處理對中秋酥脆棗NAA 含量的影響Fig.2 Effects of different treatments on NAA content of Mid-Autumn Crispy Jujube

2.3 外源GA3 對中秋酥脆棗內源激素ABA 的影響

不同處理果實的內源ABA 含量變化如圖3，中秋酥脆棗在花后噴施2 h 后G1、G2、G3、CK的ABA 含量分別為721.39、456.77、419.29、284.97 ng/g，由高到低依次為G1＞G2＞G3＞CK，且G1 處理顯著高于G2、G3 和CK，G2 和G3 又顯著高于CK，G2 和G3 無顯著性差異；在2 h 至36 h 期間，G1 的ABA 含量呈現先下降后上升的趨勢，在36 h 達到714.75 ng/g，與2 h 的ABA 含量無顯著差異；而G2、G3、CK 在這期間的ABA 含量有所波動，但CK 處理36 h 的ABA含量與2 h 的無顯著差異；G2 和G3 處理36 h 的ABA 含量都要顯著高于2 h 的；CK 處理的ABA含量始終最低；從36 h 開始各處理的ABA 含量變化顯著，ABA 含量快速增加，且增加速率G1＞G2＞G3＞CK，G1、G2、G3 在第2 天達到峰值，分別為1 033.55、993.85、944.75 ng/g，均極顯著高于G1、G2、G3 處理36 h 的ABA 含量；CK 第2 天的ABA 含量為382.28 ng/g，G1、G2、G3 均顯著高于CK，G1、G2 顯著高于G3，G1 和G2無顯著性差異；隨后G1、G2、G3 處理的ABA 含量開始急劇下降，第2 天到第3 天的下降速率較快，3 天后的下降速率比較平緩，而CK 從36 h 至第5 天期間一直呈緩慢上升趨勢，到第5 天達到峰值為887.77 ng/g，隨后才開始緩慢下降；到第40 天G1、G2、G3、CK 的含量分別為641.86、583.87、536.75、469.25 ng/g，從高到低依次為G1＞G2＞G3＞CK，G1、G2、G3 均顯著高于CK。CK、G2、G3 處理40 d 的ABA 含量都要顯著高于2 h 的含量，G1 處理40 d 的ABA 含量顯著低于2 h 的含量。

圖3 不同處理對中秋酥脆棗ABA 含量的影響Fig.3 Effects of different treatments on ABA content of Mid-Autumn Crispy Jujube

2.4 外源GA3 對中秋酥脆棗果實生長發育的影響

不同處理對果實縱徑生長的影響如圖4，在處理10 d 后，CK、G1、G2、G3 各處理的果實縱徑分別為7.61、4.18、5.32、6.52 mm，從大到小依次為CK＞G3＞G2＞G1，其中CK 顯著高于G1 和G2，G1 與G2、CK 與G3 均無顯著性差異；處理10 d 到15 d 期間各處理縱徑的生長速率較快，G1 的生長速率最快，處理15 d 后，各處理縱徑的生長速率開始逐漸減小，但自25 d 開始CK、G1、G2 縱徑的生長速率加快，至40 d 時縱徑大小超過CK，此時CK、G1、G2、G3 的縱徑分別為25.69、27.58、26.34、25.46 mm，各處理間無顯著性差異。

圖4 不同處理對中秋酥脆棗果實縱徑的影響Fig.4 Effects of different treatments on the longitudinal diameter of Mid-Autumn Crispy Jujube fruit

不同處理對果實橫徑生長的影響如圖5，在處理10 d 后，CK、G1、G2、G3 各處理的果實縱徑分別為4.99、2.86、3.70、4.08 mm，從大到小依次為CK＞G3＞G2＞G1，其中CK 顯著高于G1、G2 和G3，G2 與G3 無顯著性差異；處理10 d 到15 d 期間各處理橫徑的生長速率較快，G1 的生長速率最快，處理15 d 后，各處理縱徑的生長速率開始逐漸減小，但自25 d 開始CK、G1、G2 縱徑的生長速率加快，至40 d 時橫徑大小超過CK，此時CK、G1、G2、G3 的縱徑分別為19.90、22.29、19.54、20.35 mm，G1 顯著高于各處理，CK、G2、G3 各處理間無顯著性差異。

圖5 不同處理對中秋酥脆棗果實橫徑的影響Fig.5 Effects of different treatments on the transverse diameter of Mid-Autumn Crispy Jujube fruit

不同處理對果實果形指數的影響如圖6，由此可看出，CK 和G3 果形指數的變化趨勢相同，呈現先降低后上升再降低的趨勢，在第20 天時CK和G3 的果形指數達到最大，分別為1.72、1.73，兩者無顯著性差異，之后CK 和G3 開始下將，下降速率先快后慢，至第40 天時CK 和G3 的果形指數分別為1.29、1.25；G1 和G2 的果形指數變化趨勢相同，呈現先上升后緩慢下將的趨勢，在第15 天時G1 和G2 的果形指數達到最大，分別為1.64、1.59，之后G1 和G2 開始緩慢下降，至第40 天時G1 和G2 的果形指數分別為1.24、1.35；第40 天各處理的果形指數均無顯著性差異。

