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4種雜糧對大鼠腸道菌群組成及短鏈脂肪酸的影響

2022-07-29 02:40:34韓陽陽趙建新綦文濤
食品科學 2022年13期
關鍵詞:內容

韓 飛,韓陽陽,,趙建新,王 勇,綦文濤

(1.國家糧食和物資儲備局科學研究院,北京 100037;2.江南大學食品學院,江蘇 無錫 214122)

《中國居民膳食指南》(2016版)要求成年人每天攝入谷薯類食物250~400 g,其中全谷物和雜豆類50~150 g。谷物尤其是全谷物在膳食中的重要性得到越來越廣泛的關注。盡管目前已知全谷物富含碳水化合物、蛋白質、膳食纖維、多種礦物質和維生素以及植物化合物等多種營養素,但是全谷物不是這些營養素的簡單混合,而是作為一個有機整體發揮著健康作用。同時,越來越多的研究表明,膳食是影響腸道菌群結構和功能最為重要且較為迅速的因素,膳食導致的腸道菌群變化在代謝綜合征發生發展中起著重要作用。微生態學和營養學研究也發現,腸道菌群的結構失調是許多慢性疾病(如肥胖、糖尿病、高血壓、冠心病、心腦血管疾病和結腸癌等代謝性疾病)的直接誘因。膳食中全谷物對腸道菌群的積極影響也有研究報道,大多集中于全谷物中的膳食纖維和酚類物質對腸道益生菌增殖的促進作用或對腸道病原菌增殖的抑制作用、增加短鏈脂肪酸(short-chain fatty acids,SCFAs)的含量以及SCFAs作為信號分子參與宿主代謝通路從而調節宿主生理狀態等。但是,將熟制全谷物作為整體(替換大鼠50%日糧),集中探討其對機體不同腸段微生物和SCFAs影響的研究鮮見報道。因此,本實驗以經熟制后的燕麥、甜蕎、糜米和谷米4種我國膳食中最常見的雜糧作為整體替換大鼠50%日糧,研究雜糧對大鼠回腸、盲腸和結腸微生物和SCFAs的影響,為雜糧在膳食中的廣泛應用及開發相關雜糧食品提供參考。

1 材料與方法

1.1 動物、材料與試劑

SPF級7 周齡健康雄性SD大鼠50 只,體質量(302.10±9.58)g,購自北京維通利華實驗動物技術有限公司,生產許可證號:SCXK(京)2021-0006。

裸燕麥(‘壩莜一號’)、甜蕎(‘西農9976’)、糜米(‘榆糜2號’)和谷米(‘峰紅谷’)均由西北農林科技大學提供。將雜糧樣品用2 倍質量的純凈水浸泡2 h,用電飯煲雜糧檔燜熟,冷卻后用冷凍干燥機干燥,低溫粉粹機粉碎,過60 目篩,-20 ℃儲藏備用。

乙酸、丙酸、丁酸、異丁酸等標準品、耐熱-淀粉酶、淀粉葡萄糖苷酶、基因組DNA提取試劑盒 西格瑪奧德里奇(上海)貿易有限公司;鹽酸、氫氧化鈉、濃硫酸、偏磷酸、石油醚、丙酮、乙酸、乙酸乙酯國藥集團化學試劑有限公司;抗性淀粉試劑盒 愛爾蘭Megazyme公司。以上試劑均為分析純。

1.2 儀器與設備

PHSJ-5型精密pH計 上海精密科學儀器公司;3K 15型高速冷凍離心機 德國西格瑪公司;MB-WFS4029型電飯煲 美的公司;FD-2型真空冷凍干燥機北京博醫康實驗儀器有限公司; 2300型凱式定氮儀、Fibertec 8000纖維分析儀 瑞典FOSS公司;SpectraMax Plus 384酶標儀 美國Molecular Devices公司;電泳儀北京六一生物科技有限公司;ABI 9700型熒光定量儀上海賽默科技生物發展有限公司;7890B型氣相色譜儀美國安捷倫公司。

