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抗組蛋白H2 A抗體間接ELISA法的建立和臨床初步應用*

2021-11-24 02:54:28王海永徐敏李曉軍南京中醫藥大學附屬醫院檢驗科南京1000東部戰區總醫院中心實驗科南京1000
臨床檢驗雜志 2021年10期
關鍵詞:血清檢測

王海永,徐敏,李曉軍(1.南京中醫藥大學附屬醫院檢驗科,南京1000;.東部戰區總醫院中心實驗科,南京1000)

類風濕關節炎(rheumatoid arthritis,RA)是一種慢性的、炎癥性的自身免疫性疾病[1],病因復雜,發病機制尚不清楚。目前,多項研究證實RA患者體內存在針對瓜氨酸化組蛋白的自身抗體[2-3]以及針對天然組蛋白的自身抗體[4-5],提示組蛋白可能與RA的發生與發展有關。本課題組前期利用質譜和生物信息學分析技術,對RA患者關節滑膜組織中的蛋白質進行鑒定和分析發現組蛋白H2A在RA患者滑膜組織中有差異性表達[6]。為進一步驗證質譜鑒定的結果,本研究通過在大腸埃希菌中原核表達并純化組蛋白H2A,以H2A作為靶抗原,建立檢測血清中抗H2A抗體的間接ELISA技術,比較分析RA患者和健康人對照血清中的抗H2A抗體水平。

1 材料與方法

1.1 研究對象 收集自2016年2月至2017年1月東部戰區總醫院的門診和住院RA患者共50例,其中男性13例,女性37例,年齡(47.4±16.8)歲,納入條件符合2010年美國風濕病學學會/歐洲抗風濕病聯盟(ACR/EULAR)的診斷標準[7],排除合并嚴重內外科疾病以及其他自身免疫病如系統性紅斑狼瘡、多發性硬化癥以及干燥綜合征的病例。健康人對照50例,來自本院體檢健康者,男性13例,女性37例,年齡(38.6±12.3)歲,排除有明顯自身免疫傾向的健康者。抽取研究對象早晨空腹靜脈血3~5 mL,3 500 r/min離心5 min分離血清,血清貯存于-70℃凍存備用,無脂血、溶血等情況。

1.2 菌株、載體、主要試劑和儀器 表達宿主菌BL21(DE3)(北京TransGen生物技術公司),表達載體pET28a(東部戰區總醫院中心實驗室保存),PCR引物(美國Invitrogen公司),限制性內切酶Eco RⅠ、NdeⅠ、Taq DNA聚合酶、T4 DNA連接酶、PCR反應緩沖液和核酸標準相對分子質量(大連TakaRa公司),質粒抽提純化試劑盒及DNA凝膠電泳回收試劑盒(美國Axygen公司),異丙基硫代半乳糖苷(IPTG,德國Merck公司),Ni-resin(德國Novagen公司),BCA蛋白質定量試劑盒(上海碧云天公司),抗H2A抗體陽性血清、HRP-抗人IgG(美國Sigma公司),PTC-200 PCR基因擴增儀(美國MJResearch公司),酶聯儀、蛋白質電泳儀(美國Bio-Rad公司),超聲粉碎儀(美國Sonics公司)。

1.3 引物設計與合成 根據H2A基因cds序列和pET28a表達載體的MCS位點,設計特異性PCR引物,用于擴增H2A基因,H2A-F1:5′-TTCCATATGTC TGGACGTGGCAAGCAGGGA-3′,H2A-R1:5′-CCGG AATTCTTACTTGCCCTTCGCCTTGTGGT-3′;其 中H2A-F1中含有NdeⅠ酶切位點;H2A-R1中含有Eco RⅠ酶切位點。

1.4 H2A/pET28a重組質粒的構建 RT-PCR擴增H2A基因,利用限制性內切酶Eco RⅠ/NdeⅠ同時雙酶切PCR產物和pET28a表達載體,目的片段經T4 DNA連接酶連接后轉化BL21(DE3)感受態細胞,挑取單菌落,抽提質粒,測序驗證,驗證正確的重組質粒命名為H2A/pET28a。