圖6 不同處理對中秋酥脆棗果形指數的影響Fig.6 Effects of different treatments on fruit-shape index of Mid-Autumn Crispy Jujube

不同處理對果實單質量的影響如圖7，在處理10 d 后，果實生長不明顯，CK、G1、G2、G3 各處理果實的單質量分別為0.199 0、0.103 0、0.062 3、0.049 3 g，從 大 到 小 依 次 為CK＞G1＞G2＞G3，其中CK 顯著高于G1、G2 和G3，G2 與G3無顯著性差異；處理10 d 后各處理果實單質量的生長速率開始較快，G1 的生長速率最大，10 d 至25 d 之間，CK 的果實單質量增加速率和大小始終都是最大的，但自25 d 開始CK、G1、G2 的果實單質量的生長速率加快，至40 d 時果實單質量超過CK，此時CK、G1、G2、G3 的果實單質量分別為5.025 0、5.923 5、5.751 0、4.641 5 g，G1 顯著高于G3，CK、G2、G3 各處理間無顯著性差異。

圖7 不同處理對中秋酥脆棗果實單質量的影響Fig.7 Effects of different treatments on the single fruit mass of Mid-Autumn Crispy Jujube

2.5 外源GA3 對中秋酥脆棗果實品質的影響

不同處理對中秋酥脆棗果實可溶性糖的影響如表1，由表1可看出，G2 處理的可溶性糖含量最大，為24.91%，G2 顯著高于CK，CK、G1、G3 的可溶性糖含量分別為14.48%、9.70%、13.88%，G1 的可溶性糖含量最低，G2 處理的果實可溶性糖含量分別比CK、G2、G3 多10.43%、15.21%、11.03%，G2 顯著高于CK、G1、G3，CK、G1、G3 三者無顯著性差異。

表1 不同處理對中秋酥脆棗果實品質的影響?Table 1 Effects of different treatments on the quality of Mid-Autumn Crispy Jujube fruit

不同處理對中秋酥脆棗果實可溶性蛋白的影響如表1，由表1可看出，G2 處理的果實可溶性蛋白含量最大，為24.99 mg/g，CK、G1、G3 處理的果實可溶性蛋白含量分別為15.27、12.75、17.63 mg/g，G1 處理的果實可溶性蛋白含量最低，G2 處理的果實可溶性蛋白含量分別比CK、G1、G3 多7.35、12.24、7.36 mg/g，顯著高于CK、G1、G3，CK、G1、G3 三者無顯著性差異。不同處理對中秋酥脆棗果實可溶性固形物的影響如表1，可知，CK、G1、G2、G3 處理的果實可溶性固形物含量分別為19.6%、13.8%、17.4%、18.8%，G2、G3 與CK 均無顯著性差異，但CK、G2、G3處理的果實可溶性固形物含量都顯著高于G1，分別比G1 高5.8%、3.6%、5.0%，CK 最高，G1 最低。

不同處理對中秋酥脆棗果實維生素C 含量的影響如表1，由表1可看出，CK、G1、G2、G3處理的果實維生素C 含量分別為426.29、360.00、510.10、421.23 mg/100g，G2＞CK＞G3＞G1，G2 處理的果實維生素C 含量顯著高于CK 和G3，分別比CK 和G3 高83.81、88.87 mg/100g。CK 和G3 無顯著性差異，且都顯著高于G1，分別比G1 多66.29、61.23 mg/100g，G2 處理的果實維生素C 含量最大，G1 最低。

3 討論與結論

GA3作為一種植物激素，可以通過改變植物生長素、赤霉素、脫落酸等內源激素含量，影響內源激素間的平衡來調節自身的代謝水平[19]，調控花、果實及種子等重要器官的形態建成[20]，促進細胞分裂和延伸從而參與果樹生長發育的各個環節[9]。外源GA3可以調節植物的生長發育[21-22]，改變果樹結果的大小年[23]，促進坐果和果實生長，改善果實的品質[24-25]，在果樹生產中具有重要作用[26-28]。

