兩種桫欏屬植物組培快繁技術研究

郎月婷 馬長旺 于靖 郭芮 嚴岳鴻 楊東梅

摘? 要：以陰生桫欏（Alsophila latebrosa）、大葉黑桫欏（Alsophila gigantea）為研究對象，利用綠色球狀體（Green Globular Bodies，GGB）途徑，展開快繁體系的研究，以篩選最優的繁殖體系。結果表明：（1）陰生桫欏的快繁體系中，1/10 MS是孢子萌發最優培養配方;1/2 MS+NAA 0.3 mg/L+6-BA 0.5 mg/L，蔗糖30 g/L，瓊脂6.5 g/L是誘導配子體產生GGB的最優培養配方;1/2 MS+KT 0.1 mg/L+IAA 0.1 mg/L是其誘導GGB分化的最優培養配方;孢子體幼苗在泥炭土∶菜園土∶珍珠巖=3∶3∶1的基質中成活率最高。（2）在大葉黑桫欏的快繁體系中，1/10 MS為相對較好的培養基;1/2 MS+0.3 mg/L IBA是誘導產生GGB的最優培養配方;1/2 MS+0.3 mg/L NAA對GGB分化的促進作用最顯著;1/2 MS+0.1 mg/L IAA+0.3 mg/L NAA的組合可有效促進孢子體幼苗生根。（3）通過配子體誘導GGB途徑，2種桫欏屬植物從孢子萌發到幼苗移栽的整個培養過程為6～8個月。可見，GGB途徑不僅能提高繁殖系數，也能大大縮短桫欏屬植物的繁殖時間，為實現桫欏屬植物的工廠化育苗奠定了基礎。

關鍵詞：陰生桫欏;大葉黑桫欏;GGB;組織培養

中圖分類號：Q813.1????? 文獻標識碼：A

Technology for Rapid Propagation in Vitro of Two Alsophila Species

LANG Yueting1，2， MA Changwang1，2*， YU Jing1，2， GUO Rui1，2， YAN Yuehong3， YANG Dongmei1，2*

1. College of Horticulture， Hainan University， Haikou， Hainan 570228， China; 2. Key Laboratory for Quality Regulation of Tropical Horticultural Plants of Hainan Province， Haikou， Hainan 570228， China; 3. Shanghai Chenshan Botanical Garden / Shanghai Chenshan Plant Science Research Center， Chinese Academy of Sciences， Shanghai 201602， China

Abstract： Alsophila latebrosa and A. gigantea both have high scientific value and ornamental value. The construction of the rapid propagation system of them by gametophy-induced Green Globular Bodies （GGB） pathway was studied. In the rapid propagation system of A. latebrosa， the most optimal culture formula for spore germination was 1/10MS， the best culture medium for inducing gametophytes to produce GGB was 1/2MS+NAA 0.3 mg/L+6-BA 0.5 mg/L， sucrose 30 g/L and agar 6.5 g/L， the most suitable formula for GGB differentiation factor was 1/2MS+KT 0.1 mg/L+NAA 0.1 mg/L， and the survival rate of sporophyte seedlings was the highest in the substrate （peat∶garden soil∶perlite = 3∶3∶1）. In the fast propagation system of A. gigantea， the relatively suitable medium was 1/10MS， the most optimal formula for GGB induction was 1/2MS+0.3 mg/L IBA， NAA of 0.3 mg/L had the most significant effect on GGB differentiation， the combination of 0.1 mg/L IAA+0.3 mg/L NAA could promote the rooting the sporophyte seedlings. It only took 6-8 months by gametophy-induced GGB pathway for the culture of the two Alsophila species， from spore germination to seeding transplanting. Therefore， this pathway not only increased the propagation coefficiency， but also greatly reduced the propagation time of Alsophila species， which could enhance the industrial seeding of Alsophila species.