1.3 方法

1.3.1 動物實驗設計與飼養

預飼一周后將大鼠按照隨機分組方法分成5 組,每組10 只,即對照組(basal diet group,BDG)(飼喂基礎日糧)、燕麥組(oat group,OG)(飼喂50%燕麥+50%基礎日糧)、甜蕎組(buckwheat group,BG)(飼喂50%甜蕎+50%基礎日糧)、糜米組(proso millet group,PG)(飼喂50%糜米+50%基礎日糧)和谷米組(millet group,MG)(飼喂50%谷米+50%基礎日糧),配方及能量見表1。實驗周期為6 周,大鼠同室分籠飼養,每籠1 只,飼養于SPF級動物房,自由飲水采食,晝夜交替12 h,溫度控制在(23±2)℃,相對濕度60%。6 周后處死大鼠,取樣。

表1 不同谷物日糧的配方及能量Table 1 Formulation and energy levels of different diets

1.3.2 樣品采集和檢測

1.3.2.1 常規指標的測定

水分質量分數的測定:GB 5009.3—2016《食品安全國家標準 食品中水分的測定》;灰分質量分數的測定:GB 5009.4—2016《食品安全國家標準 食品中灰分的測定》;蛋白質質量分數的測定:GB 5009.5—2010《食品安全國家標準 食品中蛋白質的測定》;脂肪質量分數的測定:GB 5009.6—2016《食品安全國家標準 食品中脂肪的測定》;粗纖維質量分數的測定:GB/T 5009.10—2003《植物類食品中粗纖維的測定》。抗性淀粉質量分數采用Megazyme抗性淀粉測定試劑盒測定;非淀粉多糖質量分數的測定參考龔敏和黃慶華等的方法進行測定。

1.3.2.2 大鼠體質量、采食量、食物利用率和糞便含水率的測定

實驗期間,每周測定大鼠體質量和采食量。稱體質量前,大鼠禁食12 h。計算實驗期間日糧消耗量和大鼠體質量增量,根據公式(1)計算每組大鼠的食物利用率。實驗期結束收集大鼠糞便,記錄大鼠糞便的濕質量,并將糞便置于105 ℃烘箱烘干至恒質量,記錄大鼠糞便的干質量,根據公式(2)計算每組大鼠糞便含水率。

1.3.2.3 大鼠盲腸和結腸質量測定

解剖大鼠,取出整個消化道,除去腸系膜,分別測定含有內容物時盲腸、結腸的質量,然后稱量去除內容物后的盲腸和結腸的質量。

1.3.2.4 腸道內容物pH值的測定

將盲腸和結腸內容物從-80 ℃冰箱取出,置于冰水浴中解凍后,稱取相應的樣品1 g左右,以1∶20(/)的比例加入蒸餾水,充分攪拌均勻后靜置0.5 h,然后取上清液用精密pH計進行測定。

1.3.2.5 腸道內容物中SCFAs的測定

氣相色譜法測定盲腸和結腸內容物中的SCFAs,參考Zhao Guohua等方法。0.5 g冷凍盲腸和結腸內容物用1 mL生理鹽水稀釋,將內容物渦旋混合并以10 000 r/min離心5 min,收集上清液,以體積比9∶1加入25 g/100 mL的偏磷酸溶液。將混合物在4 ℃下培養過夜,然后以10 000 r/min離心5 min,取上清液測定。氣相色譜法定量分析SCFAs,采用DB-FFAP色譜毛細管柱(30 m×0.25 mm,0.50 μm),具體設定為初始溫度80 ℃、0.5 min,以5 ℃/min的速率加熱至130 ℃,保持2 min,并以20 ℃/min的速率加熱至240 ℃,保持1 min。氫火焰離子化檢測器在270 ℃下檢測信號。以乙酸、丙酸、丁酸和異丁酸為標準品,內標物為2-乙基丁酸。

根據標準品色譜圖中SCFAs濃度計算峰面積,以獲得每個SCFA的校準圖。對校準圖中的數據點進行回歸分析,得出目標SCFA的斜率、截距和決定系數。用等體積腸道內容物上清液稀釋系列標準溶液制備的系列溶液測試腸道內容物樣品的線性響應。用相對響應系數(relative response factor,RRF)對峰面積進行定量。RRF計算如公式(3)所示。

