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馬齒莧降尿酸及腎臟保護作用的研究

2022-01-19 08:09:06呂有為潘昱辰孫銘鍵王曼力杜培革安麗萍
食品工業科技 2022年2期
關鍵詞:小鼠水平

呂有為,潘昱辰,孫銘鍵,姚 航,王曼力,杜培革,安麗萍

(北華大學藥學院,吉林吉林 132000)

高尿酸血癥(Hyperuricemia,HUA)是一種常見的代謝性疾病,最常見的病因是尿酸(Uric acid,UA)分泌過多和(或)排泄不足[1]。眾所周知,高尿酸血癥是痛風的潛在危險因素,也是糖尿病[2]、高血壓[3]、動脈粥樣硬化[4]和腎臟疾病[5]等多種代謝疾病的危險因素。近年來,由于過量食用富含嘌呤的食物,高尿酸血癥和痛風的發病率在全球范圍內上升。美國健康與營養調查(NHANES)在2015~2016年進行的研究顯示,美國男性和女性高尿酸血癥的患病率分別為20.2%和20.0%[6]。據報導,中國大陸高尿酸血癥患病率為17.4%[7]。因此,高尿酸血癥已成為嚴重的公共衛生問題,嚴重影響患者的生活,造成嚴重的社會經濟負擔,值得全球關注。臨床常用的治療高尿酸血癥的藥物多為西藥,如果長期服用會導致胃腸道損傷、肝腎損傷等副作用[8]。因此研發安全、有效、副作用小,可長期服用的中藥迫在眉睫。

馬齒莧(Portulaca oleraeea,PO)別名五行草、長壽菜,是我國101種藥食同源的野生植物之一[9]。具有食用和藥用雙重價值[10]。有相關研究證實馬齒莧具有降血糖、抑菌、抗氧化、增強免疫力等多種功能[11],而對高尿酸血癥的研究卻未見報道。痛風在中醫屬“痹癥”范疇[12],本課題在前期工作中擬以篩選清熱利濕化瘀的中藥,發現了PO的降尿酸作用,因此以PO為研究對象,對PO進行提取及純化,考察PO的降尿酸作用,進而發掘PO對高尿酸血癥的治療作用,為PO后續研究及成藥提供了基礎理論以及科學依據。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

馬齒莧中藥飲片 保康中藥飲片加工公司;SPF級雄性ICR小鼠 體重20.0±2.0 g,50只,實驗動物許可證編號為SCXK(吉)-2016-0003,長春市億斯實驗動物技術有限責任公司;BCA蛋白定量試劑盒、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、丙二醛(malondialdehyde,MDA)、谷胱甘肽(glutathione,GSH)、谷胱甘肽過氧化酶(glutathioneperoxidase,GSH-PX)試劑盒 南京建成生物制品研究所;血尿酸(serum uric acid,SUA)、尿尿酸(urine uric acid,UUA)、尿肌酐(urine creatinine,UCr)試劑盒上海酶聯生物科技有限公司;次黃嘌呤、氧嗪酸鉀、別嘌呤醇 美國Sigma公司;多聚甲醛、蘇木素精、硫酸鋁鉀、伊紅、冰醋酸、麗春紅G、酸性品紅、中性樹膠、磷鉬酸 上海化學試劑公司;其他化學試劑均為分析純。

AL204電子天平 梅特勒-托利多有限公司;Milli-Q純水機 美國Millipore公司;RE-52A旋轉蒸發器 上海亞榮生化儀器廠;THC-20B超聲波提取機 濟寧天華超聲電子儀器有限公司;SHB-B型循環水式多用真空泵 鄭州長城科工貿有限公司;UV-2550型紫外可見分光光度計 島津國際貿易有限公司;GZX-9140ME數顯鼓風干燥箱 上海博訊實業有限公司;光學顯微鏡 日本 Olympus公司;5430R低溫高速離心機 美國Eppendorf公司;電熱恒溫水浴鍋 北京長安科學儀器廠;THZ-C恒溫振蕩器 太倉市實驗設備廠;Infinite M200型全波段酶標儀 瑞士Tecan 公司。

1.2 實驗方法

1.2.1 馬齒莧提取物的制備 稱量5 kg馬齒莧干品,粉碎,料液比1:10加入pH=5鹽酸溶液,利用超聲波提取器,溫度50 ℃提取,每次100 min[13]。抽濾,合并提取液,加氨水調pH=8~9,得堿水層石油醚萃取3次,每次30 min。將堿水層石油醚揮干,利用旋轉蒸發儀揮去3/4水分,進行干燥,得馬齒莧粗提取物,保存備用。