Keywords： Alsophila latebrosa; Alsophila gigantea; green globular bodies; tissue culture

DOI： 10.3969/j.issn.1000-2561.2021.06.010

桫欏科（Cyatheaceae）隸屬于蕨類植物門（Pteridophyta）薄囊蕨綱（Leptosporangiopsida）桫欏目（Cyatheales），全世界有3屬600多種，其中中國有2屬14種2變種，分別是桫欏屬（Alsophila）和白桫欏屬（Sphaeropteris），主要分布在云南、廣西、廣東、海南、臺灣等地[1-3]。桫欏科植物古老而特別，是現存的唯一的樹蕨類植物，對物種起源、進化和植物地理區系等研究具有重要價值，在古地質學、古生物學及古氣候學等學科，常被當做理想的研究材料。另外，桫欏科植物形態優美，觀賞性高，在廣州、深州等地區已經被廣泛應用[4-5]。可見，桫欏科植物既有科學價值，又有很高的觀賞價值。但由于生境破壞、過度采挖，桫欏科植物的生存現狀不容樂觀。因此，有必要對其展開繁殖技術研究，利用組織培養的方法構建快繁體系，一方面保護野生的桫欏科植物資源，另一方面促進桫欏科植物在園林上的應用。

前人對桫欏科植物繁殖生物學的研究，主要集中在孢子形態、配子體發育等基礎研究，而有關桫欏科植物快繁體系構建方面的研究較少，主要有莫新壽等[6]、陳封政等[7]、張祖榮等[8]利用無菌播種的途徑，培育桫欏科植物幼苗。目前尚未見到通過綠色球狀體（Green Globular Bodies，GGB）途徑培養桫欏科植物幼苗的報道。GGB是一種類似于蘭科原球莖的組織[9]。跟其他組培途徑相比，通過GGB途徑能大大提高蕨類植物的增殖率[10]。Haruzo等[9]發現通過GGB生長的速率比通過叢生芽階段繁殖更高。因此后來GGB組培繁殖途徑在多種蕨類植物中得到應用，如鳥巢蕨（Neottopteris nidus）、烏毛蕨（Blechnum orientale）、鳳尾蕨（Pteris cretica）等[11-14]。由于前人研究結果顯示不同的培養基和植物生長調節劑對組培苗的生長發育有顯著性影響[15]，故本研究對其進行單因子試驗、雙因子交叉試驗及多因子正交試驗設計。

本研究以桫欏屬植物作為研究對象，選取了陰生桫欏（Alsophila latebrosa）、大葉黑桫欏（Alsophila gigantea），利用GGB途徑展開快繁體系的研究，以篩選最優的繁殖體系，為桫欏屬植物的大規模生產和應用提供可靠依據。由于先采集到陰生桫欏的孢子葉，后采集到大葉黑桫欏的孢子葉，因此在進行陰生桫欏的組織培養實驗基礎上，另行設計了大葉黑桫欏組織培養的實驗方案。

1? 材料與方法

1.1? 材料

2種桫欏屬植物的孢子均采集于海南島的五指山、吊羅山（瓊中太平鄉段）、黎母山。將采集的孢子葉放到紙袋中并通風晾干，然后將自然散落的孢子收集于離心管內，放置于4 ℃冰箱中儲存備用。

1.2? 方法

1.2.1? 陰生桫欏快繁體系? （1）孢子的消毒及赤霉素預處理。在離心管中加入陰生桫欏孢子與無菌水，充分震蕩后靜置12 h;以4 000 r/min離心1 min，吸走上層無菌水，重復3次;加入75%酒精并充分震蕩，無菌水清洗3次;再加入4%～5% NaClO溶液，充分震蕩后，離心4 min，用蒸餾水清洗4次;分別把不同濃度的GA3（表1）加入離心管中，處理3 min，再用無菌水清洗3次，最后每個處理制成3管孢子懸濁液，3個處理共9管。

