HPLC同時檢測紅茶中兒茶素和茶黃素含量

費璠,張梓瑩,胡松,徐丹紅,劉仲華,4*

1(湖南大眾傳媒職業(yè)技術(shù)學(xué)院,湖南 長沙,410100)2(湖南農(nóng)業(yè)大學(xué),茶學(xué)教育部重點實驗室,湖南 長沙,410128)3(國家植物功能成分利用工程技術(shù)研究中心,湖南 長沙,410128)4(植物功能成分利用省部共建協(xié)同創(chuàng)新中心,湖南 長沙,410128)

紅茶,作為當(dāng)今世界最受歡迎的茶葉,占茶葉消費市場份額的70%～80%[1-2]。紅茶屬全發(fā)酵茶,主要分為工夫紅茶、小種紅茶、紅碎茶3大類[3-4]。其呈味物質(zhì)和功能性成分包括兒茶素、茶黃素、茶紅素等,這些內(nèi)含成分不僅滋味爽口,還兼具多種保健作用,如消炎、抗氧化、抗腫瘤、延緩衰老、保肝護肝等[5-8]。紅茶通過萎凋揉捻等工藝使得茶葉破碎,茶葉內(nèi)含物與內(nèi)源酶接觸,發(fā)生酶促氧化反應(yīng)[9]。茶葉中大分子物質(zhì)發(fā)生水解反應(yīng),兒茶素等多酚類化合物發(fā)生氧化聚合,形成大量香氣化合物及茶黃素、茶紅素、茶褐素等有色物質(zhì),構(gòu)成紅茶鮮香馥郁、紅湯紅葉、滋味濃醇、回味悠長的品質(zhì)特征[10]。兒茶素和茶黃素作為紅茶的重要品質(zhì)因子,其含量高低直接影響著紅茶品質(zhì)的優(yōu)劣[11]。開發(fā)能快速準(zhǔn)確的分析測定紅茶中兒茶素和茶黃素含量的方法對有效判斷紅茶品質(zhì)、控制紅茶質(zhì)量、指導(dǎo)紅茶的科學(xué)生產(chǎn)、實現(xiàn)高品質(zhì)紅茶加工具有重要意義。

近年來,茶黃素和兒茶素檢測主要采用HPLC-MS和UPLC等檢測[12-13]。HPLC-MS和UPLC法設(shè)備采購價格較昂貴,儀器操作復(fù)雜,不適用于一般的實驗室條件。而HPLC-UV法是一種常見的快速檢測方法,設(shè)備價格低廉、易得,且分離效率高、準(zhǔn)確度和精密度較好[14]。本研究基于HPLC-UV,通過優(yōu)化檢測條件,建立了一種可同時測定兒茶素和茶黃素的高效液相色譜方法。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

乙腈、甲酸(均為色譜純),美國TEDIA公司；甲醇(分析純),國藥集團化學(xué)試劑有限公司；標(biāo)準(zhǔn)品咖啡堿(caffeine,Caf)、表沒食子酸酯兒茶素(epigallocatechin,EGC)、兒茶素(DL-catechin,DL-C)、表兒茶素(epicatechin,EC)、表沒食子兒茶素沒食子酸酯(epigallocatechin gallate,EGCG)、沒食子兒茶素沒食子酸酯(gallocatechin gallate,GCG)、表兒茶素沒食子酸酯(epicatechin gallate,ECG),成都普瑞法科技開發(fā)有限公司(純度≥98%)；茶黃素(theaflavin,TF)、茶黃素-3-沒食子酸酯(theaflavin-3-gallate,TF-3-G)、茶黃素-3′-沒食子酸酯(theaflavin-3′-gallate,TF-3′-G)、茶黃素-3,3′-雙沒食子酸酯(theaflavin-3,3′-digallate,TFDG),美國Sigma公司(純度≥98%)。

6種紅茶樣品包含黃金茶紅茶、祁門工夫、祁紅毛峰、滇紅、一炮紅(臺灣)、坦洋工夫(粉碎后過40目篩,備用),湖南省茶業(yè)集團股份有限公司。

1.2 儀器與設(shè)備

1260高效液相色譜儀、安捷倫SB-C18色譜柱(4.6 mm×250 mm,5 μm)，美國安捷倫公司；MS204TS電子天平,梅特勒-托利多國際貿(mào)易(上海)有限公司；SB-3200DT超聲波清洗機,寧波新芝生物科技有限公司；HHS-21-6電熱恒溫水浴鍋,上海精宏實驗設(shè)備有限公司；分析型超純水機,上海葉拓科技有限公司；JGY-2500研磨器,浙江省永康市敏業(yè)工貿(mào)有限公司。

