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莓茶決明子固體飲料對(duì)大鼠慢性酒精肝損傷的保護(hù)作用

2022-06-02 08:44:46湯荃荃張梓瑩滕建造劉子龍劉仲華
食品與機(jī)械 2022年5期

湛 莉 湯荃荃 張梓瑩 石 昱 滕建造 劉子龍 劉仲華 張 盛

(1. 湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院,湖南 長(zhǎng)沙 410128;2. 國(guó)家植物功能成分利用工程技術(shù)研究中心,湖南 長(zhǎng)沙 410128;3. 湖南艾嘉生物科技有限公司,湖南 長(zhǎng)沙 410301)

酒精性肝損傷(ALD)是因長(zhǎng)期過量飲酒導(dǎo)致的肝臟疾病,通常表現(xiàn)為酒精性脂肪肝、酒精性肝炎,并逐步演變成肝纖維化、肝硬化,甚至是肝癌等[1]。常用于治療酒精性肝損傷的方法是藥物治療和手術(shù)治療[2],但兩者存在較大副作用[3]。

莓茶又名藤茶,學(xué)名為顯齒蛇葡萄(Ampelopsisgrossedentata)[4],具有顯著的抗炎、抗氧化[5]、抗菌[6]、保肝[7-8]等功效。莓茶中的二氫楊梅素可改善肝纖維化[9],總黃酮可有效縮短小鼠醒酒時(shí)間[10]。其他活性成分如莓茶多糖對(duì)小鼠體內(nèi)肝組織 MDA的生成也具有顯著抑制作用。

決明子(Cassiasemen)是中國(guó)傳統(tǒng)藥食兩用資源[11-12]。研究[13]發(fā)現(xiàn),決明子蒽醌等成分可以通過調(diào)節(jié)Nrf2介導(dǎo)的ERK/MAPK/JNK等信號(hào)通路起到肝臟保護(hù)作用。

研究擬建立酒精性肝損傷SD大鼠模型,用不同劑量莓茶決明子固體飲料灌胃模型大鼠,通過細(xì)胞毒性試驗(yàn)確定莓茶提取物和決明子提取物顆粒配比,分析模型大鼠肝臟指數(shù)、病理學(xué)指標(biāo)、血清和肝臟生化指標(biāo),進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組分析探究莓茶決明子固體飲料對(duì)大鼠酒精肝損傷的保護(hù)作用,以期實(shí)現(xiàn)植物固體飲料在功能食品領(lǐng)域的深度開發(fā)。

1 材料與方法

1.1 主要材料與儀器

莓茶提取物、決明子提取物:湖南艾嘉生物科技有限公司;

大鼠正常肝細(xì)胞BRL3A:武漢普諾賽生命科技有限公司;

雄性SD大鼠:SPF級(jí),體重180~220 g,湖南斯萊克景達(dá)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司;

MEM培養(yǎng)基:上海中喬新舟生物科技有限公司;

FBS(胎牛血清):賽業(yè)生物科技有限公司;

雙抗(青霉素、鏈霉素)、EDTA-胰蛋白酶消化液:北京酷來搏科技有限公司;

RNA裂解液、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、熒光定量PCR試劑盒:美國(guó)Vazyme有限公司;

細(xì)胞計(jì)數(shù)試劑(CCK8):北京索萊寶科技有限公司;

ELISA檢測(cè)試劑盒:長(zhǎng)沙奧基生物科技有限公司;

D-hanks平衡鹽溶液:實(shí)驗(yàn)室配制;

43%vol牛欄山陳釀:市售;

CO2培養(yǎng)箱:BPN-80CW(UV)型,上海一恒科學(xué)儀器有限公司;

恒溫水浴鍋:BWS-27型,上海一恒科學(xué)儀器有限公司;

超凈工作臺(tái):Protect-1FD型,賽默飛世爾科技公司;

冷凍離心機(jī):Hettich MIKRO-22R型,德國(guó)Hettich公司;