（2）不同赤霉素預處理、蔗糖濃度和無機鹽濃度對孢子萌發的影響。把經過不同濃度GA3預處理的孢子懸濁液，接種在不同蔗糖濃度和無機鹽濃度的培養基上（表1）。采用L9（34）正交設計實驗，共9個處理，每個處理3皿，共27皿，每皿接種0.2 mL孢子懸濁液。瓊脂6.5 g/L，pH 5.8。將培養皿放入培養室中進行培養，培養室溫度（232）℃，光強15～20 μmol/（m2·s），光照周期12 h/d。接種后每周觀察1次，孢子萌發后采用光學顯微鏡觀察，統計孢子的萌發率。孢子萌發率計算方法：隨機取10個顯微視野，統計孢子總數和萌發的孢子數，計算平均孢子萌發率。

（3）NAA、6-BA對GGB誘導的影響。本實驗設置0、0.1、0.3、0.5 mg/L 4個水平的NAA濃度和0、0.2、0.5、1.0 mg/L 4個水平的6-BA濃度進行雙因子交叉實驗，共16個處理，每個處理接種10皿，重復3次。基本培養基為1/2 MS，蔗糖30 g/L，瓊脂6.5 g/L，pH 5.8。接種后每周觀察1次，3～4周后繼代1次，觀察并記錄GGB大小、數量，計算GGB誘導率和增殖倍數。

（4）KT、IAA對GGB分化的影響。本實驗選擇2種植物生長調節劑KT（0、0.1、0.5、1.0 mg/L，4個濃度水平）、IAA（0、0.1、0.5、1.0 mg/L，4個濃度水平）設計雙因子交叉實驗。將GGB團切分，接種到不同植物生長調節劑及濃度組合的培養基中，共16個處理，每個處理接種5瓶，重復3次。接種后每周觀察1次，統計GGB分化率。

（5）不同培養基質對無根苗生根的影響。將GGB分化得到的無根孢子體幼苗接種到以下5種培養基中：（1）1/2 MS;（2）1/2 MS+IBA 0.2 mg/L+ NAA 0.2 mg/L;（3）1/2 MS+BA 0.05 g/L+IBA 0.05 g/L;（4）1/2 MS+IBA 0.2 mg/L;（5）1/2 MS+NAA 0.2 mg/L。蔗糖30.0 g/L，瓊脂6.5 g/L，pH 5.8。每個處理接種5瓶，每瓶接種3株幼孢子體。接種后每周觀察1次，觀察記錄生根數，測量根長、株高，統計生根率。

（6）不同培養基質對孢子體幼苗移栽成活率的影響。當孢子體幼苗長到株高3～4 cm、根長2～3 cm時，打開培養瓶并在培養室煉苗3 d，再放在自然光照下煉苗7 d，然后移栽至4種培養基質中（蛭石∶石沙=2∶1;菜園土∶泥炭土=2∶1;菜園土∶珍珠巖=2∶1;泥炭土∶菜園土∶珍珠巖=3∶3∶1）。每種基質移栽3盆，每盆10株，每周觀察記錄存活情況。

1.2.2? 大葉黑桫欏快繁體系? （1）孢子懸濁液的制備。制備方法同1.2.1（1），但不進行赤霉素預處理。

（2）不同無機鹽濃度對孢子萌發的影響。接種方法與培養條件同1.2.1（2），但大葉黑桫欏僅接種在不同無機鹽濃度的培養基上，無機鹽濃度為MS、1/2 MS、1/5 MS、1/8 MS、1/10 MS，共5個水平。

（3）NAA、IBA、KT、6-BA對GGB誘導的影響。通過前期預實驗，篩選出1/2 MS為GGB誘導的基本培養基，選擇2種細胞生長素NAA、IBA和2種細胞分裂素KT、6-BA，其濃度均設置為0、0.1、0.3、0.5 mg/L，4個濃度水平，共16個處理。每個處理接種5瓶，每瓶接種5個配子體。蔗糖為30 g/L，瓊脂7 g/L，pH 5.8。接種后，每10 d觀察1次，把產生GGB的配子體移植到新的培養瓶里，完成繼代增殖，記錄GGB大小、數量，計算GGB誘導率。

