余莉萍 余淑菁 李旭成 崔金濤 陸佳鑫
(1.湖北省武漢市中醫醫院,湖北 武漢 430000;2.湖北省武漢市優撫醫院,湖北 武漢 430000)
膿毒癥是由于感染導致機體反應異常引發的全身炎性反應綜合征,發病過程迅速,于2017年被世界衛生組織列為全球衛生重點防治疾病[1]。膿毒癥能引發機體內多種器官的感染,如肺損傷、腦膜炎、膽管炎等,其中肺損傷是常見的并發癥,且膿毒癥急性肺損傷具有較高發病率、病死率,盡管膿毒癥急性肺損傷的相關研究已有所進展,但是病死率仍高達30%左右[2-3]。脂多糖(LPS)是細菌外膜的關鍵成分,也是誘發多種疾病的致病因素,常用來構建膿毒癥急性肺損傷模型[4]。柴胡皂苷B2是從中藥柴胡內提取的活性成分,現代藥理實驗證明具有抗炎、抗氧化、保護肝臟等多種藥理活性[5]。有研究結果顯示,柴胡皂苷B2能夠減輕LPS/氨基半乳糖誘導急性肝損傷小鼠的氧化應激和炎性損傷,改善肝臟的能量代謝[6],但是對LPS誘導的膿毒癥急性肺損傷的研究尚不明確。本研究采用LPS誘導建立膿毒癥急性肺損傷模型,觀察柴胡皂苷B2對LPS誘導的膿毒癥急性肺損傷氧化應激損傷和炎性反應的影響。
1.1 實驗動物 實驗清潔級SD大鼠50只,雌性各半,體質量(200±20)g,8周齡,購買中國食品藥品檢定研究院,許可證號為:SCXK(京)2012-0068。大鼠飼養于無病原菌的環境內,溫度為22~25℃,濕度為50%~65%。
1.2 試劑與儀器 LPS購于美國Sigma公司;柴胡皂苷B2購于成都曼思特生物公司,純度>99%;TUNEL試劑盒、BCA試劑盒、顯色劑購于碧云天生物;B淋巴細胞瘤(Bcl-2)抗體、Bcl-2同源二聚體X蛋白(Bax)抗體、p53抗體、β-actin抗體、辣根過氧化物酶標記的二抗購于美國Abcam公司;超氧化物歧化酶(SOD)試劑盒、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)試劑盒、丙二醛(MDA)試劑盒購于南京建成生物研究所;腫瘤壞死因子-α(TNF-α)試劑盒、白細胞介素-1β(IL-1β)試劑盒、白細胞介素-6(IL-6)試劑盒購于Diaclone公司。
1.3 造模與分組 將大鼠隨機分為5組,每組10只,分別為空白對照組、模型組和柴胡皂苷B2低、中、高劑量組。除空白對照組外,其余大鼠腹腔注射10 mg/kg的LPS建立急性肺損傷模型。
1.4 給藥方法 造模6 h后,柴胡皂苷B2低劑量組、中劑量組、高劑量組分別腹腔注射柴胡皂苷B2藥液5、10、20 mg/kg;空白對照組和模型組注射2 mL的生理鹽水。連續給藥7 d后,采用戊巴比妥鈉麻醉處死大鼠。
1.5 標本采集與檢測 1)肺組織濕干比。處死大鼠后,取出右葉肺組織,使用濾紙擦拭干凈水分,然后稱重。隨后置于70℃烘箱內24 h稱取質量,用于測定肺組織濕干比。肺組織濕干比=(濕重-干重)/干重×100%。2)TUNEL染色檢測肺組織細胞凋亡。收集大鼠部分左葉肺組織,經過石蠟包埋制成切片后,加入乙醇、二甲苯清洗,室溫下加入20 μg/mL蛋白酶K反應15 min,PBS清洗,加入內源過氧化氫酶滅活5 min,利用PBS清洗,加入Tunel試劑,加入DAB顯色液孵育10 min,利用乙醇、二甲苯脫水,用中性樹膠封片后,在光學顯微鏡下觀察Tunel染色情況,然后計算細胞凋亡率。3)Western blotting檢測肺組織Bcl-2、Bax、p53蛋白表達。收集各組部分左葉大鼠肺組織,加入蛋白裂解液進行裂解,然后提取各組的總蛋白,利用BCA試劑盒檢測定量蛋白濃度。然后將蛋白煮沸5 min,取35 μg上樣蛋白,用8%的分離膠和4%的濃縮膠處理蛋白樣品,蛋白樣品轉膜,封閉在5%脫脂奶粉內60 min,加入Bcl-2、Bax、p53、β-actin抗體,4 ℃孵育過夜,次日加入辣根過氧化物酶標記的二抗,室溫孵育60 min,加入顯色劑用于顯色、顯影。使用Quantity One軟件分析蛋白表達量。4)ELISA檢測血清SOD活性、GSH-Px活性、MDA、TNF-α、IL-1β、IL-6含量。處死大鼠后,收集肺組織周圍血清5 mL,4℃下2 000 r/min離心10 min,離心半徑為3 cm,并收集各組的上清液,然后按照ELISA試劑盒說明書步驟,檢測各組SOD活性、GSH-Px活性、MDA、TNF-α、IL-1β、IL-6含量。
1.6 統計學處理 應用SPSS21.0統計軟件。計量資料以(±s)表示,多組間比較用單因素方差分析,組內間比較用LSD法比較。P<0.05為差異具有統計學意義。
2.1 各組大鼠肺組織濕干比及細胞凋亡率的比較 見表1。與空白對照組相比,模型組內肺組織濕干比及細胞凋亡率顯著增高(P<0.05);與模型組相比,柴胡皂苷B2低劑量組、中劑量組、高劑量組內肺組織濕干比及細胞凋亡率顯著降低(P<0.05);與柴胡皂苷B2低劑量組相比,柴胡皂苷B2中劑量組、高劑量組內肺組織濕干比及細胞凋亡率顯著降低(P<0.05);與柴胡皂苷B2中劑量組相比,柴胡皂苷B2高劑量組內肺組織濕干比及細胞凋亡率顯著降低(P<0.05)。
表1 各組大鼠肺組織濕干比及細胞凋亡率比較(%,±s)