倒置顯微鏡:DMIL型,德國(guó)Leica有限公司;

多功能酶標(biāo)儀:MK3型,賽默飛世爾科技公司。

1.2 細(xì)胞毒性試驗(yàn)

1.2.1 細(xì)胞毒性試驗(yàn)

(1) 細(xì)胞培養(yǎng)基:10%FBS(胎牛血清)+MEM培養(yǎng)基+1%P/S(雙抗)。

(2) 母液制備:將莓茶提取物和決明子提取物分別溶解于蒸餾水中,37 ℃水浴超聲至完全溶解,過0.45 μm細(xì)菌過濾膜,配制成20 mg/mL的莓茶提取物母液和決明子提取物母液,4 ℃下保存?zhèn)溆谩o水乙醇過0.22 μm細(xì)菌過濾膜后保存?zhèn)溆谩?/p>

(3) 細(xì)胞傳代:當(dāng)細(xì)胞增殖密度為80%~90%時(shí)將培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)基倒出,用D-hanks清洗2~3次,根據(jù)培養(yǎng)皿大小加入0.5~1.0 mL EDTA消化液,放入CO2培養(yǎng)箱靜置1 min。取出培養(yǎng)皿并向其中加入1~2 mL培養(yǎng)基混勻終止消化,用移液槍將貼壁細(xì)胞輕輕吹打下來,移入15 mL離心管中,1 000 r/min離心5 min;棄上清,加入1~2 mL培養(yǎng)基與收集的細(xì)胞輕輕吹打均勻,分別接種在2~3個(gè)培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)皿中增殖培養(yǎng)。

(4) 毒性試驗(yàn):取培養(yǎng)皿貼壁細(xì)胞消化離心,棄上清,收集細(xì)胞加入1 mL培養(yǎng)基吹打均勻,吸取10 μL進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),如細(xì)胞密度過大稀釋10~20倍再計(jì)數(shù)。計(jì)算得到1 mL培養(yǎng)基中細(xì)胞數(shù)量后按需稀釋細(xì)胞,接種于96孔板培養(yǎng)24 h使細(xì)胞貼壁。24 h后移除96孔板上清。分別取莓茶提取物和決明子提取物母液700 μL,配制成質(zhì)量濃度為10 000.00,5 000.00,2 500.00,1 250.00,625.00,312.50,156.25,78.13,39.06 μg/mL溶液,分別加入同體積培養(yǎng)基混勻。空白組僅含培養(yǎng)基。乙醇以培養(yǎng)基稀釋,初始體積分?jǐn)?shù)為20%,稀釋至0.078%,方法同上。

溶液配制完成后加入96孔板中進(jìn)行干預(yù),各質(zhì)量濃度6個(gè)平行,每孔加入100 μL溶液繼續(xù)培養(yǎng)24 h。24 h后移除上清,加入90 μL培養(yǎng)基和10 μL CCK-8試劑,培養(yǎng)箱靜置1.5~2.0 h后,檢測(cè)450 nm處吸光度,計(jì)算細(xì)胞存活率。酒精干預(yù)是48 h后進(jìn)行吸光度檢測(cè)并計(jì)算細(xì)胞存活率。最終得出莓茶提取物和決明子提取物安全質(zhì)量濃度范圍及適宜酒精損傷的體積分?jǐn)?shù)范圍。確定莓茶提取物和決明子提取物安全質(zhì)量濃度范圍后設(shè)置莓茶決明子固體飲料顆粒配比,并進(jìn)行細(xì)胞毒性試驗(yàn)計(jì)算細(xì)胞存活率,確定安全質(zhì)量濃度范圍并分析固體飲料對(duì)大鼠酒精肝細(xì)胞模型細(xì)胞存活率的影響。

分別按式(1)、式(2)計(jì)算試驗(yàn)組和空白組細(xì)胞存活率。

(1)

(2)

式中:

RA——試驗(yàn)組細(xì)胞存活率,%;

