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穩(wěn)定表達CYP2A13和CYP2A13/POR的Flp-In CHO重組細胞系的構(gòu)建

2022-05-11 09:06:28陸定艷何俊奇王永林李勇軍
中國藥理學(xué)通報 2022年5期
關(guān)鍵詞:研究

孫 莉,陸定艷,劉 歡,何俊奇,孫 佳,王永林,李勇軍,楊 暢,劉 亭

(1. 貴州醫(yī)科大學(xué)貴州省藥物制劑重點實驗室/省部共建藥用植物功效與利用國家重點實驗室,貴陽 550004;2. 貴州醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院,貴陽 550025;3. 貴州醫(yī)科大學(xué)民族藥與中藥開發(fā)應(yīng)用教育部工程研究中心, 貴陽 550004)

細胞色素P450家族2亞家族A成員13(cytochrome P450 family 2 subfamily A member 13,CYP2A13)在肺、支氣管等人呼吸道組織中特異性表達。由于CYP2A13可以高效代謝活化4-甲基亞硝胺-1-3-吡啶基-1-丁酮[4-(methylnitrosamino)-1-(3-pyridyl)-1-butanone,NNK]、黃曲霉毒素B1(aflatoxin B1,AFB1)等前致癌物,從而使其產(chǎn)生致癌性,不少研究認為CYP2A13與肺癌的發(fā)生密切相關(guān)[1-2]。因此,構(gòu)建一個穩(wěn)定表達CYP2A13的細胞系,并利用此細胞系篩選能被CYP2A13代謝活化的前致癌物,對肺癌的預(yù)防具有重要意義。目前,已報道的CYP2A13的外源表達系統(tǒng)主要是細菌表達系統(tǒng)和昆蟲細胞表達系統(tǒng)[3-4]。細菌作為原核生物,其蛋白翻譯后的折疊和修飾過程過于簡單,因此表達的蛋白與哺乳動物蛋白結(jié)構(gòu)相差較多,會造成所表達的CYP450酶活性缺失。此外,CYP2A13的細菌和昆蟲細胞表達系統(tǒng)主要是用于體外代謝實驗[5],不能直接用于基于細胞毒的毒物篩選。因此,本文擬構(gòu)建穩(wěn)定表達CYP2A13的中國倉鼠卵巢細胞(chinese hamsters ovary,CHO),以達到既能表達CYP2A13蛋白供體外代謝實驗用,又能在細胞水平上篩選前致癌物的目的。

細胞色素P450氧化還原酶(NAPDH-cytochrome P450 oxidoreductase,POR)是細胞色素P450家族發(fā)揮活性的重要蛋白,可將NAPDH的兩個電子傳遞給CYP酶,使其發(fā)揮代謝活性[6-7]。研究表明,細菌表達系統(tǒng)和昆蟲細胞表達系統(tǒng)只有在雙表達POR和CYP450酶的條件下,CYP450酶才能發(fā)揮代謝活性[5]。但是,CHO是否需要共表達POR尚未有相關(guān)研究報道。因此,本文采用操作簡單、易于篩選的Flp-In CHO細胞,構(gòu)建穩(wěn)定表達CYP2A13的CYP2A13-CHO細胞和穩(wěn)定表達CYP2A13和POR的CYP2A13-POR-CHO細胞,并從中篩選代謝活性較好的細胞系,為體外研究CYP2A13代謝活化的前致癌物提供有利的研究工具。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1細胞 Flp-In CHO細胞株由浙江大學(xué)陳樞青教授贈送;POR-Flp-In CHO由課題組構(gòu)建保存。

1.1.2主要試劑 pcDNA5/FRT載體由浙江大學(xué)陳樞青教授贈送;Ham′s F12培養(yǎng)基(8120286)、胰蛋白酶(1917558)購自Gibco公司;TRIzol試劑(204203)購自Ambion公司;胎牛血清(FBSCN00419-2)購自AusgeneX公司;潮霉素B(H044-57US)、LipofectamineTM2000(2173562)購自Invitrogen公司;二辛可寧酸(bicinchoninic acid,BCA)蛋白濃度測定試劑盒(20190910)、牛血清白蛋白Ⅴ(bovine serum albumin,BSA)(A8020)、ECL Plus超敏發(fā)光液(27A069)、RIPA裂解液(MA0151-Dec-18E)購自索萊寶公司;辣根過氧化物酶標記的山羊抗兔IgG(ab205718)、辣根過氧化物酶標記的山羊抗小鼠IgG(ab6789)、兔抗CYP2A13多克隆抗體(ab135703)、小鼠抗GAPDH單克隆抗體(ab8245)購自Abcam公司;AFB1(2J0I16)購自青島普瑞邦生物工程有限公司;NNK(BCCB1513)購自Sigma公司;PVDF膜(R7CA8782A)購自Millipor公司;pcDNA5/FRT-CYP2A13由北京博邁德基因技術(shù)有限公司合成;熒光定量試劑盒TB GreenTMPremix Ex TaqTMⅡ(AK81979A)、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒PrimeScriptTMRT reagent Kit with gDNA Eraser(AJ91603A)購自TaKaRa公司;水溶性四甲基偶氮唑鹽(3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-5-(3-carboxymethoxyphenyl)-2-(4-sulfophenyl)-2H-tetrazolium,MTS)(0000408248)購自上海普洛麥格生物產(chǎn)品有限公司;PCR引物由上海恒英公司合成,引物如下:GAPDH上游物為5′-CATCATCTCCGCCCCTTCTG-3′,下游引物為5′-CATGGACCGTGGTCATGAGT-3′;CYP2A13上游引物為5′-CCTGGTGATGACCACCC-3′;下游引物為5′-CGTGGATCACTGCCTCTG-3′。