1.5 組蛋白H2A的原核表達及純化 利用IPTG誘導融合蛋白的表達,完畢后收集菌體,超聲波破碎,離心并分別收集上清液和沉淀,SDS-PAGE鑒定蛋白質表達情況。確定蛋白質正確表達后,純化H2A重組蛋白。SDS-PAGE檢測蛋白質純度,BCA蛋白質定量試劑盒測定蛋白質濃度。

1.6 重組蛋白的western blot鑒定 將純化的重組蛋白H2A經SDS-PAGE后轉PVDF膜,50 g/L脫脂奶粉4℃封閉過夜,用抗核抗體檢查中抗組蛋白抗體陽性血清及HRP-抗人IgG分別作為第一抗體、第二抗體進行溫育,加入化學發光試劑進行顯色反應。

1.7 間接ELISA法的建立 以純化的H2A蛋白為包被抗原,HRP-抗人IgG為二抗,建立檢測抗H2A抗體的間接ELISA方法。用棋盤滴定法確定間接ELISA的最佳包被濃度(10、5、2.5、1μg/mL),最佳血清稀釋度(1∶100、1∶200、1∶400、1∶800),最佳二抗稀釋度(1∶5 000、1∶10 000、1∶20 000、1∶40 000)。(1)包被:將H2A用包被緩沖液稀釋至5μg/mL,包被聚乙烯ELISA板,每孔100μL,置4℃過夜,用PBST洗板3次,每次3 min,拍干;(2)封閉:每孔加100μL用PBST稀釋的50 g/L脫脂奶粉封閉,置于4℃過夜,用PBST洗板3次,每次3 min,拍干;(3)加血清樣本:將RA組、健康人對照組、陽性對照和陰性對照血清按1∶400稀釋,每個樣本重復3孔,每孔加入100μL,置37℃反應1 h,洗板3次,每次3 min,拍干;(4)加二抗:將HRP-抗人IgG按1∶20 000稀釋,每孔加入100μL,置37℃反應1 h,洗板5次,每次3 min,拍干;(5)顯色與終止:加顯色液A和顯色液B,室溫避光反應10 min,加終止液終止反應;(6)讀板:酶聯儀檢測A450nm值。

1.8 統計學分析 采用GraphPad Prism 6軟件進行統計學分析。RA患者與健康人對照組數值用均數±標準差表示,比較采用獨立樣本t檢驗。率的比較用卡方檢驗。以P<0.05為有統計學意義。繪制ROC曲線,用ROC曲線下面積(AUCROC)評估抗H2A抗體作為診斷指標的潛力。

2 結果

2.1 重組質粒H2A/pET28a的鑒定 經PCR擴增、限制性酶切、DNA連接、轉化、克隆鑒定等步驟,成功構建重組質粒H2A/pET28a,圖1為重組質粒 H2A/pET28a的DNA測序結果。

圖1 重組質粒H2 A/pET28a的DNA測序結果

2.2 重組蛋白的原核表達與純化 原核表達質粒H2A/pET28a體外誘導表達后經SDS-PAGE檢測分析,結果顯示,在相對分子量15 000處有預期大小的蛋白質條帶,且該條帶在上清液和沉淀中都有表達,結果見圖2(1~5)。進一步利用His標簽蛋白純化試劑盒對H2A重組蛋白進行純化,SDS-PAGE結果顯示,在相對分子量15 000處有單一條帶,灰度分析顯示蛋白質純度大于90%,結果見圖2(6~8泳道)。

圖2 重組H2A蛋白的表達與純化

2.3 重組蛋白的western blot鑒定 用抗組蛋白抗體陽性血清鑒定純化的重組H2A蛋白,western blot結果顯示,在相對分子量15 000處有一條清晰的條帶,見圖3。

圖3 重組H 2A蛋白的western blot鑒定

2.4 間接ELISA反應條件的優化 用棋盤滴定法對實驗條件進行優化。選擇強陽性血清的A值在1.0左右、陰性血清的A值小于0.1的條件作為最適條件,結果顯示,H2A蛋白最佳包被濃度為5μg/mL,待測血清最佳稀釋度為1∶400,HRP-抗人IgG最佳稀釋度為1∶20 000。