RB——空白組細(xì)胞存活率,%;

A——試驗(yàn)組細(xì)胞在450 nm處的光密度值;

B——空白組細(xì)胞在450 nm處的光密度值;

n——試驗(yàn)平行個(gè)數(shù)。

1.2.2 細(xì)胞RNA提取及QPCR試驗(yàn) 按照RNA提取試劑盒、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、熒光定量PCR試劑盒(引物序列見表1)步驟檢測(cè)不同體積分?jǐn)?shù)酒精損傷細(xì)胞后的Nrf2、HO-1的表達(dá)量,確定適合損傷的酒精體積分?jǐn)?shù)。根據(jù)確定的酒精體積分?jǐn)?shù)檢測(cè)莓茶決明子固體飲料顆粒配比對(duì)BRL3A細(xì)胞存活率的影響。

表1 引物序列Table 1 Primer sequence

1.3 試驗(yàn)方法

1.3.1 動(dòng)物試驗(yàn) 飼養(yǎng)環(huán)境保持12 h光照和黑暗交替,室溫控制在(25±2) ℃,相對(duì)濕度40%~60%。40只SD大鼠隨機(jī)分成空白組(CON)、模型組(ETOH)、固體飲料組。固體飲料組分低劑量組(L)、中劑量組(M)、高劑量組(H),每組各8只,自由進(jìn)食進(jìn)水,適應(yīng)性喂養(yǎng)1周,第2周開始灌胃,每周2次體重稱量;空白組灌胃7.5 mL/kg蒸餾水;模型組灌胃5 mL/kg蒸餾水,固體飲料組灌胃5 mL/kg固體飲料水溶液(L:50.00 mg/kg莓茶提取物+16.70 mg/kg決明子提取物;M:250.00 mg/kg莓茶提取物+83.50 mg/kg 決明子提取物;H:375.00 mg/kg莓茶提取物+125.25 mg/kg決明子提取物),灌胃1 h后,模型組和固體飲料組大鼠第1~29 d灌胃43%vol白酒2.5 mL/kg,第30天灌胃43%vol白酒4 mL/kg。

1.3.2 樣品的采集與處理 末次灌胃后,各組大鼠空腹(禁食禁水)16 h后稱重,將大鼠麻醉后進(jìn)行解剖,采集心臟動(dòng)脈血,摘取肝臟,預(yù)冷生理鹽水潤(rùn)洗后稱重,取一葉肝臟用4%多聚甲醛固定液固定,制作肝組織切片,后期進(jìn)行組織病理學(xué)觀察,其余肝臟分裝后于液氮速凍,-80 ℃ 冰箱保存。

1.3.3 理化指標(biāo)檢測(cè)

(1) 肝臟病理學(xué)檢查:剪取肝臟一葉組織浸入4%多聚甲醛中固定,制作石蠟切片,蘇木精—伊紅(HE)染色,并于光學(xué)顯微鏡下觀察肝細(xì)胞的形態(tài)變化、炎癥反應(yīng)、脂肪空泡等病理變化。

(2) 血清生化指標(biāo):取心臟動(dòng)脈血,靜置2 h,3 000 r/min 離心15 min,取上層血清,按照ELISA試劑盒方法檢測(cè)ALT、AST、LDH活性和IL-6、TNF-α濃度,其余血清保存于-80 ℃冰箱。

(3) 肝臟生化指標(biāo):用預(yù)冷生理鹽水沖洗肝臟組織并制備10%肝臟組織勻漿,于4 ℃、3 000 r/min下離心10 min,取上清液,按照ELISA試劑盒說明書方法檢測(cè)SOD活性和TG、MDA、GSH含量。