（4）NAA、IBA、KT、6-BA對GGB分化的影響。植物生長調節劑為NAA、IBA、KT、6-BA，濃度均設置為0、0.1、0.3、0.5 mg/L，4個濃度水平，共16個處理。每個處理接種5瓶，每瓶接種5個GGB團。基本培養基設置為MS，蔗糖為30 g/L，瓊脂6.5 g/L，pH 5.8。接種后每周觀察1次，3周后統計GGB分化率。

（5）IAA、NAA對無根苗生根的影響。通過預實驗，選擇2種植物生長調節劑IAA、NAA，利用雙因子交叉分組設計實驗。這2種植物生長調節劑濃度水平都設置為0、0.1、0.3、0.5 mg/L，4個濃度水平，共16個處理。將無根的孢子體幼苗接種到不同濃度植物生長調節劑組合的培養基里，基本培養基為MS，蔗糖30.0 g/L，瓊脂6.0 g/L，pH 5.8。每個處理接種5瓶，每瓶接種5個孢子體幼苗。接種后每周觀察1次，3周后觀察、記錄生根數，測量根長、株高，統計生根率。

（6）煉苗和移栽。方法同1.2.1（6），但僅移栽到泥炭土∶菜園土∶珍珠巖=3∶3∶1的培養基質中。

1.3? 數據處理

采用Excel 2016軟件進行數據記錄和統計，使用SPSS 22.0軟件對結果進行分析，顯著性水平設置為α=0.05。

2? 結果與分析

2.1? 陰生桫欏快繁體系

2.1.1? 不同濃度的赤霉素、蔗糖、無機鹽對孢子萌發的影響? 表2顯示，蔗糖、無機鹽和赤霉素3因素的P值均大于顯著性水平，即3個因素均對孢子萌發無顯著性影響，因此，進行直觀分析。表3顯示，3個因素中，無機鹽因素的極差R值最大，說明無機鹽濃度對孢子萌發的影響最大，而且無機鹽濃度為1水平（1/10 MS）時，其對應的K1值最大，為41.22，說明低濃度無機鹽條件利于孢子萌發。其次是蔗糖因素，其極差R值僅次于無機鹽，而且蔗糖濃度為1水平（0 g/L）時，對應的K1值最大，為42.67，顯示孢子在低糖條件下萌發效果較好。赤霉素因素的極差R值最小，說明赤霉素對陰生桫欏孢子的萌發的影響最小，而且赤霉素為1水平（0 mg/L）時，對應的K1值最大，說明不用赤霉素處理有利于孢子萌發，加入赤霉素反而抑制孢子萌發。3個因素的K1值都最大，這說明赤霉素、蔗糖、無機鹽分別在1水平時，對孢子萌發的促進效果最優。萌發率結合萌發時間來看，1/10 MS培養基是陰生桫欏孢子萌發的最優培養基，萌發率可達62.33%，2周后開始萌發（圖1A、圖1B）。

2.1.2? NAA、6-BA對誘導配子體產生GGB的影響? 在誘導率方面，方差分析結果顯示，NAA、6-BA不同濃度組合對配子體誘導GGB具有顯著影響;進行多重比較結果顯示，處理10的誘導率最高為46.67%，與其他處理之間有顯著差異（處理5～7除外）。在增殖倍數方面，方差分析結果顯示，各處理之間GGB增殖倍數具有顯著差異，說明2種植物生長調節劑不同濃度的組合對GGB的增殖有顯著影響;多重比較結果顯示，處理10的增殖倍數最高為3.67，與其他處理有顯著差異（處理2、5～7及14除外）。從GGB生長情況來看，隨著植物生長調節劑濃度的增加，GGB會褐化或配子體會變黃，但濃度過低時，GGB呈團松散且生長緩慢。大部分GGB集中在4周～6周之間被誘導出來，極少數在9周之后才誘導出來（表4）。綜上所述，配子體誘導產生GGB的最適植物生長調節劑組合為處理10，即NAA 0.3 mg/L+ 6-BA 0.5 mg/L，誘導率可達46.67%，增殖倍數可達3.67，6周左右誘導出GGB，且GGB團長勢良好，呈綠色球狀（圖1C～圖1F）。

