基于多重?zé)晒舛縋CR技術(shù)快速檢測(cè)桶裝水中大腸埃希氏菌和銅綠假單胞菌

◎ 龍 慧，帥淑芬，龍永艷，王 偉，吳 葵，鐘 淙

（南昌市疾病預(yù)防控制中心，江西 南昌 330038）

近年來(lái)，桶裝水安全備受關(guān)注，全國(guó)各地區(qū)針對(duì)桶裝水衛(wèi)生狀況進(jìn)行監(jiān)測(cè)發(fā)現(xiàn)多處不合格。2014—2015年湖北省對(duì)桶裝飲用水微生物污染情況進(jìn)行分析，結(jié)果顯示209批次桶裝飲用水總合格率僅為54.07%，其中菌落總數(shù)不合格率為44.50%、大腸菌群不合格率為8.61%[1]；2016—2017年海南省調(diào)研了桶裝飲用水微生物污染情況，結(jié)果顯示2016年桶裝純凈水的不合格率為10.8%、2017年桶裝純凈水的不合格率為12.9%，且銅綠假單胞菌和大腸菌群為主要污染源[2]；2019年廣西欽州市對(duì)桶裝飲用水銅綠假單胞菌污染狀況進(jìn)行監(jiān)測(cè)，結(jié)果顯示銅綠假單胞菌檢出率為26.4%[3]。桶裝飲用水是人們生活中的必需品，加強(qiáng)衛(wèi)生監(jiān)督，保障公眾健康，監(jiān)測(cè)桶裝水的微生物安全勢(shì)在必行。

大腸埃希氏菌（Escherichia coli，E. coli）作為最有效的糞便指示菌，能夠直接預(yù)測(cè)桶裝水是否受到糞便污染[4-5]；銅綠假單胞菌（Pseudomonas aeruginosa，P.aeruginosa）又稱綠膿桿菌，是社區(qū)水源性疾病感染的重要源頭[6-8]。根據(jù)相關(guān)研究報(bào)道，人類外露組織接觸或者誤吞食受到大腸埃希氏菌和銅綠假單胞菌污染的桶裝水，容易引起腹瀉、腹部絞痛、眼角膜炎、組織炎癥等疾病[9-11]。因此建立快速、有效的檢測(cè)方法對(duì)于監(jiān)測(cè)桶裝水中大腸埃希氏菌和銅綠假單胞菌污染具有重要意義。聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（Polymerase Chain Reaction，PCR）是一種核酸信號(hào)放大技術(shù)[12]，通過(guò)特異性的引物，在聚合酶的催化下能夠在短時(shí)間內(nèi)實(shí)現(xiàn)信號(hào)放大。普通PCR技術(shù)需要對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè)，而新型熒光定量PCR技術(shù)通過(guò)熒光探針，能夠?qū)崿F(xiàn)實(shí)時(shí)熒光定量檢測(cè)[13]。本研究根據(jù)uidA[14]和gyrB[15]基因設(shè)計(jì)引物和探針，建立多重?zé)晒舛縋CR體系，能夠在一個(gè)反應(yīng)管中實(shí)現(xiàn)同時(shí)檢測(cè)大腸埃希氏菌和銅綠假單胞菌，該方法的建立能夠在一定程度上彌補(bǔ)傳統(tǒng)檢測(cè)方法的缺陷，加快桶裝水微生物安全建設(shè)。

1 材料與方法

1.1 材料與設(shè)備

1.1.1 菌株信息

本研究使用的菌株包含銅綠假單胞菌CMCC 10104、銅綠假單胞菌ATCC 9027、大腸桿菌ATCC 25922、腸致病性大腸桿菌CICC 10664、產(chǎn)腸毒素性大腸桿菌CICC 10667、出血性大腸桿菌CICC 21530、金黃色葡萄球菌ATCC 6538、金黃色葡萄球菌CMCC 26003、弗氏檸檬酸桿菌ATCC 43864、奇異變形桿菌CMCC 49005、腸炎沙門氏菌CICC 21482、單核細(xì)胞增生李斯特菌ATCC 19115、糞產(chǎn)堿桿菌CMCC 40001、小腸結(jié)腸炎耶爾森氏菌CMCC 52204，以及實(shí)驗(yàn)室分離株產(chǎn)志賀毒素大腸桿菌。

1.1.2 主要試劑

磷酸鹽緩沖液（北京路橋有限公司）、腦心浸出液和營(yíng)養(yǎng)瓊脂（北京路橋有限公司）、Premix Ex Taq?（寶日醫(yī)生物技術(shù)北京有限公司）。

