一種對HepG2細胞生長有抑制作用的玉米六肽

王華麗，王一瑋，王萌，耿偉濤，王金菊，賈龍剛，王艷萍*

（1.國家食品安全風險評估中心，北京 100022；2.天津科技大學食品科學與工程學院，天津 300457）

多肽類物質自從被發現以來，已被證明具有多種生物活性，如抗氧化、抗菌、血管緊張素轉換酶（angiotensin-converting enzyme，ACE）抑制、抗腫瘤、抗炎、增強免疫等。玉米肽主要來源于玉米籽粒經食品工業生產或釀酒工業提純后的玉米淀粉或玉米蛋白粉。 據報道，玉米肽具有許多生物活性，如抗腫瘤[1-4]、抗氧化[5-7]、促進酒精代謝[8-9]、抗高血壓[10-12]、降低血糖[13]、抗疲勞[14]、保肝護肝[15-16]等，特別是玉米肽的保肝護肝作用，如玉米肽可以減輕Con A 誘導的肝損傷[17]、對脂多糖和卡介苗誘導的小鼠肝損傷有保護作用[18]、玉米寡肽可以預防由四氯化碳引起的早期肝損傷[19]等。

在研究中發現，玉米蛋白的酶解產物肽具有很好的抗人肝癌細胞HepG2 生長的活性，但其結構和組成及作用機制尚不清楚。 本研究對玉米蛋白水解物進行分離和純化， 篩選出具有抗腫瘤細胞HepG2 的活性肽，研究其結構特點，并初步研究了其對HepG2 細胞抑制作用。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

玉米肽原料： 武漢新生肽生物科技有限公司；噻唑藍[3-（4，5-dimethyl-2-thiazolyl）-2，5-diphenyl-2-H-tetrazolium bromide，MTT]、 二甲基亞砜（dimethyl sulfoxide，DMSO）：美國Sigma 公司；雙抗（青霉素-鏈霉素）、高糖DMEM 完全培養液、1640 完全培養液：美國Gibco 生物科技公司；胎牛血清（fetal bovine serum，FBS）： 美國Hyclone 生物科技公司；5-氟尿嘧啶（5-fluorouracil，5-FU）：上海生工生物工程有限公司；其它所有試劑均為分析純。

1.2 儀器與設備

ThermoFisher Multiskan GO 全波長酶標儀、 尼康Nikon ECLIPSE Ti-S 熒光倒置顯微鏡、150i 型CO2細胞培養箱：美國Thermo 公司；BS-100A 型自動部份收集器：上海滬西分析儀器廠有限公司；YZ1515x 型恒流泵： 蘭格恒流泵有限公司；DELTA-320pH 計： 法國METTLER－TOLEDO 公司；HR60-ⅡA2 型生物安全柜： 青島海爾股份有限公司；AF100 電子制冰機：SANYO 制冰系統有限公司；JA2003 型電子分析天平：上海精科天平廠；RE-3000 旋轉蒸發儀： 上海亞榮生化儀器廠。

1.3 方法

1.3.1 分離純化

將玉米肽溶解在0.05 mol/L 的Tris-HCl 緩沖溶液中，加到DEAE-FF 柱（1.5 cm×10 cm）上，并以4 mL/min的流速加入0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mol/L 的NaCl-Tris-HCl 溶液，用作洗脫液，每40 min 一個梯度。 洗脫液由自動收集器以2 min 的間隔自動收集。 并通過酶標儀檢測每管吸光度。 根據峰圖收集玉米肽組分，濃縮并冷凍干燥。

用Sephadex G-15 柱（1.0 cm×70 cm）進一步純化得到的玉米肽組分，將玉米肽溶解在蒸餾水中，并用蒸餾水以1 mL/min 的流速洗脫該柱。 洗脫液為蒸餾水，收集與上述相同。 收集純化的玉米肽組分，濃縮并冷凍干燥。

1.3.2 結構鑒定

使用高效液相色譜串聯質譜電噴霧法（liquid chromatography-electrospray ionization tandem mass spectrometry，LC-ESI-MS/MS）進行結構鑒定。使用de novo 數據分析軟件對質譜原始數據進行解析。