式中:為1.0 mmol/L SCFAs的峰面積;為內標物的峰面積。

根據RRF、內標物濃度/(mmol/L)、SCFAs峰面積()和內標物峰面積()計算SCFAs濃度/(mmol/L),如公式(4)所示。

1.3.2.6 大鼠腸道菌群的測定

大鼠回腸、盲腸和結腸內容物采集后立即置于液氮中,放在-80 ℃下保存待測。

細菌基因組的提取,聚合酶鏈式反應(polymerase chain reaction,PCR)擴增、定量和測序:用十六烷基三甲基溴化銨/十二烷基硫酸鈉法從回腸、盲腸和結腸內容物中提取總基因組DNA。使用正向引物5’-CCTACGGGAGGAGAG-3’和反向引物5’-ATTACCGGCTGCTGG-3’從微生物基因組DNA中PCR擴增16S rRNA的V3區。將含有熒光染料的加載緩沖液與PCR產物混合,并在2%瓊脂糖凝膠中進行電泳檢測。選擇主譜帶在400~450 bp之間的樣品進行進一步實驗。對不同樣品PCR之后的產物進行等質量濃度比混合,并用Gene JET Gel Extraction Kit試劑盒純化。利用NEB Next. Ultra試劑盒建立序列文庫,用Qubit2.0熒光定量儀和Bioanalyzer 2100生物分析儀對RNA完整性及質量進行評估。文庫在Illumina MiSeq平臺上進行測序,250 bp/300 bp配對末端讀數。

生物信息學分析:使用FLASH合并來自原始DNA片段的成對末端讀取,當一些讀取與來自相同DNA片段的相反末端的讀取重疊時,FLASH被設計為合并成對末端讀取;序列分析采用QIIME1.8.0軟件包(http://qiime.Org);采用Metastats軟件證實兩組個體分類豐度的差異;線性判別分析(linear discriminant analysis effect size,LEfSe)用于不同組內生物標志物的定量分析;基于Bray-Curtis相異距離矩陣進行了方差分析確定兩組之間微生物群落的差異。

1.4 數據統計與分析

數據以平均值±標準差表示,采用SPSS 19.0統計軟件進行單因素方差分析和Tukey事后測試差異分析,<0.05表示有顯著性差異。

2 結果與分析

2.1 實驗日糧常規營養指標的分析

谷物雜糧作為一個整體50%替代基礎日糧后形成的4 組實驗日糧的常規營養指標見表2。4 組實驗日糧的各項營養指標均存在一定的差異,因此,在分析其對大鼠腸道菌群及各項生理指標的影響時,應將雜糧視作一個整體,而非僅關注某些成分。

表2 不同谷物日糧的營養成分Table 2 Nutritional components of different diets

2.2 攝入不同谷物日糧對大鼠體質量增加、采食量和食物利用率的影響

由表3可知,飼喂6 周后,4個谷物雜糧組大鼠的飼料采食量和體質量增量都顯著高于BDG(<0.05),但食物利用率間沒有顯著性差異,說明4個谷物雜糧組都能促進大鼠采食。

表3 飼喂6 周后不同谷物日糧對大鼠體增質量、采食量及食物利用率的影響Table 3 Effects of experimental diets on body mass gain, feed intake,and feed utilization efficiency of rats after six weeks of feeding

2.3 攝入不同谷物日糧對大鼠糞便含水率的影響

飼喂6 周后,不同實驗組大鼠糞便的濕質量、干質量和含水率見表4。糞便含水量低可能引起便秘。實驗結果表明,4個雜糧組大鼠糞便的含水率均高于BDG,且OG和BG大鼠糞便的濕質量、干質量都顯著高于BDG(<0.05)。在4種實驗日糧中,OG和BG糞便含水率(24.64%和25.76%)是BDG(12.06%)大鼠糞便含水率的2 倍多。

表4 不同谷物日糧對大鼠糞便濕質量、干質量及糞便含水率的影響Table 4 Effects of experimental diets on wet and dry mass of feces and water content in feces