1.3 樣品檢測

1.3.1 標(biāo)準(zhǔn)品溶液配制

分別精密稱取Caf、EGC、DL-C、EC、EGCG、GCG、ECG、TF、TF-3-G、TF-3′-G和TFDG對照品各12.5 mg(精確到0.000 1 g)于50 mL棕色容量瓶中,用體積分數(shù)為10%乙腈溶液溶解并定容,搖勻,得250 μg/mL的混合內(nèi)含物質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)液。過0.45 μm微孔濾膜,進樣量為20 μL,調(diào)節(jié)方法參數(shù)進行HPLC方法優(yōu)化。

1.3.2 HPLC檢測方法及優(yōu)化

色譜柱：安捷倫SB-C18液相色譜柱(4.6 mm×250 mm,5 μm)。流動相A為0.1%(質(zhì)量分數(shù))甲酸-乙腈,流動相B為0.1%(質(zhì)量分數(shù))甲酸-水,流速1.0 mL/min,進樣量為20 μL,檢測波長為280 nm,柱溫30 ℃。梯度洗脫設(shè)置見表1。以上述條件作為最初條件,根據(jù)11種茶葉內(nèi)含物質(zhì)的保留時間、分離度等因素,對HPLC檢測方法的流動相酸度、柱溫及洗脫梯度等幾個方面進行優(yōu)化。

表1 高效液相色譜洗脫梯度

設(shè)置不同酸濃度A相0.05%、0.1%、0.15%、0.2%甲酸水溶液(體積分數(shù)),B相0.05%、0.1%、0.15%、0.2%甲酸乙腈溶液(體積分數(shù))條件下11種茶葉內(nèi)含物質(zhì)分離情況。設(shè)置25、30、35 ℃ 3個柱溫對該方法分離效果的影響。根據(jù)峰型、分離度、保留時間等因素調(diào)整洗脫梯度以及檢測時間。

1.4 方法學(xué)驗證實驗

使用外標(biāo)法定量分析檢測兒茶素和茶黃素的含量。分別精密稱取11種茶葉內(nèi)含物質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)品各12.5 mg(精確到0.000 1 g)于25 mL棕色容量瓶中,用體積分數(shù)為10%乙腈溶液溶解并定容,搖勻,得500 μg/mL的混合內(nèi)含物質(zhì)母液。分別移取母液1、2、3、4、5、8 mL至10 mL棕色容量瓶中,用體積分數(shù)為10%乙腈溶液定容,得到50、100、150、200、250、400、500 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)工作液。各濃度標(biāo)準(zhǔn)品過0.45 μm微孔濾膜,進樣量為20 μL。以質(zhì)量濃度(X)、峰面積(Y)繪制出標(biāo)準(zhǔn)工作曲線,并求回歸方程和相關(guān)系數(shù)。將最低濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液進樣,按照3倍信噪比(S/N)得到檢測方法的檢出限,按照10倍信噪比(S/N)得到檢測方法的定量限。

準(zhǔn)確稱取使用研磨器均勻磨碎的滇紅茶樣品0.3 g于10 mL離心管中,加入5 mL體積分數(shù)為70%的甲醇溶液(70 ℃預(yù)熱),搖勻,于70 ℃水浴振蕩浸提10 min,冷卻至室溫,3 500 r/min離心10 min,取上清液于10 mL棕色容量瓶中。殘渣再重復(fù)上述步驟。合并提取液,定容至10 mL,搖勻,過0.45 μm濾膜,制得滇紅茶待測樣品。

以該方法檢測滇紅茶待測樣品,樣品重復(fù)進樣6次。根據(jù)所得峰面積分別計算11種茶葉內(nèi)含成分的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(relative standard deviation,RSD),驗證該方法的精密度,重復(fù)性。

在待測滇紅茶樣品中分別加入一定量的11種茶葉內(nèi)含成分對照品,進行加標(biāo)回收率試驗,樣品重復(fù)進樣6次,考察該方法的準(zhǔn)確度。加標(biāo)回收率計算如公式(1)所示：

(1)

將滇紅茶待測樣液放置不同時間(0、2、4、6、8、12、24 h),以該方法檢測,根據(jù)11種茶葉內(nèi)含成分的峰面積計算RSD值,考察方法的穩(wěn)定性。