表1 各組大鼠肺組織濕干比及細胞凋亡率比較(%,±s)
注:與空白對照組比較,?P<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與柴胡皂苷B2低劑量組比較,△P<0.05;與柴胡皂苷B2中劑量組比較,&P<0.05。下同。
組 別n 肺組織濕干比 細胞凋亡率空白對照組模型組柴胡皂苷B2低劑量組柴胡皂苷B2中劑量組柴胡皂苷B2高劑量組10 10 10 10 10 12.30±1.93 31.18±3.14*27.10±2.47#23.39±1.88#△16.71±1.49#△&7.21±0.67 32.46±3.43*26.78±2.72#20.33±2.18#△12.21±1.42#△&
2.2 各組大鼠肺組織細胞凋亡相關蛋白表達的比較 見圖1,表2。與空白對照組相比,模型組內Bax、p53蛋白表達顯著增加(P<0.05),Bcl-2蛋白表達顯著降低(P<0.05)。與模型組相比,柴胡皂苷B2低劑量組、中劑量組、高劑量組內Bax、p53蛋白表達顯著降低(P<0.05),Bcl-2蛋白表達顯著增加(P<0.05)。與柴胡皂苷B2低劑量組相比,柴胡皂苷B2中劑量組、高劑量組內Bax、p53蛋白表達顯著降低(P<0.05),Bcl-2蛋白表達顯著增加(P<0.05)。與柴胡皂苷B2中劑量組相比,柴胡皂苷B2高劑量組內Bax、p53蛋白表達顯著降低(P<0.05),Bcl-2蛋白表達顯著增加(P<0.05)。

圖1 各組肺細胞凋亡相關蛋白表達
表2 各組大鼠肺組織凋亡相關蛋白表達比較(±s)

表2 各組大鼠肺組織凋亡相關蛋白表達比較(±s)
組別空白對照組模型組柴胡皂苷B2低劑量組柴胡皂苷B2中劑量組柴胡皂苷B2高劑量組n 10 10 10 10 10 Bcl-2 0.67±0.06 0.31±0.03*0.39±0.04#0.46±0.04#△0.55±0.04#△&Bax 0.26±0.02 0.73±0.05*0.59±0.04#0.46±0.04#△0.37±0.03#△&p53 0.27±0.03 0.68±0.06*0.56±0.05#0.47±0.04#△0.35±0.03#△&
2.3 各組大鼠血清內氧化應激水平的比較 見表3。與空白對照組相比,模型組內SOD活性、GSH-Px活性顯著降低(P<0.05),MDA含量顯著增加(P<0.05)。與模型組相比,柴胡皂苷B2低劑量組、中劑量組、高劑量組內SOD活性、GSH-Px活性顯著增加(P<0.05),MDA含量顯著降低(P<0.05)。與柴胡皂苷B2低劑量組相比,柴胡皂苷B2中劑量組、高劑量組內SOD活性、GSH-Px活性顯著增加(P<0.05),MDA含量顯著降低(P<0.05)。與柴胡皂苷B2中劑量組相比,柴胡皂苷B2高劑量組內SOD活性、GSH-Px活性顯著增加(P<0.05),MDA含量顯著降低(P<0.05)。
表3 各組大鼠SOD活性、GSH-Px活性、MDA含量比較(±s)