已有研究表明，適當的GA3濃度可以提高果實品質，周詠梅等[29]在花期對巨峰葡萄冬果進行外源赤霉素處理，可以增加冬果風味，提高果實品質；杜曉彧等[30]研究發現用100 mg/L 和200 mg/L的赤霉素處理金絲小棗，能增加果實可溶性糖和可溶性固形物含量，有效提高金絲小棗的產量和品質；溫玥[31]結果表明不同赤霉素處理可以顯著提高油茶的可溶性糖和可溶性蛋白；呂秀蘭等[32]在花后對歐洲甜櫻桃噴施10 mg/g 的GA3，發現可以提高果實的可溶性糖和可溶性固形物含量；楊海燕等[33]也發現用不同濃度的GA3處理藍莓后，藍莓的單質量、縱橫徑、可溶性固形物含量較對照也有所增加，果實品質提高。本試驗結果表明，G2 處理能顯著提高中秋酥脆棗可溶性糖、可溶性蛋白、VC 含量，提高果實品質，與上述研究結果相似。但是也有研究表明，赤霉素濃度過高或過低也會降低果實的品質，薛菀菀等[24]在對紅燈甜櫻桃的處理中發現不同濃度GA3處理降低了可溶性糖、維生素C 和可溶性固形物含量，導致果實品質下降，李慧等[34]在對靈武長棗的研究中發現，于花期噴施外源GA3會降低果實的可溶性固形物、可溶性糖含量。本試驗中G1 處理的可溶性固形物含量顯著低于對照CK 和其他處理，且G1處理的可溶性糖和可溶性蛋白含量都低于對照CK和其他處理，使果實品質下降，這與上述薛菀菀等人研究結果相似。但G1 處理的單質量顯著高于對照CK，這可能是因為高濃度GA3能促進細胞膨大，刺激果實生長，已有研究[35-36]表明外源激素對果實生長發育至關重要，赤霉素可以刺激觸發子房壁細胞的分裂和周圍組織的生長，從而決定果實的大小；丁長奎和章恢志等[37]認為外施GA3處理可以促進前期細胞分裂。果實生長前期細胞分裂決定了細胞數目，花期外施赤霉素處理提高了葡萄幼果細胞分裂素的含量，促進了細胞分裂，使葡萄幼果膨大。本試驗中各處理與對照CK 的縱橫徑、果形指數均無顯著性差異，但楊文莉等［38］以輪臺白杏為研究對象的結果表明，一定濃度的GA3處理能有效促進果實縱徑、橫徑的生長，本試驗結果與其相反，這可能是GA3濃度以及果樹種類的不同所致。

本試驗于花期噴施外源GA3能顯著提高中秋酥脆棗的內源GA3、NAA、ABA 含量，與吳月燕等[39]噴施外源GA3可以提高杜鵑的內源GA3含量的研究結果相似，與丁長奎和章恢志等[37]花前赤霉素處理能提高枇杷果實的生長素相似；但與吳建明等[40]噴施外源GA3降低甘蔗的內源ABA含量的研究結果相反；且處理后的各內源激素的變化趨勢基本一致，與胡芳名等[41]研究結果相符；從噴施后2 h 至36 h 內源激素變化不大，然后開始快速增加達到峰值，之后開始下降。在本試驗中，于花蕾期對棗花進行外源GA3處理后，發現內源GA3、NAA、ABA 的激素含量峰值均比對照提前到達，CK 處理大概在噴施后第5～10 天內源激素含量達到峰值，而處理組在噴施36 h 后內源激素開始快速增加，在第2 天時各處理的內源激素含量就達到峰值，且GA3濃度越高，與對照CK 的差異性越顯著，因為棗花在正常情況下由花蕾期到經歷授粉受精需要1～2 d 時間，而核子形成一般需要3 d 時間，正好在噴施后第5 天左右核子形成，此時內部進行著劇烈的代謝反應，從而導致內源激素含量快速增加，達到最大值，在核子形成后，子房內部趨于穩定，內源激素含量開始緩慢下降[42]。而本試驗通過外源GA3處理后發現子房內部的內源激素含量在噴施后第2 天時達到峰值，比對照CK 提前3 d 左右時間，說明棗花在外源GA3的刺激下核子會提前形成，這與吳月燕等[39]在西洋杜鵑的研究上發現外源GA3對花期有顯著的提前作用相符。

本試驗研究表明，在花蕾期對中秋酥脆棗噴施外源GA3，能顯著提高中秋酥脆棗的內源GA3、NAA、ABA 含量，且能使內源激素含量峰值提前到達。G1、G2、G3 處理的內源激素含量顯著高于對照CK。各處理的果形指數無顯著性差異，說明外源GA3對果形指數沒有顯著影響。G1 處理的果實的縱橫徑、果實單質量最大，但可溶性糖、可溶性蛋白、可溶性固形物和維生素C 含量最小；G2 處理的可溶性糖、可溶性蛋白和維生素C 含量最大；CK 處理的可溶性固形物含量最大。因此在試驗水平范圍內，200 mg/L 的處理能有效提高中秋酥脆棗果實品質；400 mg/L 的GA3濃度反而會降低果實品質。

但是本研究僅使用3 種GA3濃度對中秋酥脆棗處理，其它濃度以及其它外源激素對棗果實品質的影響尚不可知，并且棗核也是影響其品質的一項重要指標，棗核的大小、核型以及硬度都會對棗的發育和果實的品質產生重要影響。因此今后本研究將對中秋酥脆棗的果核進行研究，探索果核生長和果實發育之間的聯系，試圖使棗核變小、變薄、達到可食狀態，為今后棗核的退化提供理論依據。