1.1.3儀器 細胞培養(yǎng)箱(美國Thermo Fisher Scientific公司); 低溫高速離心機(美國Thermo Fisher Scientific公司);多功能酶標儀(美國Thermo Fisher Scientific公司);蛋白快速轉(zhuǎn)印儀(美國Bio-Rad公司);凝膠成像儀(美國Bio-Rad公司);電泳儀(美國Bio-Rad公司);垂直電泳槽(美國Bio-Rad公司);倒置熒光顯微鏡(日本Nikon公司)。

1.2 方法

1.2.1細胞培養(yǎng)及處理 用含10%胎牛血清的Ham’s F12完全培養(yǎng)基,在37 ℃、5% CO2的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。細胞達到80%匯合度時,胰蛋白酶消化傳代,傳代比例為1 ∶3。

1.2.2CYP2A13-CHO和CYP2A13-POR-CHO細胞系構(gòu)建 取對數(shù)生長期的Flp-In CHO和POR-Flp-In CHO細胞,用完全培養(yǎng)基將細胞稀釋至1.5×108個·L-1,以2 mL/孔接種于6孔板中,置于37 ℃、5% CO2恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。待細胞匯合度達到70%時,用0.25 μg pcDNA5/FRT-CYP2A13質(zhì)粒(同時以不含CYP2A13基因的pcDNA5/FRT空載體作為陰性對照)及2.25 μg輔助質(zhì)粒pOG44與8 μL LipofectamineTM2000混合液轉(zhuǎn)染細胞。轉(zhuǎn)染48 h后,向培養(yǎng)基中加終濃度為500 mg·L-1的潮霉素B進行陽性克隆的篩選。

1.2.3qRT-PCR檢測CYP2A13 mRNA表達水平 利用RNA裂解液TRIzol將細胞充分裂解,提取細胞總RNA并逆轉(zhuǎn)錄成cDNA。qRT-PCR反應(yīng)體系:2 μL cDNA,10 μmol·L-1上下游引物各1 μL,12.5 μL TB GreenTMPremix Ex TaqTMⅡ。反應(yīng)條件: 95 ℃預(yù)變性5 min,(94 ℃變性30 s,58 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s)×40個循環(huán)。以GAPDH為內(nèi)參,通過2-ΔΔCt法進行數(shù)據(jù)分析。

1.2.4Western blot檢測CYP2A13蛋白表達水平 利用RIPA裂解液提取總蛋白并用BCA試劑盒進行蛋白濃度測定。取20 μg蛋白樣品變性后進行SDS-PAGE,然后在蛋白轉(zhuǎn)印儀的作用下,恒壓25 V、30 min將蛋白轉(zhuǎn)移到PVDF膜上。室溫下5% BSA封閉3 h,一抗(兔抗CYP2A13多克隆抗體,稀釋度1 ∶200;小鼠抗GAPDH單克隆抗體,稀釋度1 ∶5 000)于4 ℃孵育過夜。1× TBST洗膜后,分別加入二抗(辣根過氧化物酶標記的山羊抗兔IgG或辣根過氧化物酶標記的山羊抗小鼠IgG,1 ∶2 000),室溫下孵育2 h。1× TBST洗膜后,將ECL Plus超敏發(fā)光液均勻滴加在PVDF膜上避光反應(yīng)1 min,然后放入凝膠成像儀中顯影曝光。使用Quantity One軟件進行灰度值分析,以目的蛋白與內(nèi)參GAPDH條帶灰度值的比值作為目的蛋白的相對表達量。

1.2.5MTS法測定AFB1、NNK對CYP2A13-CHO細胞、CYP2A13-POR-CHO的細胞毒性 取對數(shù)生長期的Flp-In CHO空白細胞(CHO)、Flp-In CHO空載體細胞(vehicle-CHO)、CYP2A13-CHO細胞和CYP2A13-POR-CHO細胞,用完全培養(yǎng)基將上述4種細胞分別稀釋至密度為1.0×108個·L-1,以100 μL/孔接種到96孔板中培養(yǎng)24 h后,加入AFB1(0、20、30、40 μmol·L-1)和NNK(0、40、80 μmol·L-1)的完全培養(yǎng)基。藥物作用24 h后,棄去含藥培養(yǎng)基,每孔加入100 μL無血清培養(yǎng)基和5 μL的MTS,繼續(xù)培養(yǎng)2.5 h后,用酶標儀在490 nm處檢測各孔的吸光度值(A),按照公式計算存活率。存活率/%=(A給藥-A培養(yǎng)基/A空白-A培養(yǎng)基)×100%。

