賀燕,王益軍,張蘇珍,葛敏,譚海榮
(連云港市畜產品質量監督檢驗測試中心 江蘇連云港 222001)
呋喃唑酮又稱痢特靈,是人工合成的廣譜抗菌藥物,屬硝基呋喃類藥物,它有非常好的抗菌效果和藥代動力學的特性[1],曾經被廣泛應用于畜牧業,它還可以作為豬、禽類和水產促生長的添加劑。但在長時間的實驗室研究過程中發現,硝基呋喃類的藥物和代謝物均可使實驗動物發生癌變和基因突變,因此,此類藥物禁止在治療和飼料中使用[2]。自1993年起,歐盟范圍內便禁止在動物飼養中使用硝基呋喃類藥物鹽酸呋喃它酮、呋喃妥因和呋喃西林,而呋喃唑酮也從1995年起被禁用。我國農業部第235號公告中也規定動物性食品中呋喃唑酮檢出限為不得檢出[3]。
硝基呋喃類藥物在體內迅速代謝,在組織中與細胞膜蛋白結合長期持續存留,因此在分析此類藥物的殘留時以分析代謝物為主[4]。目前,動物組織中呋喃唑酮代謝物(AOZ)殘留分析主要采用高效液相色譜法(HPLC-MS)、液相色譜串聯質譜法(LC-MS/MS)和酶聯免疫法(ELISA)。前者由于需要復雜的儀器設備、繁瑣的前處理過程及對檢驗人員的高技能要求,不適合現場監控和大量樣本的篩查,而以抗原抗體特異性反應為基礎的酶聯免疫法具有靈敏度高、特異性強、操作簡便等優點,已在農獸藥殘留檢測中得到廣泛應用[1]。本文利用酶聯免疫方法對禽蛋中AOZ的殘留量進行檢測,為禽蛋中呋喃唑酮類藥物殘留監控提供依據。
禽蛋市場隨機采樣。
呋喃唑酮代謝物(AOZ)ELISA檢測試劑盒(包括包被有偶聯抗原的96孔酶標板),質量濃度分別為0、25、50、100、200、400ng/L的AOZ標準液,酶連接物,抗體液,底物/發色劑溶液,反應終止液,洗滌緩沖液(鹽),2-硝基苯甲醛購自德國拜發公司,其余試劑均為國產分析純。
勻漿機(九陽JYL-C 16V);電子天平(德國賽多利斯);數顯振蕩搖床(德國IKA);恒溫培養箱(上海博泰);漩渦混合器(德國IKA,MS3 basic);高速冷凍離心機(德國sigma);氮吹儀(美國Organomation);微量移液器(單道20~200μL、200~1,000μL,多道50~300μL);微孔板酶標儀(賽默飛Mu ltiskan FC 450nm);超高效液相三重四級桿串聯質譜儀(美國Waters公司)。
1mol/LHC l溶液:量取90mLHC l,緩慢注入910mL水中;10mmol/L2-硝基苯甲醛:7.6mg 2-硝基苯甲醛溶于5mL二甲基亞砜;0.1mol/LK2HPO4:準確稱取14.6g K2HPO4溶于1,000mL水;1mol/LNaOH:準確稱取40g NaOH溶于1,000mL水。
1.4.1 樣品前處理稱取(1.00±0.05g)勻漿后的樣品至50mL聚苯乙烯離心管中,加入3.9mL蒸餾水,0.5mL 1mol/L的HC l和200μL 10mmol/L 2-硝基苯甲醛振蕩混合;50℃條件下孵育3h或者37℃條件下隔夜(約16h)孵育;加入5mL 0.1mol/LK2HPO4,0.4mL 1mol/LNaOH和5mL乙酸乙酯,振蕩混合30s(樣品加熱至最多50℃,以獲得更好的分層效果);離心10min/3000g/室溫(20~25℃);取2.5mL乙酸乙酯層(上層)溶液加入到新的容器中(樣品濃度過高時,要適當減少乙酸乙酯的取樣量),蒸干,干燥物用1mL正己烷溶解,加入1mL樣品緩沖液徹底混合;然后離心10min/3000g/室溫(20~25℃);取50μL下層水相進行檢測。
1.4.2 檢測原理檢測的基礎是抗原抗體反應,微孔板包被有針對AOZ抗體的捕獲抗體。加入標準品、樣品溶液、AOZ酶連接物及AOZ抗體,游離的AOZ與AOZ酶連接物競爭AOZ抗體結合位點(競爭性酶免疫分析)。同時AOZ抗體也與微孔板上固定的捕獲抗體結合,沒有結合的AOZ酶連接物在洗滌步驟中被除去。將底物/發色劑加入到孔中并且孵育,結合的酶連接物將無色的發色劑轉化為藍色的產物。加入反應終止液后使顏色由藍色轉變為黃色,在450nm處測量。吸光度值與樣品中的AOZ濃度呈反比。
1.4.3 ELISA檢測步驟使用之前將所有試劑回溫至室溫(20~25℃);將足夠標準品和樣品檢測所需數量的孔條插入微孔板架,均做兩個平行實驗,記錄下標準品和樣品的位置;加入50μL標準品或處理好的樣品溶液到相應的微孔中,不同樣品或標準品的添加換用新的移液頭;加入50μL酶連接物溶液,再加入50μL抗體溶液,輕輕振蕩充分混合,置20~25℃避光環境下孵育1h;倒出孔內液體,將微孔板架倒置在吸水紙上拍打(每輪拍打3次)以保證完全除去孔中的液體,加入250μL洗滌緩沖液,充分洗滌3次,每次間隔10s,用吸水紙拍干;加入100μL底物/發色劑,輕輕振蕩充分混合,置20~25℃避光環境下孵育15min;加入反應終止液100μL,輕輕振蕩充分混合,于450nm處測量吸光度(在加入反應終止液后30min內讀數)。
1.4.4 標準曲線的建立使用R-BiopHa rm德國拜發公司專門為RIDASCREEN系列產品設計的應用軟件來進行結果分析。對單次檢測建議使用Log it/log曲線進行結果分析,對兩次或多次平行檢測應該使用Cub ic Sp line曲線進行結果分析。
按照酶聯免疫分析步驟,分別測定濃度為0、25、50、100、200、400ng/LAOZ標準液的吸光度值,采用RIDASCREEN數據分析軟件建立標準曲線如圖1。