1.1.3 儀器和設(shè)備

恒溫水浴鍋（上海智誠(chéng)分析儀器制造有限公司）；高速離心機(jī)（賽默飛世爾）；恒溫培養(yǎng)箱（上海一恒科學(xué)儀器有限公司）；熒光定量PCR儀（Bio-Rad）。

1.1.4 引物和探針設(shè)計(jì)

選取uidA和gyrB基因?yàn)榘袠?biāo)，利用NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)獲取uidA和gyrB基因序列，使用Beacon designer 8軟件設(shè)計(jì)引物和探針，并將設(shè)計(jì)的序列輸入NCBI BLAST進(jìn)行特異性驗(yàn)證，所有序列均委托通用生物公司（北京）合成。uidA基因：上游引物TGGACAT ACCAACCGTAA，下游引物CTGTGTCAATGTAATG TTCTG，探針FAM-CGGTTCAGGCACAGCACATCBHQ1，擴(kuò)增子長(zhǎng)度為96 bp；gyrB基因：上游引物GA CAGCTTCAACGAGAAC，下游引物CGATGTAGTT GTTCAGGTTA，探針Texas Red-TGCTCTGCTTCAC CAACAACATC-BHQ2，擴(kuò)增子長(zhǎng)度為115 bp。

1.2 方法

1.2.1 菌株培養(yǎng)和基因組DNA提取

取瓷珠保存的E. coli和P. aeruginosa接種在腦心浸出液中，37 ℃振蕩培養(yǎng)過(guò)夜進(jìn)行復(fù)蘇，然后通過(guò)平板劃線接種在營(yíng)養(yǎng)瓊脂平皿上獲取單菌落，最后挑取單菌落接種在腦心浸出液中獲取菌懸液。取E. coli和P. aeruginosa菌懸液各1 mL加入離心管中，于1.5 mL滅菌的離心管中，在12 000 r·min-1離心3 min，去除上清液，然后加入1 mL超純水重懸，在12 000 r·min-1離心3 min，去除上清液，重復(fù)操作一次，最后重懸在200 μL超純水中。準(zhǔn)備100 ℃沸水，將制備好的菌懸液放入其中煮沸15 min，然后放在冰水浴中5 min，最后在12 000 r·min-1離心3 min，取上清液，為細(xì)菌基因組DNA，儲(chǔ)存在-20 ℃待用。

1.2.2 退火溫度的優(yōu)化

設(shè)置qPCR反應(yīng)程序的退火溫度為53.0～63.0 ℃，進(jìn)行熒光梯度PCR。根據(jù)不同退火溫度對(duì)應(yīng)的擴(kuò)增曲線，比較各溫度對(duì)應(yīng)的相對(duì)熒光單位（RFU），確定最佳的退火溫度。

1.2.3 多重?zé)晒舛縋CR的擴(kuò)增

二重?zé)晒舛縋CR擴(kuò)增體系為25 μL，詳細(xì)組成：2×Premix Ex Taq? 12.5 μL、10 μmol·L-1的uidA、gyrB上下游引物、探針各0.5 μL、基因組DNA各3 μL、超純水補(bǔ)充至25 μL。擴(kuò)增程序：95 ℃預(yù)變性5 min，95 ℃變性15 s、55 ℃退火延伸30 s、40個(gè)循環(huán)，熒光信號(hào)收集在退火和延伸階段。

1.2.4 多重檢測(cè)限

將37 ℃過(guò)夜培養(yǎng)的菌株取1 mL提取基因組DNA（提取方法參考1.2.1），使用10倍梯度稀釋基因組DNA，然后通過(guò)多重?zé)晒舛縋CR體系進(jìn)行擴(kuò)增，根據(jù)擴(kuò)增結(jié)果構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)曲線，并確認(rèn)檢測(cè)靈敏度。

1.2.5 方法特異性評(píng)價(jià)

將表1菌株按照1.2.1菌株培養(yǎng)和基因組DNA提取方法，以各菌株基因組DNA為實(shí)驗(yàn)樣本、目的菌株為陽(yáng)性樣本、超純水為陰性樣本，按照多重?zé)晒舛縋CR體系進(jìn)行擴(kuò)增，根據(jù)擴(kuò)增曲線確認(rèn)方法特異性。

1.2.6 方法重復(fù)性評(píng)價(jià)

將 濃 度 分 別 為104CFU·mL-1、106CFU·mL-1、108CFU·mL-1的E. coli和P. aeruginosa提取基因組DNA用于多重?zé)晒舛縋CR，通過(guò)計(jì)算變異系數(shù)（Coefficient of Variation，CV）評(píng)價(jià)該方法的組間重復(fù)性。

1.2.7 回收率評(píng)價(jià)