2 結(jié)果

2.1 CYP2A13-CHO、CYP2A13-POR-CHO的CYP2A13的表達水平明顯升高相比于CHO和vehicle-CHO祖細胞,CYP2A13-CHO細胞和CYP2A13-POR-CHO細胞的CYP2A13 mRNA和蛋白表達水平均升高(Fig 1, 2)。

Fig 1 The mRNA expression of CYP2A13 in different groups n=3 )

Fig 2 The protein expression of CYP2A13 in different groups n=3)

2.2 NNK、AFB1對CYP2A13-CHO和CYP2A13-POR-CHO細胞具有較強毒性作用各濃度的AFB1、NNK對CHO和vehicle-CHO沒有殺傷作用。但是,在AFB1和NNK作用下,CYP2A13-CHO和CYP2A13-POR-CHO的存活率都明顯降低。相同給藥濃度下,AFB1和NNK對CYP2A13-CHO的殺傷作用明顯強于CYP2A13-POR-CHO細胞(Tab 1,2)。

3 討論

肺癌的發(fā)病率和死亡率均位居第一,已成為危害人類健康的重大疾病之一[8-9]。研究表明,CYP2A13作為一種在氣管和肺粘膜中選擇性表達的CYP450酶,可高效代謝AFB1和NNK等前致癌物,與肺癌的發(fā)生密切相關(guān)[1-2,10-11]。因此,構(gòu)建一個篩選能被CYP2A13代謝活化的前致癌物的工具至關(guān)重要。

Flp-In CHO是將FRT位點植入到CHO細胞染色體改造而來的細胞株,只需運用特殊的載體(pcDNA5/FRT)就可將所轉(zhuǎn)染的cDNA定點整合到FRT位點,從而保證了所轉(zhuǎn)染的外源基因具有相同的表達效率[12]。因此該細胞株只需通過潮霉素B的壓力篩選,即可得到穩(wěn)定且均一表達的轉(zhuǎn)染細胞系,省去了篩選單克隆的時間,大大提高了效率[13-14]。課題組前期通過慢病毒轉(zhuǎn)染,已成功構(gòu)建穩(wěn)定表達POR的POR-Flp-In CHO細胞系。因此,本研究在課題組前期研究的基礎(chǔ)上,分別構(gòu)建了CYP2A13-CHO和CYP2A13-POR-CHO兩種體外重組細胞系,并比較了兩者的代謝活性。

本研究發(fā)現(xiàn)AFB1和NNK均可對CYP2A13-CHO和CYP2A13-POR-CHO兩種細胞系產(chǎn)生毒性作用,且CYP2A13-CHO對NNK、AFB1的敏感性高于CYP2A13-POR-CHO。POR是一個定位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜上重要的黃素蛋白[15],其可將NAPDH的電子轉(zhuǎn)移至肝微粒體細胞色素P450氧化酶,是CYP450酶的唯一電子供體,在CYP450對底物的代謝活化過程中起著必不可少的作用[16-17]。CYP2A13只有在POR提供電子的前提下才能發(fā)揮代謝活化前致癌物的作用。但有趣的是,本研究發(fā)現(xiàn)單轉(zhuǎn)染CYP2A13的細胞系的代謝活性反而要高于雙轉(zhuǎn)染CYP2A13/POR細胞系的代謝活性。

有研究發(fā)現(xiàn)大鼠POR蛋白的晶體結(jié)構(gòu)同人的POR蛋白類似,同樣可將來自NADPH的電子依次傳遞給黃素腺嘌呤二核苷和黃素單核苷,最終將電子傳遞給CYP450酶的亞鐵離子,使其對底物產(chǎn)生代謝作用[18]。序列分析表明,中國倉鼠的POR和人POR序列相似,我們推測CYP2A13也可利用CHO表達的POR,從而代謝激活前致癌物NNK、AFB1產(chǎn)生細胞毒性作用。相較CYP2A13-CHO,CYP2A13-POR-CHO轉(zhuǎn)入較多的外源基因(POR和eGFP),對細胞本身產(chǎn)生了較大負擔(dān),使CYP2A13的表達量降低,從而導(dǎo)致其對NNK、AFB1的敏感性不高。

綜上所述,本研究構(gòu)建了一株CYP2A13表達較高且活性較好的CYP2A13-CHO細胞系,為篩選CYP2A13代謝激活的前致癌物提供了工具。

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