1.3.3 多肽合成

委托江蘇強耀公司，采用固態合成的方法進行多肽合成。

1.3.4 細胞培養

人肝癌細胞株HepG2 培養在含10% 胎牛血清（FBS）和1%雙抗溶液（青霉素-鏈霉素混合溶液）的DMEM 培養基中， 人正常肝細胞株L-02 培養在血清含量和抗生素含量與上述條件相同的1640 培養基中，置于培養箱中常規培養，根據細胞狀態傳代[20-21]。

1.3.5 細胞活力測定

用MTT 法分析玉米肽對HepG2 癌細胞的殺傷作用[22]。胰酶消化對數生長期的細胞，加入完全培養液制成單細胞懸液，按照血細胞計數法調整細胞密度為5×104個/mL。將細胞接種到96 孔板中，常規培養24 h，每孔加入200 μL 含有不同濃度待測樣品和陽性對照（5-FU 的細胞培養液）， 空白組只加入200 μL 基礎培養液，每組6 個平行。培養24 h，吸去廢棄培養液，每孔加入5 mg/mL MTT 溶液20 μL 和180 μL 基礎培養液，繼續培養4 h 后，吸出舊培養液，加入磷酸鹽緩沖溶液（phosphate buffer saline，PBS） 沖洗， 每孔加入150 μL DMSO，置于酶標儀中孵育10 min，測試其在570 nm 處的吸光度值，按照下式計算抑制率。

式中：A對照和A空白分別表示陽性對照組和空白組在570 nm 處的吸光度值。

1.4 數據分析

本研究中獲得的所有數據將使用統計程序Excel進行分析，SPSS 結果以平均±標準誤表示。 不同處理之間的差異性顯著通過方差分析（analysis of variance，ANOVA），用Fisher 最小顯著性差異方法進行顯著性比較，顯著性水平為p<0.05 或p<0.01。

2 結果與分析

2.1 玉米肽的分離純化

2.1.1 離子交換層析分離玉米肽

實驗室前期采用MTT 比色法檢測樣品對不同癌細胞的抑制率， 對19 種生物活性肽或蛋白進行了初篩，發現玉米低聚肽對肝癌細胞的抑制率較高，且對人正常肝細胞的毒性較小。 本研究在前期工作基礎上，對玉米肽進行分離和純化。

玉米肽經DEAE-FF 離子交換層析分離后得到兩個組分，如圖1 所示，命名為D-1 和D-2。收集D-1 和D-2 組分，冷凍干燥后置于-20 ℃低溫冰箱保存備用。

圖1 玉米肽經DEAE-FF 陰離子交換柱洗脫曲線Fig.1 Chromatomap of corn peptide separated by DEAE-FF

2.1.2 分子篩層析方法分離玉米肽

玉米肽經DEAE-FF 陰離子交換柱分離出來的兩個組分D-1 和D-2， 使用Sephadex G-15 分子篩層析進一步分離。經Sephadex G-15 分子篩層析，以D-1 為分離樣品，檢測波長為214 nm，分離出兩個組分，命名為D-1-1 和D-1-2。經Sephadex G-15 分子篩層析，以D-2 為分離樣品，檢測波長為214 nm，分離出兩個組分，命名為D-2-1 和D-2-2。 收集D-1-1、D-1-2、D-2-1 和D-2-2 組分， 冷凍干燥后置于-20 ℃低溫冰箱保存備用。

具體分離曲線見圖2 和圖3。

圖2 D-1 經Sephadex G-15 分離曲線Fig.2 Chromatomap of D-1 separated by Sephadex G-15

圖3 D-2 經Sephadex G-15 分離曲線Fig.3 Chromatomap of D-2 separated by Sephadex G-15

Sephadex G-15 分子篩層析的分離范圍在分子量1 500 Da 以下，所以D-1-1、D-1-2、D-2-1 和D-2-2 4 個組分內的肽理論上應該是分子量比較小的玉米肽。