準(zhǔn)備菌濃度分別為104CFU·mL-1、106CFU·mL-1、108CFU·mL-1的E. coli和P. aeruginosa各兩組，其中一組通過(guò)平板計(jì)算得到細(xì)菌濃度，另一組提取基因組DNA用于多重?zé)晒舛縋CR擴(kuò)增，將擴(kuò)增獲取的Ct值代入標(biāo)準(zhǔn)曲線得到細(xì)菌濃度，并與實(shí)際值進(jìn)行比較確定方法的回收率。

1.2.8 加標(biāo)檢測(cè)

收集桶裝水50 mL，并通過(guò)高壓蒸汽滅菌去除原有細(xì)菌用于制備加標(biāo)樣。取8 mL處理后的桶裝水，分別加入1 mL菌濃度為109CFU·mL-1的E. coli和P. aeruginosa，得到人工加標(biāo)樣品。通過(guò)水煮法提取加標(biāo)樣中的E. coli和P. aeruginosa基因組DNA，然后利用10倍梯度稀釋基因組DNA進(jìn)行多重?zé)晒舛縋CR，根據(jù)擴(kuò)增結(jié)果構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)曲線，并確認(rèn)檢測(cè)靈敏度。

2 結(jié)果與分析

2.1 退火溫度的優(yōu)化

熒光定量PCR反應(yīng)體系的退火溫度是影響擴(kuò)增效果和特異性的重要因素，本研究根據(jù)引物和探針的Tm值設(shè)置退火溫度為53.0～63.0 ℃，優(yōu)化結(jié)果見圖1。相對(duì)熒光單位（RFU）表示在一定循環(huán)數(shù)對(duì)應(yīng)的熒光信號(hào)強(qiáng)度，RFU值越大，表示退火溫度越合適。根據(jù)這個(gè)原則，最終確定多重?zé)晒舛縋CR的退火溫度為55.0 ℃。

2.2 多重?zé)晒舛縋CR體系建立

多重?zé)晒舛縋CR同時(shí)檢測(cè)的E. coli和P. aeruginosa結(jié)果見圖2。uidA基因擴(kuò)增曲線為典型的S型曲線，基線平緩、指數(shù)期明顯、無(wú)任何分叉，gyrB基因的擴(kuò)增曲線結(jié)果與uidA基因擴(kuò)增曲線基本相同，且整個(gè)qPCR檢測(cè)過(guò)程在2.0 h內(nèi)完成，表明多重?zé)晒舛縋CR體系成功建立，能夠同時(shí)、快速的在一個(gè)反應(yīng)體系檢測(cè)兩種目標(biāo)菌。

圖2 多重?zé)晒舛縋CR體系的構(gòu)建圖

2.3 靈敏度評(píng)價(jià)

E. coli和P. aeruginosa基因組DNA經(jīng)過(guò)10倍梯度，在最優(yōu)條件下按照1.2.3步驟進(jìn)行PCR擴(kuò)增，以Ct值為縱坐標(biāo)，菌株濃度為橫坐標(biāo)，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線（結(jié)果見圖3），得到線性方程：E. coli，y=-3.144x+43.42，擴(kuò)增效率E=108%，線性相關(guān)性R2=0.999 7，檢測(cè)限為3.8×102CFU·mL-1；P. aeruginosa，y=-3.227x+44 368，擴(kuò)增效率E=104%，線性相關(guān)性R2=0.999 1，檢測(cè)限為2.1×102CFU·mL-1。結(jié)果表明E. coli和P. aeruginosa在102～109CFU·mL-1具有良好的擴(kuò)增效率和線性相關(guān)性，而且檢測(cè)靈敏度高。

圖3 純菌液中檢測(cè)限的確定圖

2.4 特異性評(píng)價(jià)

多重?zé)晒舛縋CR特異性驗(yàn)證結(jié)果如表1所示，2株P(guān). aeruginosa中均檢測(cè)出gyrB基因，5株E. coli均檢測(cè)出uidA基因，而其他非P. aeruginosa和E. coli菌株均未檢出uidA和gyrB。因此，本研究建立的多重?zé)晒舛縋CR具有較高的特異性，可用于同時(shí)準(zhǔn)確的檢測(cè)E. coli和P. aeruginosa。

表1 菌株信息表

2.5 重復(fù)性評(píng)價(jià)

根據(jù)多重?zé)晒舛縋CR重復(fù)性評(píng)價(jià)結(jié)果統(tǒng)計(jì)分析可知，組內(nèi)變異系數(shù)CV值在0.58%～2.34%，均小于5%，說(shuō)明本研究建立的多重?zé)晒舛縋CR具有較好的穩(wěn)定性。

2.6 回收率評(píng)價(jià)