1.5 檢測紅茶樣品

分別準(zhǔn)確稱取使用研磨器均勻磨碎的6種紅茶樣品0.3 g于10 mL離心管中,加入5 mL體積分數(shù)為70%的甲醇溶液(70 ℃預(yù)熱),搖勻,于70 ℃水浴中振蕩浸提10 min,冷卻至室溫,3 500 r/min離心10 min,取上清液于10 mL棕色容量瓶中。殘渣再重復(fù)上述步驟,合并提取液,定容至10 mL,搖勻,過0.45 μm 濾膜,制得紅茶待測樣品。使用上述優(yōu)化后的方法檢測含有11種茶葉內(nèi)含物質(zhì)的對照樣,6種紅茶待測樣。每個樣品重復(fù)3次,外標(biāo)法分析計算各茶樣11種茶葉內(nèi)含物質(zhì)的含量。

1.6 數(shù)據(jù)處理

所有試驗至少重復(fù)3次以上,使用Graphpad prism 8.0軟件進行圖表的繪制和相關(guān)數(shù)據(jù)的處理。

2 結(jié)果與分析

2.1 色譜條件的優(yōu)化

乙腈-乙酸流動相體系中色譜圖峰形差、拖尾嚴重,本研究選擇甲酸調(diào)節(jié)酸濃度,設(shè)置流速1 mL/min,柱溫30 ℃,以A相甲酸乙腈溶液、B相甲酸水溶液為流動相,用甲酸調(diào)節(jié)酸濃度,考察不同酸體積分數(shù)A相0.05%、0.1%、0.15%、0.2%甲酸水溶液,B相0.05%、0.1%、0.15%、0.2%甲酸乙腈溶液條件下11種茶葉內(nèi)含物質(zhì)分離情況。結(jié)果發(fā)現(xiàn),流動相A和B酸濃度相互搭配,酸濃度越低,待測物質(zhì)保留時間越短,分離效果越差,出現(xiàn)多峰重疊現(xiàn)象；隨著酸濃度升高,11種茶葉內(nèi)含物質(zhì)分離效果越好,但保留時間也隨之增長,且酸濃度過高易對色譜柱造成影響。綜合考慮,流動相選擇A相甲酸體積分數(shù)為0.1%、B相甲酸體積分數(shù)為0.1%時,分離效果好,保留時間適中且對儀器損傷較小。

以A相含0.1%(體積分數(shù))甲酸-乙腈溶液、B相含0.1%(體積分數(shù))甲酸-水溶液為流動相,在進樣量為20 μL,流速為1 mL/min的條件下,分析25、30、35 ℃ 3個柱溫對該方法分離效果的影響。結(jié)果發(fā)現(xiàn),隨著柱溫升高,11種待檢物質(zhì)保留時間縮短,但分離效果變差,綜合分析,30 ℃時待測物質(zhì)分離效果最佳。

洗脫梯度是影響色譜出峰順序和分離度的重要因素。本研究優(yōu)化流動相洗脫梯度,在洗脫前期以8%的A相,92%的B相洗脫,能夠使兒茶素各組分完全分開且分離度高,峰型良好。待兒茶素組分全部洗脫后加大A相比例,茶黃素組分也均勻分開。經(jīng)多次優(yōu)化后,以表2條件進行梯度洗脫可有效分離兒茶素和茶黃素,11種茶葉內(nèi)含物峰型完整,分離效果優(yōu)異(圖1)。

表2 高效液相色譜洗脫梯度

圖1 最優(yōu)條件下11種內(nèi)含物質(zhì)標(biāo)樣HPLC色譜圖

2.2 方法學(xué)驗證

檢測質(zhì)量濃度50～500 μg/mL的一系列標(biāo)準(zhǔn)工作液,得到11條標(biāo)準(zhǔn)曲線。如表3所示,各物質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線的R2均>0.999 0,說明各單體的質(zhì)量濃度和色譜峰面積具有良好的線性相關(guān)性。11種茶葉內(nèi)含物的檢出限范圍為0.21～11.13 μg/mL,定量限范圍為0.70～37.10 μg/mL。

表3 11種茶葉內(nèi)含物質(zhì)的標(biāo)準(zhǔn)曲線

精密度、重復(fù)性、穩(wěn)定性是衡量HPLC檢測方法準(zhǔn)確性的一個重要指標(biāo)。基于上述優(yōu)化后的檢測方法,精密度、重復(fù)性和穩(wěn)定性范圍分別為0.36%～3.40%、2.04%～4.82%、0.51%～3.83%(圖2),均<5%。