1.2.2 動物飼養條件及高尿酸血癥模型的建立 飼養于北華大學動物房清潔籠中。室內溫度22±3 ℃,濕度50%±10%。

選取18~22 g健康雄性小鼠50只,隨機分為5組:空白組(CON)、高尿酸血癥模型組(hyperuricemia,HUA)、別嘌呤醇組(allopurinol,ALLOP,0.02 g/kg/d)、馬齒莧高劑量組(PO-H,1.48 g/kg/d);馬齒莧低劑量組(PO-L,0.74 g/kg/d)。給藥方式為預防性給藥,除CON組和HUA組外,每組按相應劑量連續灌胃給藥21 d。從第7 d開始,除CON組外,各組小鼠腹腔注射次黃嘌呤(hypoxanthine,HX,0.3 g/kg/d)和氧嗪酸鉀(oxonic acid potassium salt,OAPS,0.3 g/kg/d),CON組注射等量生理鹽水[14]。

1.2.3 腎臟指數測定 摘取腎臟。使用0.9%的氯化鈉溶液沖洗后用濾紙吸干稱重,右側腎臟投入4%多聚甲醛溶液中固定,左側腎臟置于?80 ℃凍存備用[15]。

1.2.4 血清SUA、MDA含量測定 末次給藥1 h后每只小鼠眼球取血,靜置 1 h,離心(4 ℃,3500 r/min,20 min),吸取上層血清用于試劑盒檢測血清中SUA、MDA水平。

1.2.5 肝臟XOD、SOD含量測定及腎臟GSH、GSHPX含量測定 稱取適量肝臟組織,加入9倍質量分數的生理鹽水,冰水中勻漿,制成 10%的勻漿液并離心(4 ℃,3500 r/min,10 min),取上清液,按相關試劑盒說明書檢測小鼠肝臟XOD、SOD活性。

取小鼠腎組織適量,加入9倍質量分數的生理鹽水,冰水中勻漿,制成10%的腎組織勻漿液并離心(4 ℃,3500 r/min,10 min)。取上清液,按相關試劑盒說明書檢測小鼠腎臟GSH、GSH-PX活性。

1.2.6 尿液UUA、UCr含量測定 實驗結束前1 d,將小鼠置于代謝籠中,禁食不禁水,收集24 h尿液并記錄。將尿液離心(4 ℃,1200 r/min,15 min),取清液按相關試劑盒說明書測定UUA、UCr水平。

1.2.7 腎臟病理學檢查 參考HE染色方法[16],觀察小鼠腎臟病理變化。

1.3 數據處理

試驗數據采用SPSS17.0軟件進行統計學分析,GraphPad Prism5軟件進行圖表分析。數據均以平均值±標準差(Xˉ±SD)的形式表示,每組中的樣品數目表示“n”。以P<0.05時,表示差異顯著;以P<0.01時,表示差異極顯著。

2 結果與分析

2.1 對小鼠腎臟指數的影響

臟器的腫大或萎縮體現臟器的損傷情況,臟器與體重的比值減小說明臟器有可能出現一定程度的萎縮,增加說明臟器有可能有增生和水腫的情況[17]。如表1所示。HUA組小鼠肝臟指數、脾臟指數和腎臟指數均極顯著(P<0.01)高于CON組,說明腹腔注射HX和OAPS可以引起小鼠的肝臟、脾臟和腎臟腫大,即高尿酸血癥模型建立成功。與HUA組比較,PO-H和PO-L組小鼠腎臟指數均極顯著(P<0.01)降低,說明馬齒莧提取物對HX和OAPS引起的腎臟腫大有一定的抑制作用。但與HUA組比較,給藥組的脾臟指數和肝臟指數差異不顯著,說明ALLOP與馬齒莧提取物對高尿酸小鼠模型肝臟和脾臟指數沒有影響。

表1 對小鼠臟器指數的影響Table 1 Effect on organ index of mice

2.2 對小鼠血清SUA、MDA水平的影響

在正常飲食狀態下,體內生成尿酸過多或排泄過低,都會引起血尿酸的升高,從而導致高尿酸血癥[18]。因此通過在飲食上的調整和使用降低血清尿酸的藥物將SUA水平降低至正常值是治療HUA的主要目標[19]。MDA水平的高低可以反映機體內自由基代謝的情況[20?21]。如圖1所示。與CON組比較,HUA組小鼠SUA濃度和MDA水平極顯著升高(P<0.01)。說明成功建立了HUA模型。和HUA組比較,PO-H組和PO-L組SUA、MDA水平顯著下降(P<0.01或P<0.05)。說明馬齒莧提取物可有效降低患病小鼠的SUA水平,且隨著劑量的增加,效果增強。

圖1 對小鼠血清SUA與MDA水平的影響(n=10)Fig.1 Effects on serum SUA and MDA levels in mice(n=10)