2.5 特異性考察 方法特異性考察采用抗體阻斷試驗。選擇抗H2A抗體強陽性的血清作1∶400稀釋,并加入H2A抗原至終濃度分別為0、0.5、1、2μg/mL,37℃溫育1 h后,12 000 r/min離心10 min,取上清液進行抗H2A抗體檢測。結果顯示,經H2A吸收過的強陽性血清,其A值隨加入的H2A量的增加而降低,當H2A的終濃度達到2μg/mL時,A值從1.207降低至0.405,阻斷率為66.4%,見圖4。

圖4 特異性阻斷抑制試驗

2.6 重復性試驗 批內重復性試驗:使用同一批次純化的H2A蛋白包被酶聯板,對10份高、中、低3個濃度的抗H2A抗體樣本進行檢測,每個樣本重復3孔。批間重復性試驗:使用3個批次純化的H2A蛋白包被酶聯板,檢測同樣的10份血清樣本。計算批內和批間變異系數。結果顯示,批內變異系數分別為5.1%、7.5%和6.6%,批間變異系數分別為7.7%,9.5%和8.4%,均小于10%,表明該方法重復性較好。

2.7 抗H2A抗體用于RA診斷的效果 按照優化的反應條件對50份RA組和50份健康人對照組血清進行測定,以不同的A值制作ROC曲線,計算ROC曲線下面積(AUCROC)。抗H2A抗體診斷RA的AUCROC為0.884,標準誤為0.030,P<0.01,95%可信區間為0.819~0.948。當A=0.494時,敏感性為84%,特異性為80%,敏感性、特異性最高,故以0.494為cut-off值。

2.8 臨床樣本檢測 用建立的間接ELISA方法測定50份RA組和50份健康人對照組血清,結果顯示,50例RA患者血清的A值為0.930±0.546,50例健康人對照組血清的A值為0.367±0.203,RA患者血清抗H2A抗體水平明顯高于健康人對照組,差異有統計學意義(t=6.834,P<0.01)。該法測得RA患者血清抗H2A抗體的陽性率為84%(42/50),明顯高于健康人對照組20%(10/50),差異有統計學意義(χ2=41.026,P<0.01)。

3 討論

2010年ACR/EULAR將類風濕因子(RF)和抗瓜氨酸化肽抗體(ACPA)納入RA的分類標準中,但是RF的特異性較差,還可見于其他的風濕性疾病、慢性炎癥患者以及老年人中[8];ACPA對RA診斷具有較高的特異性,但是仍有約20%的漏診率。因此,對RA相關生物標志物的研究仍很需要。本研究基于質譜發現,挑選差異蛋白H2A進行驗證,探索抗H2A抗體與RA的關系。

本研究構建了含有His標簽的H2A/pET28a原核表達載體,以便對重組蛋白進行純化,純化的H2A蛋白經western blot鑒定具有良好的反應原性。因此,本實驗利用純化的H2A蛋白作為包被抗原,通過對抗原濃度、血清及酶標二抗稀釋度等條件進行優化,建立檢測抗H2A抗體的間接ELISA方法。方法學特性驗證結果顯示,該方法的特異性和重復性均滿足臨床實驗室的要求;對臨床樣本進行檢測發現,RA患者血清抗H2A的敏感性為84%(42/50),特異性為80%(40/50),RA組血清抗H2A抗體的陽性率明顯高于健康人對照組,表明可以用間接ELISA檢測RA患者血清中抗H2A抗體的水平。由于每次復性的重組蛋白在重復性和穩定性上可能略有差異,以及市場上沒有商品化的診斷試劑盒可供參考,這可能會導致建立的ELISA方法存在一定局限性,所以后續仍需進一步擴大樣本量,完善優化部分指標,以期獲得更為可靠的應用數據。

綜上,本研究利用原核表達系統體外表達了重組H2A蛋白,并且建立了檢測血清抗H2A抗體的間接ELISA方法,并在臨床樣本中作初步驗證,為后續相關研究提供了依據。

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