2.1.3? KT、IAA對誘導GGB分化的影響? 方差分析結果表明，各處理之間GGB分化率具有顯著差異。處理1、4、8、11、13的分化率都為0，說明高濃度的KT和IAA都對GGB的分化有抑制作用;KT濃度超過0.5 mg/L或者小于0.1 mg/L都不利于GGB的分化，IAA濃度超過0.5 mg/L或者小于0.1 mg/L也不利于GGB的分化，只有2種植物生長調節劑在0.1～0.5 mg/L之間時對GGB 的分化有促進作用。從多重比較結果來看，處理6與其他處理之間具有顯著性差異，促進GGB分化的效果最理想（表5）。分化率結合分化時間來看，誘導GGB分化的最適植物生長調節劑組合為處理6，即KT 0.1 mg/L+IAA 0.1 mg/L，其誘導分化率為38.90%，GGB分化產生幼孢子體芽苗的時間為7周（圖1G～圖1H）。

2.1.4? 不同培養基對無根孢子體幼苗生根的影響? 方差分析結果顯示，各處理間具有顯著差異。多重比較結果顯示，處理2與其他處理差異顯著，平均生根率最高，為77.80%。所有處理的大部分幼苗在株高長到3～4 cm的時候，根有2～3 cm長，每株有2～4根。生根時間為3～4周，其中處理2的生根時間為3周（表6）。因此，陰生桫欏孢子體幼苗最適的生根植物生長調節劑配方為處理2，即1/2 MS+IBA 0.2 mg/L+NAA 0.2 mg/L（圖1 I）。實驗還發現，在不加入外源植物生長調節劑的處理1具有較高的生根率，與添加了植物生長素和細胞分裂素的處理3、4、5的生根率相當。這說明植物生長調節劑需要控制適當的濃度，才能促進孢子體幼苗的生根，否則會起抑制作用。

2.1.5? 不同培養基質對孢子體幼苗移栽成活率的影響? 方差分析結果顯示，基質對幼苗的成活率具有顯著性影響。幼孢子體苗在處理4（泥炭土∶菜園土∶珍珠巖=3∶3∶1）的成活率最高，4周后最高成活率可達67.73%（表7）（圖1J～圖1L）。

2.2? 大葉黑桫欏快繁體系

2.2.1? 無機鹽濃度對孢子萌發的影響? 方差分析結果顯示，無機鹽濃度對大葉黑桫欏的孢子萌發沒有顯著性影響（表8）。不同鹽濃度下，孢子都能萌發，萌發率為24.53%～40.66%，萌發時間為14～28 d。其中1/10 MS處理下的孢子萌發率最高，為40.66%，萌發時間也較早，2周開始萌發（圖2A、圖2B）。

2.2.2? 不同植物生長調節劑對誘導GGB的影響? 結果顯示，IBA、NAA、KT、6-BA這4種植物生長調節劑對誘導大葉黑桫欏的配子體產生GGB都有促進作用;在不添加植物生長調節劑時，GGB誘導率為0。方差分析結果顯示，處理之間GGB誘導率和增殖倍數差異顯著。從表9可見，2種細胞生長素中，IBA誘導產生GGB的效果強于NAA;2種細胞分裂素中6-BA的誘導效果比KT更好，但6-BA隨著濃度的提高，誘導率大幅下降，說明低濃度的6-BA對誘導GGB有良好效果。多重比較結果顯示，處理E2（IBA，濃度為0.3 mg/L）與其他處理（E14除外）均有顯著差異，誘導率最高，達52.00%，其次為E14（6-BA，濃度為0.5 mg/L），誘導率為46.47%。而處理E5（NAA，濃度為0.1 mg/L）、E8（NAA，濃度為1.0 mg/L）、E15（6-BA，濃度為1.0 mg/L）的誘導率為0。從增殖倍數來看，最大增殖倍數為E2處理，增殖倍數為4.67，與其他處理（E4、E13、E14除外）有顯著差異，其次為E14（6-BA，濃度0.5 mg/L），增殖倍數為4.44。從GGB出現的時間來看，大量產生GGB的時間集中在28～ 35 d，其中E2處理28 d出現GGB。因此，IBA和6-BA這2種植物生長調節劑對GGB增殖的促進作用較好。0.3 mg/L IBA是誘導大葉黑桫欏GGB分化和增殖的最優植物生長調節劑配方，誘導率可達52.00%，增殖倍數為4.67（圖2C～圖2I）。