2.3 對小鼠肝臟XOD、SOD及腎臟GSH、GSH-PX水平的影響

XOD是一種與嘌呤代謝有關的酶[22]。XOD在體內水平的升高引起嘌呤分解代謝的增強,最終導致SUA水平升高[23]。 SOD在人體內普遍存在,是一種天然的抗氧化酶,可以保護細胞免受損傷[24]。有研究發現,血尿酸升高是腎臟疾病發生獨立危險因素[25]。而GSH-PX可以催化GSH參與過氧化反應,清除生物體內活性氧自由基[26],提高機體抗氧化能力。如圖2所示。與CON組比較,HUA組肝臟XOD水平極顯著升高(P<0.01),SOD水平極顯著降低(P<0.01);與HUA組比較,PO-H組肝臟XOD水平極顯著降低(P<0.01),SOD水平極顯著升高(P<0.01);PO-L組肝臟XOD水平極顯著降低(P<0.01),SOD水平無統計學意義(P>0.05)。由圖3所示。與CON組比較,HUA組腎臟GSH、GSH-PX水平極顯著降低(P<0.01);與HUA組比較,PO-H組、PO-L組肝臟GSH、GSH-PX水平均顯著升高(P<0.01或P<0.05)。馬齒莧提取物可顯著降低HUA小鼠血清中XOD、MDA水平,提高SOD、GSH、GSH-PX水平。

圖2 對小鼠肝臟XOD與SOD水平的影響(n=10)Fig.2 Effects on XOD and SOD levels in mouse liver(n=10)

圖3 對小鼠腎臟GSH與GSH-PX水平的影響(n=10)Fig.3 Effects on GSH and GSH-PX levels in mouse kidney(n=10)

2.4 對小鼠尿液UUA、UCr水平的影響

尿液中Cr的變化可以作為腎臟損害的標志[27]。如圖4所示。與CON組比較,HUA組小鼠UUA、UCr水極顯著降低(P<0.01);表明已出現初始腎功能損害。與HUA組比較,PO-H組和PO-L租UCr水平極顯著升高(P<0.01),且兩組小鼠UUA濃度與HUA組比較無顯著性差異(P>0.05)。PO組尿液中Cr水平升高,提示通過馬齒莧提取物的治療,改善了次黃嘌呤和氧嗪酸鉀所致的早期腎功能損害。

圖4 對小鼠尿液中UUA與UCr水平的影響(n=10)Fig.4 Effects on UUA and UCr levels in urine of mice (n=10)

2.5 腎病理形態學觀察

2.5.1 腎組織外觀形態 CON組小鼠腎臟的大小正常。顏色為深紅色。質地柔軟按壓時有彈性,表面光滑均勻。HUA組腎臟明顯腫大,顏色發白。質地變硬,按壓時無彈性。表面粗糙不平,有顆粒感。PO組腎臟外觀與CON組接近,腎臟顏色呈淡紅色,未見出血點。表面光滑,沒有出現變白變硬情況。已知高尿酸血癥會加重腎臟疾病的發生,而PO組小鼠腎臟指數相比HUA組有所下降,且雙腎外觀接近正常組,說明馬齒莧提取物延緩了腎臟病變的進程。

2.5.2 光鏡下觀察腎組織病理表現 在400倍光鏡下觀察結果如圖5所示,CON組小鼠具有清晰完整的細胞結構。細胞間隙正常,沒有明顯的病理改變。HUA組小鼠腎小球結構紊亂,腎小管明顯擴張,且管腔形態排列雜亂不規則。腎間質寬度明顯增加,被大量炎癥細胞浸潤,產生黏液。部分上皮細胞有水腫、壞死的現象。說明HUA組小鼠腎臟有病理性損傷。而當給予馬齒莧提取物治療后,腎小球形態接近正常。腎小管擴張減少,炎性細胞浸潤減輕。提示馬齒莧提取物可以明顯改善HUA小鼠腎臟的病理變化。

圖5 腎臟病理形態(400×)Fig.5 Pathomorphology of kidney tissue (400×)

3 結論

本實驗研究中,采用HX聯合OAPS腹腔注射建立HUA模型,發現馬齒莧提取物可有效降低效患病小鼠的SUA水平,且隨著劑量的增加,效果增強,但對患病小鼠尿液UUA水平影響較小,其機制可能是通過在體內抑制尿酸的生成,從而起到降低血清尿酸的作用。馬齒莧提取物可顯著降低HUA小鼠血清中 XOD 、MDA水平,提高SOD、GSH、GSH-PX水平,表明馬齒莧提取物可以減少脂質氧化代謝產物的生成,增強機體抗氧化能力。

實驗結果表明,馬齒莧提取物能夠顯著降低高尿酸血癥小鼠血尿酸水平,其機制可能是通過降低小鼠肝臟XOD活性從而減少尿酸生成。有效延緩小鼠腎臟病變進程。這充分證明了中藥在提高機體抗病能力、增強免疫力及毒副作用小等方面的優勢,對于馬齒莧用于高尿酸血癥的治療提供了參考。

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