1.3.4 轉(zhuǎn)錄組測(cè)序 每組大鼠肝臟隨機(jī)取3份用于轉(zhuǎn)錄組測(cè)序和差異基因表達(dá)分析。RNA提取和轉(zhuǎn)錄組測(cè)序由上海美吉生物醫(yī)藥科技有限公司完成。測(cè)序得到的原始數(shù)據(jù)過濾篩選后得到高質(zhì)量數(shù)據(jù)(clean data),將各樣品的Clean Reads與指定參考基因組進(jìn)行序列比對(duì),采用TPM方法計(jì)算基因表達(dá)量,DEseq2軟件篩選差異表達(dá)基因,篩選閾值為|log2(Fold change)|≥1和P值<0.05。篩選出上調(diào)和下調(diào)的差異基因并進(jìn)行GO功能注釋分析和KEGG富集分析從而篩選出差異基因富集通路[14]。

1.4 數(shù)據(jù)處理

所有試驗(yàn)均設(shè)置至少3組生物學(xué)重復(fù),數(shù)據(jù)表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差,使用GraphPad Prism 8進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。兩兩比較用Dunnett-t檢驗(yàn),多組數(shù)據(jù)比較采用One-way ANOVA進(jìn)行分析。圖中*表示與正常組相比,#表示與模型組相比,*/#表示P<0.05;**/##表示P<0.01;***/###表示P<0.001;****/####表示P<0.000 1。P<0.05認(rèn)為差異顯著,具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果與分析

2.1 細(xì)胞毒性試驗(yàn)

莓茶提取物對(duì)細(xì)胞BRL3A的安全質(zhì)量濃度范圍為0.00~156.25 μg/mL[圖1(a)],決明子提取物對(duì)細(xì)胞BRL3A的安全質(zhì)量濃度范圍為0.00~39.06 μg/mL[圖1(b)]。莓茶提取物安全質(zhì)量濃度最大值是決明子提取物的3~4倍,因此固體飲料的比例定為ρ莓茶提取物∶ρ決明子提取物=3∶1,在安全質(zhì)量濃度范圍內(nèi)進(jìn)行細(xì)胞毒性試驗(yàn),測(cè)定固體飲料的安全配比(ρ決明子提取物∶ρ莓茶提取物)范圍為0~30∶90[圖1(c)]。當(dāng)細(xì)胞存活率為50%左右時(shí)的酒精濃度適宜損傷,因此適宜損傷細(xì)胞的酒精體積分?jǐn)?shù)為2.5%~5.0%[圖1(d)]。

圖1 細(xì)胞毒性試驗(yàn)結(jié)果Figure 1 Cytotoxicity test results

2.2 酒精性肝損傷動(dòng)物模型的確立

Nrf2是一種重要的細(xì)胞保護(hù)轉(zhuǎn)錄因子,適度增強(qiáng)Nrf2活性可有效抑制細(xì)胞氧化應(yīng)激,提高細(xì)胞存活率[15]。Nrf2活性過高會(huì)造成細(xì)胞氧化損傷,促進(jìn)腫瘤細(xì)胞增殖、增強(qiáng)腫瘤細(xì)胞耐藥性[16]。HO-1是一種抗氧化酶,正常生理狀態(tài)下,HO-1表達(dá)量較低,當(dāng)機(jī)體發(fā)生炎癥、感染時(shí),HO-1表達(dá)量上升,對(duì)機(jī)體產(chǎn)生損傷[17]。為探究適宜損傷濃度的酒精處理BRL3A細(xì)胞48 h后Nrf2和HO-1的表達(dá)量及固體飲料配方對(duì)BRL3A細(xì)胞存活率的影響,進(jìn)行了QPCR試驗(yàn),體積分?jǐn)?shù)為4.5%、5.0% 的酒精處理細(xì)胞后RNA濃度過低,未進(jìn)行后續(xù)QPCR試驗(yàn)。結(jié)果表明,當(dāng)酒精體積分?jǐn)?shù)為4.0%時(shí),炎癥因子Nrf2和HO-1的表達(dá)量均顯著上升[圖2(a)、圖2(b)],所以酒精體積分?jǐn)?shù)為4.0%時(shí)可有效建立酒精損傷模型。在安全質(zhì)量濃度范圍內(nèi),模型組(ETOH)與處理組細(xì)胞存活率顯著低于空白組(CON),處理組(L、M、H)細(xì)胞存活率顯著高于模型組(ETOH),說明固體飲料能夠有效緩解酒精造成的細(xì)胞存活率降低的問題[(圖2(c)])。