2.2 不同組分對HepG2 的抑制作用

采用MTT 法檢測溶于不含胎牛血清的基礎培養液、 濃度為1 000 μg/mL 的D-1、D-2、D-1-1、D-1-2、D-2-1 和D-2-2 6 個玉米肽組分對人肝癌細胞HepG2 的抑制作用以及對人正常肝細胞L-02 的毒性作用，結果如圖4 所示。

圖4 對人肝癌細胞HepG2 和人正常肝細胞L-02 生長的抑制率Fig.4 Inhibition rate of growth of human liver cancer cell HepG2 and human normal liver cell L-02

由圖4 可知，作用時間為24 h 時，濃度為1000μg/mL的D-1、D-2、D-1-1、D-1-2、D-2-1 和D-2-2 6 種玉米肽不同組分對人肝癌細胞HepG2 細胞均有抑制作用，其中D-2-2 對人肝癌細胞HepG2 抑制率最高，接近陽性對照抑癌藥物5-FU。 而且D-2-2 對人正常肝細胞的毒性作用低于5-FU。 所以選擇D-2-2 進行結構鑒定與抑制HepG2 活性的研究。

2.3 抑制HepG2 活性肽的結構分析

玉米活性肽的結構分析結果見表1。

表1 玉米活性肽的結構分析Table 1 Potentially active peptides

圖5 和圖6 分別為液相分離D-2-2 組分的總離子流圖和LPPYLP 的二級質譜圖。

圖5 D-2-2 組分總離子流圖Fig.5 D-2-2 components total ion chromatography diagram

圖6 LPPYLP 的二級質譜圖Fig.6 Tandem mass spectrum of LPPYLP

D-2-2 組分分析中， 相對豐度排名前5 的肽段有LPPYLP、LPFYPQ、LPPYLSP、LAPPYY、LPPYY，可以分析出這5 條肽段都含有脯氨酸、 亮氨酸和酪氨酸，且“LP”這個片段出現頻率較高。氨基酸結構為“LPPYLP”的玉米肽多肽匹配度及相對豐度均較高，組成該肽的氨基酸均為疏水性氨基酸且其氨基酸序列中脯氨酸占比為50%，亮氨酸占比為33%。 最終篩選出氨基酸結構為“LPPYLP”的玉米肽，命名為CPs-6，研究其對人肝癌細胞HepG2 的抗腫瘤活性。

2.4 玉米六肽CPs-6 的抑制HepG2 活性驗證

通過固相合成法按照之前篩選出CPs-6 的氨基酸結構LPPYLP 進行了合成， 得到了純度≥95%的合成肽CPs-6，采用MTT 法檢測活性，結果如圖7 所示。

圖7 CPs-6、CP、D-2-2 組分對人肝癌細胞HepG2、Hep3B 和人正常肝細胞L-02 的抑制率Fig.7 Inhibition rate of CPs-6，CP，D-2-2 components on human liver cancer cells HepG2，Hep3B and human normal liver cells L-02

作用濃度為1 000 μg/mL，作用時間為24 h 時，玉米六肽CPs-6 相比分離前的玉米肽，對HepG2 細胞的抑制率由30%提高到50%，提高了20%。 對Hep3B 細胞的抑制率由10%提高到42%， 抗腫瘤活性提高了32%。 玉米六肽CPs-6 相比較D-2-2 組分對L-02 的毒性由36%降低到17%，損傷減少了19%。

3 結論

采用離子交換和葡聚糖凝膠層析方法分離、純化玉米肽的混合物，鑒定出其中具有抑制HepG2 細胞生長活性的玉米活性短肽，其一級結構為LPPYLP（CPs-6）；以5-Fu 為對照，玉米六肽CPs-6 在1 000 μg/mL，作用24 h， 對HepG2 細胞的抑制率達到50%；對Hep3B 細胞的抑制率為42%，且對人正常肝細胞的毒性作用依然維持在一個比較低的水平。 本研究結果為玉米肽的護肝保肝作用提供了理論依據，為肝癌的治療藥物和預防肝病的功能性食品的開發提供了理論基礎。