圖1 RIDASCREEN數據分析軟件建立標準曲線
取空白雞蛋樣本,以0.2、0.4、0.6μg/kg 3個添加量的AOZ對其進行添加回收試驗,ELISA法測定的準確度以回收率表示,精密度以變異系數表示,每個添加量做5個平行,結果見表1。
由表1可知,以0.2、0.4、0.6μg/kg 3個添加量的AOZ對空白雞蛋進行添加,其加標回收率為77.7%~101.8%,批內變異系數為0.4%~7.0%。

表1 試劑盒的準確度和精密度實驗(n=3)
對20份空白樣品進行檢測,從標準曲線上得出樣品質量濃度,以20份樣品AOZ質量濃度的平均值(X )和標準差(s)表示檢測限(MDL),即MDL=X +3s,該方法對雞蛋樣品的檢測限為0.1μg/kg。
試劑盒特異性由交叉反應率表示。由表2可知,該試劑盒與AOZ原藥有一定的交叉反應,交叉反應率為1.2%,這可能是因為AOZ與其原藥有類似的結構,而對其他呋喃類藥物及其代謝物的交叉反應率均較低,表明本試劑盒具有良好的特異性。

表2 試劑盒特異性試驗
利用ELISA和LC-MS/MS對20份(分別編號01~20)禽蛋樣品進行測定,結果見表3,用ELISA法檢測,陰性樣品18份,陽性樣品2份(含量大于0.5μg/kg),相同樣品經LC-MS/MS方法(農業部781號公告-4-2006動物源食品中硝基呋喃類代謝物(AOZ)殘留量的測定高效液相色譜-串聯質譜法)測定后,18份陰性樣品均為陰性,2份陽性樣品均為陽性,陰、陽性判斷結果一致。比較結果見表3。
由表3可知,用ELISA法與LC-MS/MS法的測定結果相符,沒有發現假陽性和假陰性樣品,ELISA法適用于禽蛋中AOZ殘留量檢測的篩選。

表3 ELISA法與LC-MS/MS法檢測結果比較
在AOZ的檢測中,一般先加入衍生化試劑進行衍生。這主要是由于AOZ的分子量較小,不易被檢測。而在37℃或50℃酸性條件下,加入衍生化試劑2-硝基苯甲醛(使用前必須新鮮配制),形成衍生產物2-NP-AOZ,分子量增大,大大提高了檢測靈敏度。目前采用的有常規衍生化方法,即在37℃孵育過夜,37℃孵育過夜至少16h,導致衍生化過程是整個樣本處理的限速環節;高溫短時間方法,即在50℃孵育3h,可縮短樣本處理時間。加入乙酸乙酯后振蕩不能過于激烈且時間不宜過長,否則容易乳化,影響樣品分層。
運用酶聯免疫法檢出超過曲線最高點的陽性樣品,這時得到的數據往往不準確,只能起到定性的作用,為提高檢測結果準確性,根據所得吸光度值判斷需要稀釋倍數,稀釋后重新測定。
由表4可知,超出曲線最高點的陽性樣品,可通過減少提取液乙酸乙酯的量,增大樣品稀釋倍數,或者直接稀釋樣品檢測液,保證稀釋后的檢測濃度在標準曲線范圍內,才能得到相對準確的檢測結果。

表4 不同稀釋倍數對檢測結果的影響
運用酶聯免疫法對禽蛋中AOZ殘留進行篩選,能在短時間內檢測幾十到上百個樣品,且不需要復雜的儀器設備,樣品前處理簡單,檢測成本低,是藥物殘留檢測發展的趨勢,但目前篩選法的檢測標準極少,檢測限(即陽性濃度標準)不統一,給檢測結果判定帶來一定困難,對篩選可疑結果需用確證方法進行確證。酶聯免疫法作為一種快速篩選手段,在現場監控和基層檢測中有著廣闊的推廣應用前景[5]。
通過酶聯免疫法對禽蛋中AOZ殘留進行檢測,測定結果準確,樣品的最低檢測限為0.1μg/kg,當添加0.2、0.4、0.6μg/kg時,加標回收率為77.7%~101.8%,變異系數為0.4%~7.0%。陽性樣品經液相色譜串聯質譜方法確證,檢測結果相符,沒有發現假陽性和假陰性樣品。酶聯免疫檢測方法,檢測靈敏度和定量線性范圍均達到檢測限量要求,且樣本前處理操作快速簡單、檢測成本低、儀器設備投資少,適合于大量樣本中AOZ殘留量檢測的快速篩選。█