多重?zé)晒舛縋CR檢測(cè)目標(biāo)菌回收率計(jì)算結(jié)果顯示，108CFU·mL-1的E. coli回收率為85.02%、106CFU·mL-1的 回 收 率 為77.54%、104CFU·mL-1為58.82%，108CFU·mL-1的P. aeruginosa回 收 率 為85.48%、106CFU·mL-1的回收 率 為74.45%、104CFU·mL-1為66.17%。

2.7 加標(biāo)檢測(cè)效果

多重?zé)晒舛縋CR檢測(cè)桶裝水加標(biāo)樣結(jié)果見圖4。以Ct值為縱坐標(biāo)、菌濃度為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線，得到線性方程：E. coli，y=-2.858x+47.61，擴(kuò)增效率E=108%，線性相關(guān)性R2=0.997 0，檢測(cè)限為1.48×102CFU·mL-1；P. aeruginosa，y=-3.109x+43.31，擴(kuò)增效率E=109%，線性相關(guān)性R2=0.996 1，檢測(cè)限為1.35×103CFU·mL-1。結(jié)果表明該方法用于人工加標(biāo)樣檢測(cè)在102～108CFU·mL-1具有較好線性相關(guān)性，而且檢測(cè)靈敏度較高，具有較高的實(shí)際應(yīng)用價(jià)值。

圖4 桶裝水加標(biāo)檢測(cè)限的確定圖

3 結(jié)論與討論

本研究以u(píng)idA和gyrB為目標(biāo)基因設(shè)計(jì)引物和探針，優(yōu)化退火溫度，建立多重檢測(cè)體系，在最優(yōu)反應(yīng)條件下擴(kuò)增102～109CFU·mL-1目標(biāo)菌株并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線，成功建立了E. coli和P. aeruginosa多重?zé)晒舛縋CR檢測(cè)方法。該方法檢測(cè)性能優(yōu)越，通過(guò)設(shè)計(jì)多重引物和探針，在理論設(shè)計(jì)和實(shí)際檢驗(yàn)均符合多重檢測(cè)需求，能夠?qū)崿F(xiàn)同時(shí)對(duì)E. coli和P. aeruginosa進(jìn)行檢測(cè)；從核酸提取到PCR擴(kuò)增結(jié)束，僅需要2.0 h就能完成，可以實(shí)現(xiàn)快速檢測(cè)，能夠滿足大批量篩查的要求；方法檢測(cè)靈敏度高，E. coli和P. aeruginosa的檢測(cè)限均為102CFU·mL-1，相比于GOLPAYEGANI[16]和DINU[17]等采用同樣的方法檢測(cè)靈敏度有所提高，分析原因可能是本研究設(shè)計(jì)的引物和探針擴(kuò)增效率更高，反應(yīng)體系合理能夠大限度的提高檢測(cè)靈敏度；方法重復(fù)性好，組內(nèi)設(shè)置16個(gè)平行、3種不同濃度的目標(biāo)細(xì)菌基因組DNA，變異系數(shù)在0.58%～2.34%，均小于5%，說(shuō)明該方法擴(kuò)增性能穩(wěn)定、再現(xiàn)性好。方法特異性良好，對(duì)于常見的非目標(biāo)致病菌均無(wú)陽(yáng)性擴(kuò)增信號(hào)，對(duì)于復(fù)雜的桶裝水中E. coli和P. aeruginosa的準(zhǔn)確檢測(cè)提供了必要條件。方法具有較高的回收率，分 別 對(duì)104CFU·mL-1、106CFU·mL-1、108CFU·mL-1兩種目標(biāo)菌進(jìn)行檢測(cè)，比較計(jì)算值和平板計(jì)數(shù)真值，確定回收率在58.82%～85.48%，低濃度目標(biāo)菌的回收率低可能造成的原因是10倍梯度稀釋存在一定的誤差，導(dǎo)致回收率偏低。通過(guò)對(duì)桶裝水加標(biāo)檢測(cè)結(jié)果顯示，E. coli的檢測(cè)靈敏度為103CFU·mL-1，P. aeruginosa的檢測(cè)靈敏度為102CFU·mL-1，擴(kuò)增效率也存在一定程度的降低，分析原因可能是桶裝水存在一定的干擾物質(zhì)，且使用簡(jiǎn)單的水煮法無(wú)法去除，導(dǎo)致靈敏度和擴(kuò)增效率有所降低。綜合檢測(cè)性能評(píng)價(jià)結(jié)果，該方法快速、靈敏度高、特異性強(qiáng)、重復(fù)性好，對(duì)桶裝水中E. coli和P. aeruginosa能夠?qū)崿F(xiàn)同時(shí)檢測(cè)。