沈洋洋,牛秀瓏,郁春艷,鄭小燕,劉俊汝,鄧為民
(1.天津醫科大學基礎醫學院免疫學系,國家教育部免疫微環境與疾病重點實驗室,天津 300070;2.中國人民武裝警察部隊特色醫學中心勤務環境皮膚疾病防治研究所,天津 300162)
卵巢癌(ovarian cancer,OvCa)是婦科惡性腫瘤中最常見的死因之一,是全球女性第七位常見癌癥,同時死亡率也較高,5 年生存率低于50%[1-2]?;熓悄[瘤治療的重要手段之一,然而耐藥嚴重阻礙了腫瘤化療效果。順鉑是目前用于治療OvCa 最有效的化療藥物之一,但患者經常會出現對順鉑治療的耐藥,因此了解OvCa 對順鉑耐藥機制對腫瘤治療具有重要意義。近年來,越來越多的研究關注腫瘤與炎癥之間的聯系。白細胞介素-6(interleukin 6,IL-6)是由多種細胞產生的炎癥因子,研究發現,IL-6 與OvCa 之間關系密切,涉及腫瘤的生存、生長、侵襲、血管生成和耐藥[3-4]。臨床研究顯示,IL-6水平與腫瘤的不良預后和化療敏感性相關,IL-6 和OvCa 的惡性程度以及預后相關[5-6],IL-6 可以促進OvCa 干細胞聚集[7],可通過核因子(NF)-κB 途徑促進OvCa 耐藥[8]等。本研究對外源性IL-6 在誘導OvCa 順鉑耐藥中的作用進行了初步研究,為臨床解決OvCa 順鉑耐藥提供新的思路。
1.1 材料 裸鼠購自中國北京軍事醫學科學院實驗動物中心;人OvCa 細胞系A2780 細胞購自美國ATCC 公司;胎牛血清(FBS)購自美國GIBCO 公司;RPMI-1640 培養基購自中國南京凱基生物科技發展有限公司;重組人白細胞介素-6(recombinant human interleukin 6,rhIL-6)、AG490(JAK2/STAT3 抑制劑)購自美國Sigma 公司;STAT3 抗體購自美國SAB Biotech 公司;p-STAT3 抗體購自美國Cell Signaling 公司;β-actin 購自中國北京瑞康生物技術有限公司;順鉑購自中國齊魯醫藥公司;HRP 酶標二抗購自美國Rockland 公司;Annexin V-FITC 凋亡試劑盒購自中國南京凱基生物科技發展有限公司;CCK8 試劑盒購自中國碧云天生物技術有限公司。
1.2 方法
1.2.1 細胞培養 A2780 細胞用含有10%FBS 的RPMI-1640 培養基培養,培養基中含80 U/mL 青霉素和80 μg/mL 鏈霉素,置于5%CO2、37℃培養箱中培養,每1~2 d 更換培養基并消化傳代。
1.2.2 CCK8 實驗 取對數生長期A2780 細胞接種于96 孔板,每孔為3×103/100 μL,分為對照(Control)組、AG490 組、順鉑(Cisplatin)組、AG490+Cisplatin組、重組人白細胞介素-6(rhIL-6)組、rhIL-6+AG490 組、rhIL-6+Cisplatin 組和rhIL-6+AG490+Cisplatin 組,共8 組,每組設立3 個復孔。待細胞貼壁后,AG490 組、AG490+Cisplatin 組、rhIL-6+AG490組和rhIL-6+AG490+Cisplatin 組加入AG490(50 μmol)[9]預處理1 h,之后加入rhIL-6(50 ng/mL)[10]或順鉑(10 μmol),5%CO2、37°C 培養箱中培養72 h,培養結束后去除培養基,用Hank′s 洗滌兩次,每孔加入100 μL 培養基(含10 μL 的CCK8 試劑),酶標儀檢測波長為450 nm 的光密度值(OD450),利用SPSS 對數據進行統計學分析。
1.2.3 Western 印跡實驗 取對數生長期A2780 細胞接種于6 孔板,每孔為5×105/2 mL,分為Control 組、AG490 組、rhIL-6 組和rhIL-6+AG490 組。細胞貼壁后加藥處理12 h,將RIPA、蛋白酶抑制劑、磷酸蛋白酶抑制劑以100∶1∶1 配置裂解液,提取細胞總蛋白。BCA 蛋白檢測試劑盒檢測蛋白濃度,配置10%的分離膠,將40 μg/孔的蛋白用10%SDS-PAGE 進行電泳分離。電泳后將蛋白轉印于PVDF 膜,100 V 轉膜1 h,用3%牛血清白蛋白(BSA)室溫封閉2 h 后,加入特異性一抗,4℃孵育過夜,TBST 漂洗3 次,每次10 min,加入HRP 標記的二抗室溫孵育2 h。TBST清洗后化學發光底物檢測試劑盒進行檢測。將目的蛋白與內參的灰度比值作為蛋白的相對表達豐度。
