周惠
(泰州市第三人民醫院,江蘇 泰州,225300)
目前對于MDPV 藥物的檢測,主要集中在氣相色譜-質譜聯用法、液相色譜法等。液相色譜-質譜(LC-MS)技術屬于較為先進技術,目前被廣泛用于食品、醫藥等方面。1 次進樣后可以獲取二級以及三級子離子的全掃描質譜圖,定性分析時,獲取的化合物結構信息比四級桿質譜多,由此液相色譜-電噴霧離子阱質譜聯用技術已成為代謝物結構分析的常用方法。本次研究主要探討采用液相色譜-電噴霧離子阱質譜聯用技術,構建MDPV 藥物代謝產物的鑒定方法,對于代謝動力學、病毒學等方面均具有一定指導意義。
1.1 樣品來源檢測樣品為亞甲基二氧吡咯戊酮(MDPV),來源于安徽省公安廳合肥市公安局提供;SD 大鼠,均為雄性。
1.2 試驗條件色譜條件:色譜柱(150mm×2.1mm,5μm),流動相為醋酸銨-甲酸緩沖溶液,甲醇為B 為洗脫液,0-1min,10%B,1-6min,10%B-90%B,6-14min,90%B,0.2ml/min,10 μL。質譜條件為電噴霧離子化源、正離子檢測,全離子掃描,選擇反應監測掃描模式,毛細血管350℃,霧化氣30.00L/min,加熱輔助氣8.00L/min,吹掃氣2.00L/min。
1.3 體外代謝與樣品處理過程配置MDPV 樣品濃度,加入蒸餾水溶液調整樣品濃度為50.0μg/ml,制成標準品溶液,獲取適量標準品溶液于試管,再加2.0mg/ml 蛋白質溶液的SD 大鼠肝微粒體S9組分KCl-PBS 緩沖溶液,劑量為200μL,混勻,再試管置于水浴鍋內進行孵育處理,再予以適量的NADPH KCl-PBS溶液,獲取MDPV 孵育體系,MDPV(5.0 μ g/ml)、NADPH(1.0mmol/L)、肝微粒體蛋白質(1.0mmol/L)。將其置于水浴鍋孵育,加乙腈,混勻,冰浴,離心,14000r/min,過有機濾膜,采用LC-MS 檢測。
2.1 構建MDPV 及代謝物的LC-MS 方法優化實驗條件下MDPV分析的LC-MS 圖譜,見圖1。
2.2 MDPV 以及其代謝物的LC-MS 分析色譜圖MDPV 以及其代謝物的LC-MS 分析色譜圖。見圖2。

圖2 MDPV 以及其代謝物的LC-MS 分析色譜圖
2.3 大鼠肝微粒體S9 組分中MDPV 濃度孵育時間變化趨勢隨著大鼠孵育時間的增加,MDPV 濃度逐漸下降,孵育時間至120min時,MDPV 濃度無明顯變化,由此,最終確定孵育最佳時間為120min。見圖3。

圖3 大鼠肝微粒體S9 組分中MDPV 濃度孵育時間變化趨勢
2.3 MDPV 代謝物的MSn圖譜化合物M2色譜保留時間9.64min,m/z 為264.3,經過二級串聯質譜分析,m/z 為193.0,經過三級串聯質譜分析,m/z 為175.0。見圖4。

圖4 MDPV 代謝物的MSn圖譜
本次研究采用多級串聯質譜法,確定MDPV 及其代謝物,與MDPV 樣品色譜保留時間以及各級色譜行為,最終鑒定為MDPV。二級串聯質譜m/z 為207.0,對于MDPV 在一致條件下獲取的準分子離子以及二級串聯質譜,三級串聯質譜基峰離子具有一致性,表明二者存在相似骨架結構,因為MDPV 的化學結構與MDMA相似,MDMA 在體外代謝產物主要為HMMA,而HMMA 與MDMA 質譜基峰離子相差2Da,由此,進一步推測該化合物為MDPA 的代謝物去亞甲基-甲基化產物1-(4-羥基-3-甲氧基)苯基-2-吡咯戊酮。化合物M2m/z 為264.3,對于MDPV 基峰降低12Da,經過二級串聯質譜分析,得到m/z193.0,經過三級串聯質譜分析,獲取碎片離子m/z175.0,推測M2 化合物為MDPV 的去亞甲基產物1-(3,4-二羥基)苯基-2-吡咯戊酮。本次研究鑒定結果與肖惠貞等人研究具有一致性[3]。化合物M3 和M4m/z 相同,對于MDPV 增加了16Da,三級質譜碎片分別為191.1、258.2,色譜保留的時間也存在差異,進一步推測M3 和M4 為同分異構體[4]。
本次研究所構建的體系成本小,設備要求低,另外可以在較短時間檢測代謝產物,便于提取、分離、純化等,本研究采用LC-MS 分析藥物代謝產物,一定程度為代謝動力學、病毒學等提供參考。