圖2 酒精模型的確立及固體飲料對(duì)其細(xì)胞存活率的影響Figure 2 Establishment of the alcohol model and effects of formulation on cell viability

2.2 動(dòng)物試驗(yàn)結(jié)果

2.2.1 大鼠肝系數(shù)情況 肝系數(shù)是指肝臟鮮重與大鼠重量的比值,正常情況下肝臟與體重的比值是恒定的,肝系數(shù)增大,表示肝臟水腫、炎癥或增生肥大;肝系數(shù)減小表示臟器萎縮或者其他退行性病變[18]。CON組、ETOH組及固體飲料組的肝系數(shù)無明顯差異性(P>0.05),說明試驗(yàn)灌胃的酒精濃度對(duì)肝臟外在表征無顯著影響(表2)。

表2 各組大鼠肝系數(shù)Table 2 Hepatic index of each group rats

2.2.2 肝組織病理形態(tài) 由圖3可知,HE染色顯示CON組大鼠肝細(xì)胞肝索排列整齊,肝小葉、肝竇結(jié)構(gòu)清晰,無水腫、脂肪變性,有少量肝細(xì)胞死亡;ETOH組大鼠肝組織切片具有典型的病理特征,肝細(xì)胞大小不均,氣球樣變性,有較多小泡性脂肪空泡,同時(shí)伴有炎癥浸潤(rùn)、細(xì)胞壞死。相較于ETOH組,L組大鼠肝細(xì)胞水腫明顯改善,空泡變性減少,炎癥因子浸潤(rùn)減少,肝細(xì)胞排列紊亂情況有所改善。M組和H組與ETOH組相比,肝細(xì)胞形態(tài)趨于正常,炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)明顯改善,細(xì)胞空泡變性明顯減少,偶有細(xì)胞壞死,肝細(xì)胞排列與CON相比差異較小。綜上,莓茶決明子固體飲料可有效改善大鼠酒精性肝損傷的組織病理學(xué)病變。

圖3 大鼠肝組織H&E染色Figure 3 HE staining of rat liver tissue (40×)

2.2.3 大鼠血清生化指標(biāo) 臨床上,AST、ALT、LDH是反應(yīng)肝損傷的敏感指標(biāo)[17-18],AST、ALT和LDH的活性升高與肝損傷呈正比。與CON組相比,ETOH組血清ALT、AST、LDH水平極顯著升高(圖4,P<0.000 1),說明酒精肝損傷模型建立成功,提示肝細(xì)胞壞死、細(xì)胞膜通透性增加[18]。固體飲料各劑量組均可顯著抑制大鼠飲酒導(dǎo)致的AST、ALT、LDH的酶活增高,且效果呈劑量依賴性。

圖4 大鼠血清生化指標(biāo)水平Figure 4 Serum biochemical index levels in rats

2.2.4 IL-6和TNF-α水平 炎癥因子分泌是導(dǎo)致肝損傷的重要途徑。IL-6是促炎癥細(xì)胞因子,參與機(jī)體炎癥反應(yīng)。TNF-α在介導(dǎo)肝損傷中起一定作用,可直接導(dǎo)致細(xì)胞毒性,造成肝細(xì)胞壞死,影響肝內(nèi)微循環(huán)[19]。如圖5所示,與CON組相比,ETOH組血清炎癥因子IL-6、TNF-α水平極顯著升高,相對(duì)于ETOH組,固體飲料各劑量組均可極顯著降低炎癥因子水平(P<0.000 1),且與劑量濃度呈正比。因此,莓茶決明子固體飲料可顯著減輕大鼠飲酒造成的炎癥反應(yīng)。