1.2.4 細胞凋亡實驗 取對數生長期A2780 細胞接種于12 孔板,每孔為1×105/mL,分為Control 組、AG490 組、Cisplatin 組、AG490+Cisplatin 組、rhIL-6組、rhIL-6+AG490 組、rhIL-6+Cisplatin 組和rhIL-6+AG490+Cisplatin 組,共8 組,同時設立空白管組和單染管組。細胞貼壁后AG490 組、AG490+Cisplatin 組、rhIL-6+AG490 組和rhIL-6+AG490+Cis platin 組加入AG490(50 μmol)預處理1 h 之后按實驗方案各組加入rhIL-6(50 ng/mL)或順鉑(10 μmol),5%CO2、37℃培養箱中培養48 h。培養結束后用0.25%胰酶(不含EDTA)消化收集細胞,加入0.1%BSA-PBS 洗滌2 次。棄去上清,每管加入500 μL 試劑盒中的Binding Buffer 重懸細胞,混勻。加入5 μL的AnnexinV 溶液混勻,再加入5 μL 的碘化丙啶(PI)溶液,混勻。避光室溫孵育10 min。細胞通過400 目篩網過濾成單細胞懸液備檢。用流式細胞儀進行檢測,用空白管和單染管調節電壓和熒光補償,Annexin V-FITC 綠色熒光通過FITC 通道(FL1)檢測,PI 紅色熒光通過PI 通道(FL2)檢測,利用FlowJo 軟件進行數據分析。
1.2.5 小鼠體內實驗 將36 只8 周齡雌性裸鼠隨機分為Control 組、rhIL-6 組、Cisplatin 組、AG490組、rhIL-6+Cisplatin 組和rhIL-6+AG490+Cisplatin組,共6 組,每組6 只。腹腔注射A2780 細胞(5×106/200 μL/鼠),按照不同分組腹腔注射rhIL-6、AG490和順鉑,其中第1 天開始注射rhIL-6[1 μg/(kg·周)],第1 天開始注射AG490[5 mg/(kg·d)],從第4 天開始注射順鉑 [4 mg/(kg·周)],Control 組腹腔注射PBS。4 周后頸椎脫臼處死小鼠,打開腹腔,觀察瘤結節生成情況并拍照,計數瘤結節、稱重。
1.3 統計學處理 采用SPSS13.0 軟件進行統計學分析,其中符合正態分布數據以±s 表示。多組間相互比較采用單因素方差分析,兩組間比較采用t 檢驗。以P<0.05 為差異有統計學意義。
2.1 各組OvCa 細胞增殖情況 由圖1 可知,與Control 組相比,rhIL-6 組細胞增殖增加[(1.330±0.024)vs.(1.264±0.012),t=4.148,P<0.05],Cisplatin組細胞增殖降低[(1.199±0.005)vs.(1.264±0.012),t=8.050,P<0.01],AG490 組細胞增殖無變化[(1.283±0.024)vs.(1.264±0.012),t=1.201,P>0.05]。與Cisplatin 組相比,rhIL-6+Cisplatin 組細胞增殖增加[(1.314±0.022)vs.(1.199±0.005),t=8.439,P <0.01]。與rhIL-6+Cisplatin 組相比,rhIL-6+Cisplatin+AG490 組細胞增殖降低[(1.242±0.011)vs.(1.314±0.022),t=4.860,P<0.01]。

圖1 各組細胞增殖的情況Fig 1 Result of cell proliferation in each group
2.2 各組p-STAT3 蛋白表達情況 由圖2B 可見,與Control 組相比,rhIL-6 組p-STAT3 蛋白表達明顯增加[(2.27±0.46)vs.(1.0±0),t=6.55,P<0.01]。與rhIL-6 組相比,rhIL-6+AG490 組的p-STAT3 蛋白明顯降低[(0.99±0.12)vs.(2.27±0.46),t=6.34,P<0.01]。