圖2 檢測方法儀器精密性、重復(fù)性、穩(wěn)定性驗證

表明該方法具有良好的精密性、重復(fù)性、穩(wěn)定性,是一種可穩(wěn)定準(zhǔn)確檢測茶葉中11種茶葉內(nèi)含物質(zhì)的方法。紅茶樣品加標(biāo)回收實驗結(jié)果顯示加標(biāo)回收率介于98.69%～104.77%,RSD均<5%(表4)。由此說明該方法準(zhǔn)確度高,操作過程中損失少,回收率高。

表4 準(zhǔn)確度試驗結(jié)果(n=6)

2.3 紅茶樣品測定

基于上述優(yōu)化后的檢測方法測定6種紅茶樣品,樣品中茶黃素總量從高到低依次為黃金茶紅茶、祁門工夫、祁紅毛峰、滇紅、坦洋功夫、一炮紅(圖3)。

a-滇紅茶HPLC色譜圖；b-6種紅茶樣品中茶葉內(nèi)含物含量

各樣品中4種主要茶黃素的含量范圍為0.554%～0.863%,其中TFDG在所有茶中含量最高。兒茶素方面,紅茶樣品均表現(xiàn)為簡單兒茶素的含量高于酯型兒茶素,這可能與茶鮮葉中的酯型兒茶素在發(fā)酵過程中被水解為簡單兒茶素,且酯型兒茶素在酶的催化作用下氧化聚合成茶黃素、茶紅素等有關(guān),由此造成紅茶中的酯型兒茶素含量較低。各樣品中咖啡堿含量最高為2.76%(祁門毛峰),最低為2.1%(滇紅茶)。所有檢測值均在標(biāo)準(zhǔn)曲線有效測定范圍內(nèi)。

3 結(jié)論

HPLC法是利用高壓泵將流動相壓入色譜柱內(nèi),待測組分經(jīng)過分配、吸附或者離子交換過程來完成分離,最后經(jīng)過檢測器進行檢測的一項分離技術(shù)[15-16]。HPLC具有分離度好和準(zhǔn)確度高的特點,是目前檢測兒茶素應(yīng)用最廣泛、技術(shù)最成熟的方法。劉錦文等[17]以V(甲醇)∶V(1%磷酸水溶液)=68.32為流動相,通過Diamonsil C18色譜柱分離,在279 nm條件下檢測到ECG和EGCG且分離效果好。付靜等[18]利用UPLC檢測出了綠茶中的5種兒茶素(C、EC、EGC、ECG、EGCG)均能達到較好的基線分離效果,方法具有良好的重復(fù)性和準(zhǔn)確性。張爽等[19]建立了一種超高效液相色譜-紫外檢測器測定茶飲料中沒食子酸(gallic acid,GA)和5種兒茶素(C,EC,EGC,ECG,EGCG)的方法,6種組分在7 min內(nèi)達到完全分離且各組分線性范圍良好。盡管UPLC已運用于茶黃素、兒茶素的檢測中,但儀器較昂貴,普及度不高,實驗操作要求嚴格,難以大規(guī)模推廣,且現(xiàn)有的檢測方法不能同時測定兒茶素和茶黃素含量,或是存在分離度差,定量不準(zhǔn)確等缺陷[20-21]。

本研究在HPLC檢測茶黃素的基礎(chǔ)上優(yōu)化檢測方法,建立了一種使用HPLC可同時、快速、準(zhǔn)確、高效檢測紅茶中Caf、EGC、DL-C、EC、EGCG、GCG、ECG、TF、TF-3-G、TF-3′-G和TFDG等11種物質(zhì)含量的方法。經(jīng)流動相酸濃度、流速和柱溫的優(yōu)化,確定了最佳色譜條件。同時考察了線性范圍、相關(guān)系數(shù),并進行精密度、重復(fù)性、穩(wěn)定性和準(zhǔn)確度試驗,RSD均<5%,加標(biāo)回收率介于98.69%～104.77%,最后使用該方法對6種紅茶中的兒茶素和茶黃素含量進行了檢測和比較。本研究為紅茶加工和生化品質(zhì)研究提供了一種快速可靠的檢測方法,以期更好地促進紅茶產(chǎn)業(yè)發(fā)展。