圖5 大鼠血清炎癥因子水平Figure 5 Rat serum inflammatory factor level

2.2.5 大鼠肝臟生化指標(biāo) 酒精代謝過程產(chǎn)生活性氧自由基,過多氧化劑會(huì)造成自由基脂質(zhì)過氧化,機(jī)體抗氧化酶GSH、SOD活性下降,抗氧化防御系統(tǒng)水平降低[20]。由圖6(a)、圖6(c)可知,與CON組相比,ETOH組大鼠肝臟中GSH、SOD含量均極顯著下降(P<0.000 1)。MDA是脂質(zhì)過氧化的第二產(chǎn)物,是反映組織損傷的重要指標(biāo),ETOH組大鼠肝臟TG、MDA含量較CON極顯著升高(P<0.000 1)[圖6(b)、圖6(d)]。通過固體飲料干預(yù),各劑量組GSH、MDA、TG濃度和SOD活性與ETOH組相比具有顯著差異(P<0.05),固體飲料M、H組MDA含量與CON組無顯著差異(P>0.05),H組SOD、TG含量與CON組無顯著差異(P>0.05),結(jié)果表明固體飲料低中高劑量均可有效提高大鼠肝臟抗氧化酶的活力,加速清除氧自由基,緩解脂肪肝形成。

圖6 大鼠肝臟生化指標(biāo)水平Figure 6 Rat liver biochemical index levels

以上研究表明固體飲料低、中、高劑量組均能顯著降低血清中肝損傷酶活性和炎癥因子表達(dá)水平,抑制脂質(zhì)過氧化和脂肪肝的生成,且呈劑量依賴性,高劑量組效果最佳。

2.2.6 轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)評(píng)估 將CON組、ETOH組和H組大鼠肝臟的RNA轉(zhuǎn)錄組測(cè)序結(jié)果與參考基因組進(jìn)行比對(duì)共得到原始測(cè)序數(shù)據(jù)399 553 582個(gè),經(jīng)質(zhì)控后得到測(cè)序數(shù)據(jù)395 459 552個(gè)。獲得的質(zhì)控后的測(cè)序數(shù)據(jù)中,所有樣品的唯一比對(duì)率均達(dá)到82%以上,Q20值均大于96%,Q30值均大于91%,表明測(cè)序數(shù)量和質(zhì)量可靠(見表3)。

表3 樣本測(cè)序質(zhì)量和序列?Table 3 Sample sequencing quality and sequence mapping

2.2.7 差異表達(dá)分析 根據(jù)1.3.4中篩選標(biāo)準(zhǔn),ETOH組較CON組,共有229個(gè)基因表達(dá)存在顯著差異。ETOH組中有174個(gè)基因上調(diào),55個(gè)基因下調(diào)。H組較ETOH組,共有106個(gè)基因表達(dá)存在顯著差異,H組中有69個(gè)基因上調(diào),37個(gè)基因下調(diào)。H組較CON組,有72個(gè)差異基因,有31個(gè)基因上調(diào),41個(gè)基因下調(diào)。由差異基因結(jié)果分析可知,在H組固體飲料的干預(yù)下,酒精肝損傷模型大鼠與正常大鼠的差異減小,表達(dá)統(tǒng)計(jì)圖見圖7。

圖7 差異表達(dá)統(tǒng)計(jì)Figure 7 Statistic analysis of the differentially expressed genes

2.2.8 差異表達(dá)基因的功能注釋和富集分析

(1) GO注釋:對(duì)ETOH組與CON組的229個(gè)差異基因以及H組與ETOH組的106個(gè)差異基因進(jìn)行注釋分析,注釋結(jié)果統(tǒng)計(jì):分子功能分組主要涉及分子功能調(diào)節(jié)劑、轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)活性、催化活性和結(jié)合等功能;生物過程分組主要涉及免疫系統(tǒng)過程、細(xì)胞成分組織或生物發(fā)生、定位、多細(xì)胞生物過程、發(fā)展過程、對(duì)刺激的反應(yīng)、代謝過程、生物調(diào)節(jié)等功能;細(xì)胞組分分組主要涉及胞外區(qū)部分、含蛋白質(zhì)復(fù)合物、膜、膜部分、細(xì)胞器部分、細(xì)胞器和細(xì)胞部分等功能(表4)。