表3 各組大鼠SOD活性、GSH-Px活性、MDA含量比較(±s)
組別空白對照組模型組柴胡皂苷B2低劑量組柴胡皂苷B2中劑量組柴胡皂苷B2高劑量組n 10 10 10 10 10 SOD(U/L)131.23±12.09 67.29±5.42*75.78±6.78#92.32±8.52#△117.91±10.38#△&GSH-Px(U/L)87.31±6.60 35.43±3.19*43.52±4.06#55.43±3.81#△72.84±6.47#△&MDA(μmol/L)2.40±0.44 8.44±0.89*6.92±0.53#5.29±0.41#△3.67±0.22#△&
2.4 各組大鼠血清內炎性因子水平的比較 見表4。與空白對照組相比,模型組內TNF-α、IL-1β、IL-6顯著增加(P<0.05);與模型組相比,低劑量組、中劑量組、高劑量組內TNF-α、IL-1β、IL-6顯著降低(P<0.05);與柴胡皂苷B2低劑量組相比,柴胡皂苷B2中劑量組、高劑量組內TNF-α、IL-1β、IL-6顯著降低(P<0.05);與柴胡皂苷B2中劑量組相比,柴胡皂苷B2高劑量組內TNF-α、IL-1β、IL-6顯著降低(P<0.05)。
表4 各組大鼠TNF-α、IL-1β、IL-6水平比較(pg/mL,±s)

表4 各組大鼠TNF-α、IL-1β、IL-6水平比較(pg/mL,±s)
組別空白對照組模型組柴胡皂苷B2低劑量組柴胡皂苷B2中劑量組柴胡皂苷B2高劑量組n 10 10 10 10 10 TNF-α 85.38±7.21 215.89±18.40*177.45±15.32#134.22±11.48#△95.43±8.17#△&IL-1β 65.83±4.52 149.33±14.17*115.30±10.38#95.31±8.72#△74.81±6.78#△&IL-6 52.67±4.50 125.16±11.44*105.27±9.20#88.47±7.22#△63.78±5.70#△&
膿毒癥急性肺損傷是多種因素導致的肺臟功能異常,使肺表面的活性物質降低,出現水腫、肺膨脹不全等表現[7]。目前,關于急性肺損傷的診斷方法和治療方法相對較少,本研究通過采用LPS誘導建立膿毒癥急性肺損傷動物模型,觀察膿毒癥急性肺損傷的發病機制。已有研究報道,LPS誘導建立急性肺損傷模型后,能改變肺組織濕干比,炎性因子TNF-α、IL-1β和IL-6等過度釋放,增加活性氧產生和降低抗氧化物酶活性,導致肺組織產生損傷[8-9]。SOD、GSH-Px屬于抗氧化物酶,具清除機體內氧自由基的能力,可以反映氧化應激損傷程度[10]。MDA是一種脂質過氧化物,其含量的高低能夠反映氧化損傷的程度[11]。本研究結果顯示,模型組內大鼠肺組織濕干比增加,細胞凋亡率上升,凋亡相關蛋白Bax、p53蛋白表達上調,Bcl-2蛋白表達下調,SOD活性、GSH-Px活性降低,MDA含量明顯增加,炎性因子TNF-α、IL-1β、IL-6分泌明顯增加,這說明本研究用LPS誘導建立的膿毒癥急性肺損傷大鼠模型構建成功。
柴胡化學成分較為復雜,有皂苷類、揮發油類、多糖類和黃酮類等,其中皂苷類化合物據今已被報道的有100多種[12]。皂苷A和D是最早從柴胡內提出分離的,皂苷B2是齊墩果二烯型衍生物,現代藥理實驗證明,柴胡皂苷具有多種藥理活性,如抗炎、抗氧化、抗凋亡、保肝、調節免疫等[13-14]。有研究結果顯示,柴胡皂苷對大鼠肺組織具有保護用,能降低肺組織細胞凋亡數目,抑制IL-6、TNF-α和iNOS含量,減輕大鼠肺組織炎性浸潤和纖維化程度[15]。高子涵等[16]研究結果發現,柴胡皂苷B2能夠降低過氧化氫誘導的肝癌細胞凋亡,降低Bax蛋白表達,增加Bcl-2蛋白表達,提高肝癌細胞的抗凋亡能力。呂行直等[17]研究結果顯示,柴胡皂苷B2可以降低四氯化碳誘導小鼠急性肝損傷血清內MDA含量,增加SOD活性,提高機體的抗氧化能力。以上說明柴胡皂苷具有良好的抗氧化、抗炎和抗凋亡能力,但是關于柴胡皂苷B2對急性肺損傷的研究尚不清楚。本研究發現,給予注射不同劑量的柴胡皂苷B2后,能降低LPS誘導的膿毒癥急性肺損傷大鼠肺組織濕干比,減少細胞凋亡率,下調Bax、p53蛋白表達,上調Bcl-2蛋白表達,促進SOD活性、GSH-Px活性,降低MDA含量,抑制炎性因子TNF-α、IL-1β、IL-6分泌,說明柴胡皂苷B2能減輕LPS誘導的膿毒癥急性肺損傷。
綜上所述,柴胡皂苷B2對膿毒癥急性肺損傷具有保護作用,能減輕其氧化應激和炎性反應,減少細胞凋亡,但具體研究機制需要進一步探究。