2.2.3? 植物生長調節劑對GGB分化的影響? 結果顯示，2種細胞生長素中NNA對GGB分化的誘導效果要強于IBA，2種細胞分裂素中6-BA誘導GGB分化的效果要強于KT，4種植物生長調節劑中NAA對GGB分化的刺激作用最明顯。方差分析結果顯示，不同植物生長調節劑及濃度處理對GGB分化率具有顯著影響（表10）。多重比較結果顯示，處理F6（NAA 0.3 mg/L）對大葉黑桫欏GGB分化的促進作用最顯著，與其他處理（F14除外）之間有顯著差異。但是，隨著4種植物生長調節劑濃度的增加，GGB的分化率降低，甚至出現抑制分化的情況。如處理F4（IBA 1.0 mg/L）、F11（KT 1.0 mg/L）、F12（KT 2 mg/L）等分化率為0，出現了明顯的抑制分化作用。這說明高濃度的植物生長調節劑對GGB的分化具有抑制作用。綜上所述，0.3 mg/L NAA對大葉黑桫欏GGB分化的促進作用最顯著，分化率最高可達45.33%（圖2J）。

2.2.4? 不同濃度IAA、NAA對無根苗生根的影響? 方差分析結果顯示，不同濃度的IAA和NAA組合對生根率具有顯著影響。多重比較結果顯示，處理G10（0.1 mg/L IAA+0.3 mg/L NAA）的生根率最高，達52.00%，與其他處理有顯著的差異;處理G13（0 mg/L IAA+0.5 mg/L NAA）的生根率最低，為21.33%（表11）。可見，0.1 mg/L IAA+0.3 mg/L NAA的組合對刺激大葉黑桫欏的孢子體幼苗生根的作用最優，生根率可達52.00%。

2.2.5? 煉苗和移栽? 煉苗和移栽的方法與陰生桫欏一樣，但是大葉黑桫欏幼苗移栽15 d后，大部分幼苗枯萎（圖2K～圖2L）。

3? 討論

本研究結果顯示，赤霉素對陰生桫欏的孢子萌發沒有顯著影響，這與前人的研究結果不同。前人的研究結果顯示，桫欏科植物有休眠期，需要用赤霉素打破休眠期[16]，但是本研究發現，未經過赤霉素處理的陰生桫欏的孢子反而具有更高的萌發率。由于在陰生桫欏的實驗中，發現赤霉素對孢子的萌發沒有積極效應。因此，在大葉黑桫欏的實驗中僅考慮不同無機鹽濃度對孢子萌發率的影響。

本研究發現陰生桫欏的孢子在低糖、低鹽濃度的培養基中萌發率較高。在蔗糖濃度方面，與前人的研究結果一致，劉保東等[17]、孫曉丹[18]的研究表明，低濃度蔗糖有利于腎蕨（Nephrolepis auriculata）、桂皮紫萁（Osmunda cinnamomea var. asiatica）的孢子萌發;在無機鹽濃度方面，本研究結果與前人的相反，前人的研究表明，粗梗水蕨（Ceratopteris pteridoides）[19]、球子蕨（Onoclea sensibilis）[20]等在高鹽濃度的培養基中孢子萌發情況比在低鹽濃度中好。本研究中不同濃度的無機鹽對大葉黑桫欏孢子萌發的影響效果不顯著，1/10MS培養基相對效果較好，這與徐艷等[21]的實驗結果相似，這可能是因為大葉黑桫欏孢子內含有足夠的氮源，或者在孢子萌發過程中會分解產生部分氮，所以在組織培養時不需要外加太多氮源。