(2) KEGG注釋:將ETOH組與CON組、H組與ETOH組差異基因進(jìn)行KEGG注釋分析,表5和表6顯示了酒精干預(yù)和固體飲料干預(yù)后上調(diào)和下調(diào)的差異基因涉及排名前20的通路情況。酒精干預(yù)后,上調(diào)和下調(diào)基因涉及代謝通路分支有代謝、遺傳信息處理、環(huán)境信息處理、細(xì)胞過程、有機(jī)系統(tǒng)、人類疾病,上調(diào)差異基因主要富集在運(yùn)輸和分解代謝、折疊、分類和降解、其他氨基酸代謝等通路,下調(diào)差異基因主要富集在細(xì)胞生長(zhǎng)與死亡、運(yùn)輸和分解代謝、氨基酸的代謝和脂質(zhì)代謝等通路(表5)。

表5 ETOH組與CON組差異基因KEGG分類統(tǒng)計(jì)Table 5 KEGG Classification chart CON group vs ETOH group

固體飲料干預(yù)后,上調(diào)和下調(diào)差異基因涉及人類疾病、有機(jī)系統(tǒng)、細(xì)胞過程、環(huán)境信息處理遺傳信息處理和代謝等通路分支,上調(diào)基因富集包括癌癥、心血管疾病、免疫系統(tǒng)、細(xì)胞生長(zhǎng)和死亡等通路,下調(diào)差異基因富集包括氨基酸代謝、輔因子和維生素代謝、碳水化合物代謝等通路(表6)。

表6 H組與ETOH組差異基因KEGG注釋統(tǒng)計(jì)Table 6 KEGG comment statistics of Classification chart of H group and ETOH group

為明確酒精干預(yù)和固體飲料干預(yù)后的關(guān)鍵差異基因,進(jìn)行進(jìn)一步KEGG富集分析,其校正后的P值<0.05,為顯著富集。由表7可知,基因主要富集到氨基酸的生物合成、半胱氨酸和蛋氨酸代謝、代謝途徑、精氨酸生物合成和碳代謝。結(jié)合上述結(jié)果,篩選出關(guān)鍵差異基因spermidinesynthase(亞精胺合酶)、Sirt7(去乙酰化酶7)、RT1-A2(RT1 class Ia,locus A2)、RT1-CE1(RT1 I類,軌跡1)、LOC103692716(熱休克蛋白 HSP 90-α)、Acap2(ArfGAP),這些基因與肝臟功能、炎癥反應(yīng)、脂質(zhì)過氧化等相關(guān)。由此推測(cè)莓茶決明子固體飲料緩解酒精肝損傷與上述關(guān)鍵差異基因和通路相關(guān)。

表7 KEGG富集結(jié)果Table 7 KEGG enrichment results

3 結(jié)論

將莓茶提取物與決明子提取物顆粒配成的固體飲料應(yīng)用于酒精肝損傷的護(hù)肝功效研究,最終結(jié)果表明低、中、高劑量的固體飲料均能改善飲酒大鼠的肝功能,有效緩解酒精引起的肝損傷,且作用機(jī)制與spermidinesynthase、Sirt7、RT1-A2、RT1-CE1、LOC103692716、Acap2基因調(diào)節(jié)及氨基酸的生物合成、半胱氨酸和蛋氨酸代謝、代謝途徑、精氨酸生物合成和碳代謝等通路有關(guān)。后續(xù)可進(jìn)一步挖掘數(shù)據(jù)探明更詳細(xì)的作用機(jī)制并開展莓茶與決明子的協(xié)同功效研究。

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