2.3 各組細胞凋亡情況 由圖3B 可知,與Control組相比,Cisplatin 組細胞凋亡顯著增加 [(12.70±0.36)vs.(2.75±0.38),t=32.56,P<0.001]。rhIL-6 組與Control 組 對 比 沒 有 統 計 學 差 別[(3.49±0.40)vs.(2.75±0.38),t=2.272,P>0.05]。與Cisplatin 組相比,rhIL-6+Cisplatin 組細胞凋亡顯著降低[(7.75±0.23)vs.(12.70±0.36),t=20.03,P<0.001]。與rhIL-6+Cisplatin 組相比,rhIL-6+Cisplatin+AG490 組細胞凋亡顯著增加[(13.36±0.37)vs.(7.75±0.23),t=22.16,P<0.001]。與AG490+Cisplatin 組相比,rhIL-6+Cisplatin+AG490 組細胞凋亡差異無統計學意義[(12.88±0.87)vs.(13.36±0.37),t=0.8836,P>0.05]。2.4 各組瘤結節重量和大小情況 由圖4B 可知,與Cisplatin 組相比,rhIL-6+Cisplatin 組小鼠的瘤結節數量(圖4A)和重量(圖4B)明顯增加[(0.206±0.072)vs.(0.107±0.022),t=2.783,P<0.05]。與rhIL-6+Cisplatin 組相比,rhIL-6+Cisplatin+AG490 組瘤結節數量和重量均顯著降低[(0.065±0.035)vs.(0.206±0.072),t=3.306,P<0.05]。
OvCa 是困擾女性的三大生殖系統惡性腫瘤之一,且死亡率高居不下。順鉑是OvCa 主要的化療藥物,然而化療耐藥使腫瘤預后較差,耐藥性是阻礙成功抗癌治療的最棘手障礙之一,因此迫切需要解決耐藥的問題。本實驗通過體內體外兩方面的實驗,證實IL-6 可以通過STAT3 信號通路促進OvCa對順鉑耐藥。
IL-6 是一種多功能促炎性因子,在與其膜結合受體(IL-6R)結合后激活經典的信號通路。IL-6 過表達和多種腫瘤相關,包括結直腸癌、OvCa、乳腺癌等[11],與OvCa 的發生、發展、預后等密切相關。臨床資料顯示,OvCa 患者高表達IL-6,IL-6 水平升高與不良預后和化療敏感性差相關,IL-6 可以誘導OvCa 細胞多藥耐藥基因的表達,內源性或外源性IL-6 誘導A2780 細胞中多藥耐藥蛋白表達升高,且與IL-6 呈正相關[12],靶向IL-6 治療已經被認為是一種可行的治療手段。IL-6 調控下游多種信號通路,在腫瘤細胞對化療耐藥起著重要作用[11],其中研究最多的是IL-6/JAK2/STAT3 軸[13]。
IL-6/JAK2/STAT3 軸在許多類型的癌癥中均異常激活,而這種過度激活通常與不良的臨床預后相關。在腫瘤微環境中,IL-6/JAK2/STAT3 信號轉導可驅動腫瘤細胞的增殖、耐藥、侵襲性和遷移,同時強烈抑制抗腫瘤免疫反應[14]。人OvCa 細胞系A2780不分泌IL-6 且對順鉑敏感[8],因此本研究選擇A2780 作為觀察IL-6 影響OvCa 發生順鉑耐藥機制的研究對象。CCK8 實驗結果顯示單獨rhIL-6 可促進A2780 的增殖,順鉑聯用rhIL-6 可以降低前者對A2780 增殖的抑制作用,而AG490 可以抑制rhIL-6 的作用,說明外源性IL-6 通過影響STAT3 通路促進A2780 增殖。細胞凋亡實驗結果顯示,與Cisplatin 組相比,聯用rhIL-6 能促進A2780 對順鉑耐藥,而這個作用被AG490 所抑制,同時與AG490+Cisplatin 組相比,增加rhIL-6 處理并無顯著性差異,說明rhIL-6 通過STAT3 通路誘導OvCa 對順鉑耐藥。此外Western 印跡結果表明,IL-6 可以顯著促進p-STAT3 的表達,說明外源性IL-6 可以通過誘導STAT3 磷酸化來促進OvCa 抗凋亡和對順鉑耐藥。和體外實驗結果相同,小鼠體內實驗結果顯示,與Cisplatin 組相比,rhIL-6+Cisplatin 組小鼠瘤結節數量和重量明顯增加,而再聯用AG490會抑制rhIL-6 的作用,說明rhIL-6 通過STAT3 信號通路體內誘導OvCa 對順鉑耐藥。IL-6/JAK2/STAT3 通路促進OvCa 對順鉑耐藥的具體機制較為復雜,涉及多個方面,IL-6/JAK2/STAT3 軸在干細胞干性、誘導耐藥蛋白、缺氧、上皮間質表型轉化、促進抗凋亡蛋白表達和DNA 修復相關基因表達等多方面促進腫瘤耐藥[15-20]。
綜上所述,本研究從體內、體外兩個方面證明外源性IL-6 可以通過STAT3 通路誘導OvCa 對順鉑耐藥,為臨床OvCa 患者治療中炎癥誘導耐藥的處理提供新的思路和策略。