本研究中在陰生桫欏的GGB分化階段，分化率偏低。這可能與分化階段所用的植物生長調節劑種類、濃度有關。前人研究表明，植物生長調節劑對蕨類植物誘導GGB和GGB分化起著關鍵性的作用，不同種類和濃度對植物誘導GGB和GGB分化的影響不同[22]。本研究通過前期大量預實驗，篩選了2種誘導GGB效果較好的植物生長調節劑NAA、6-BA和2種對GGB分化有良好促進作用的植物生長調節劑KT、IAA，進行雙因子交叉實驗，結果表明不同濃度的植物生長調節劑組合對誘導GGB和GGB分化有促進作用，但誘導率最高不逾50%，增殖位數不及4，分化率最高不逾40%。因此，日后還應進行濃度梯度更小的雙因子實驗，甚至多因子實驗，以篩選最合適的植物生長調節劑組合和濃度，進一步提高陰生桫欏的GGB誘導率和GGB分化率。與陰生桫欏不同的是，在探究不同植物生長調節劑對大葉黑桫欏誘導GGB的影響實驗中，采用單因子設計實驗。結果顯示，IBA對誘導GGB的效果最優，誘導率為52.00%，增殖倍數為4.67，分化率達45.33%，均高于陰生桫欏。可見，植物生長調節劑對桫欏屬植物誘導GGB、GGB分化的作用，具有種間差異。另外，在大葉黑桫欏GGB分化實驗中，GGB在沒有植物生長調節劑處理的情況下分化率極低，為8.0%。但加入高濃度的KT和IBA卻明顯抑制GGB分化，這說明GGB分化需要有低濃度的外源植物生長調節劑刺激，但高濃度植物生長調節劑反而抑制分化。

不管是單因子實驗，還是雙因子實驗，本研究所用的2種桫欏屬植物GGB誘導率和分化率都在50%左右，明顯高于水鱉蕨（Asplenium delavayi）、日本腎蕨（Nephrolepis cordfolia）。在水鱉蕨、日本腎蕨的組織培養過程中，前人往細胞分裂素BA中添加NAA、IBA等細胞生長素，誘導GGB的效果最理想，但誘導率只有30%左右[23-24]，這說明利用GGB途徑繁殖桫欏屬植物可行，但是日后還需要設置雙因子交叉實驗，或者多因子實驗，以篩選高效的GGB誘導配方。

在陰生桫欏幼苗移栽實驗中，基質為泥炭土∶菜園土∶珍珠巖=3∶3∶1時，幼苗成活率最高，達60%以上。而在大葉黑桫欏幼苗移栽時，采用這個基質配方，其移栽后成活率遠遠低于陰生桫欏，這可能是由于陰生桫欏于12月進行移栽，移栽時氣溫適宜;而大葉黑桫欏于9月份進行移栽，移栽時氣溫過高。移栽成活率低的具體原因還需要進一步研究。

參考文獻

[278]?? Sam S J. Ferns and allied plants， with special reference to tropical America. R. M. & A. F. Tryon[J]. Brittonia， 1983， 35（1）： 54.

[279]?? 嚴岳鴻， 張憲春， 馬克平. 中國珍稀瀕危蕨類植物的現狀及保護[C]//中國生物多樣性保護與研究進展Ⅶ——第七屆全國生物多樣性保護與持續利用研討會論文集， 北京： 氣象出版社， 2006： 86-96.

[280]?? 金效華. 中國珍稀瀕危植物圖鑒[M]. 北京： 中國林業出版社， 2014： 13-26.

[281]?? 王美娜， 陳紅鋒， 王發國. 廣州野生觀賞蕨類植物資源調查及園林應用[C]//中國觀賞園藝研究進展2008——中國園藝學會觀賞園藝專業委員會2008年學術年會論文集， 北京： 中國林業出版社， 2008： 22-27

[282]?? 戴耀良， 許建新， 雷江麗， 等. 華南地區鄉土觀賞蕨類植物規模繁殖及園林應用初探[C]//中國公園協會2009年論文集， 北京： 《中國公園》編輯部， 2009： 83-85.

[283]?? 莫新壽， 劉瑞強. 桫欏繁殖與移栽技術研究[J]. 廣東林業科技， 2004， 20（1）： 20-23.

[284]?? 陳封政， 李書華， 向清祥. 活化石植物桫欏的資源開發及保護[J]. 時珍國醫國藥， 2007， 18（3）： 567-568.

[285]?? 張祖榮， 張紹彬. 珍稀瀕危黑桫欏的孢子繁殖技術初探[J]. 北方園藝， 2010（7）： 187-190.

[286]?? Haruzo H， Wakanori A， Shigetoshi S. In vitro propagation of Nephrolepis cordifolia Prsel[J]. Scientia Horticulture， 1987， 32（1-2）： 105-113.

[287]?? 王? 洋. 扇葉鐵線蕨孢子離體培養及其快繁體系的建立[D]. 武漢： 華中農業大學， 2008.

[288]?? Fernández H， Bertrand A M， Sáchez-Tamés R. Micropropagation and phase change in Blechnum spicant and Pteris ensiformis[J]. Plant Cell， Tissue and Organ Culture， 1996， 44（3）： 261-265.

[289]?? Fernandez H， Bertrand A M， Sanchez-Tames R. Influence of tissue culture conditions on apogamy in Dryopteris affinis sp. affinis[J]. Plant Cell， Tissue and Organ Culture， 1996， 45（1）： 93-97.

[290]?? Marjana Camloh， Barbara Vilhar， Jana ?el， et al. Jasmonic acid stimulates development of rhizoids and shoots in fern leaf culture[J]. Journal of Plant Physiology， 1999（6）： 798-801.

[291]?? Luo L Q， Zhang J， Luo X， et al. Rapid propagation of Pteris vittata L. via tissue culture[J]. Agricultural Science， 2012， 13（1）： 68-70.

[292]?? 胡計紅， 陳桂信， 楊惠婷， 等. 屏南龍源‘四季杜鵑古樹組培快繁技術研究[J]. 熱帶作物學報， 2020， 41（4）： 755-763.

[293]?? 蔣勝軍， 曾? 霞， 王勝培， 等. 海南白桫欏孢子組織培養的研究[J]. 熱帶農業科學， 2002， 22（6）： 9-12.

[294]?? 劉保東， 檀龍顏. 腎蕨和鐮葉腎蕨配子體發育及孢子繁殖研究[J]. 園藝學報， 2009， 36（4）： 545-552.

[295]?? 孫曉丹. 桂皮紫萁孢子繁殖技術的研究[D]. 長春： 吉林農業大學， 2019.

[296]? 孫? 銳， 鄧子厚， 劉勝祥， 等. 粗梗水蕨孢子無菌繁殖的研究[J]. 華中師范大學學報（自然科學版）， 2008， 42（4）： 620-623.

[297]?? 張婷婷. 球子蕨無菌繁殖技術及華北蹄蓋蕨耐旱性的研究[D]. 北京： 北京林業大學， 2013.

[298]?? 徐? 艷， 石? 雷， 劉? 燕， 等. 大葉黑桫欏孢子的無菌培養[J]. 植物生理學通訊， 2004， 40（1）： 72.

[299]?? 袁? 玲. 兩種觀賞蕨類植物離體快繁體系的建立[D]. 武漢： 華中農業大學， 2007.

[300]?? 張光飛， 蘇文華. 水鱉蕨幼葉的離體快速繁殖[J]. 云南大學學報（自然科學版）， 2002， 24（3）： 234-236.

[301]?? 程? 磊， 浦冰潔， 周根余. 若干理化因子對日本腎蕨綠色球狀體分化及生長的影響[J]. 熱帶亞熱帶植物學報， 2001， 9（2）： 142-148.

責任編輯：沈德發