2.4 攝入不同谷物日糧對大鼠盲腸、結腸質量和內容物pH值的影響

從表5可見,含有內容物的盲腸質量幾乎是含有內容物結腸質量的2 倍,說明大鼠有非常發達的盲腸;去除內容物后,OG和BG大鼠盲腸壁質量顯著高于其他組(<0.05),而結腸壁沒有觀察到類似的結果。結腸內容物的pH值均低于盲腸內容物的pH值,說明大鼠雖然有發達的盲腸,但是微生物發酵產生SCFAs的腸段主要在結腸而不是盲腸。此外,飼喂4種谷物大鼠盲腸和結腸內容物的pH值均顯著低于BDG(<0.05),且BG無論是盲腸還是結腸,其內容物的pH值都最低,分別是6.21和6.01,說明甜蕎比起其他幾種谷物雜糧更有利于微生物發酵。

表5 不同谷物日糧對大鼠盲腸和結腸質量及盲腸和結腸內容物pH值的影響Table 5 Effects of experimental diets on cecum and colon mass and pH of cecum and colonic contents of rats

2.5 攝入不同谷物日糧對大鼠盲腸和結腸內容物中SCFAs的影響

從表6可見,結腸內容物的SCFAs含量遠高于盲腸內容物的SCFAs,這與表5中結腸的pH值低于盲腸的pH值結果是一致的,說明結腸是微生物發酵的主要腸段。4種谷物雜糧組大鼠盲腸內容物總SCFAs濃度均顯著高于BDG(<0.05),且BG和MG的SCFAs總量最高(37.89 μmol/g和36.95 μmol/g)幾乎都是BDG(14.99 μmol/g)的2.5 倍,同時,BG的SCFAs中以乙酸和丁酸為主,而其余3種谷物雜糧和BDG的SCFAs中以乙酸和丙酸為主。同時,4種谷物雜糧組大鼠結腸內容物總SCFAs濃度均高于BDG,且BG和MG顯著高于BDG(<0.05),BG的SCFAs總量最高(153.46 μmol/g),是BDG(46.15 μmol/g)的3.3 倍。

表6 不同谷物日糧對大鼠盲腸和結腸SCFAs含量的影響Table 6 Effects of experimental diets on SCFA levels in cecal and colonic contents of rats

在總SCFAs中,乙酸的含量最高,幾乎占總SCFAs 75%以上,有的組高達96%,乙酸是細菌向宿主提供能量的主要來源。其次是丙酸和丁酸,異丁酸含量最低。

2.6 攝入不同谷物日糧對大鼠回腸、盲腸和結腸內容物中菌群在門和屬水平的影響

使用16S rRNA基因測序研究了4種谷類雜糧對回腸、盲腸和結腸消化道的影響。圖1顯示了在門水平上各組腸道微生物群組成的詳細信息。回腸中的優勢菌門包括厚壁菌門(Firmicutes)、放線菌門(Actinobacteria)、擬桿菌門(Bacteroidetes)和變形菌門(Proteobacteria),在所有實驗組中均無明顯差異(圖1A)。厚壁菌門占所有實驗組細菌總序列的89%以上。在盲腸和結腸內容物中,優勢菌門為厚壁菌門(Firmicutes)、疣微菌門(Verrucomicrobia)、擬桿菌門(Bacteroidetes)和軟壁菌門(Tenericutes)(圖1B、C)。厚壁菌門也是盲腸和結腸中最豐富的門,其占細菌總序列的70%以上。盲腸內容物中,BG的厚壁菌門相對豐度最高(83%),MG最低(69%);疣狀菌門的相對豐度BDG最高(18%),PG最低(5%);對于擬桿菌門,MG的相對豐度最高(12%),OG和BG較低(3%和4%)。結腸內容物中,除MG(73%)外,所有實驗組的厚壁菌門相對豐度均大于82%;疣微菌門的相對豐度,BDG最高(12%),BG最低(4%);對于擬桿菌門,MG的相對豐度最高(15%),OG最低(5%)。

圖1 不同谷物日糧對大鼠回腸(A)、盲腸(B)和結腸(C)內容物中門水平微生物群相對豐度的影響(n=5)Fig. 1 Effects of experimental diets on relative abundance of microbiota at the phylum level in ileal (A), cecal (B), and colonic (C)contents of rats (n = 5)

大鼠飼喂6 周后,其回腸、盲腸和結腸內容物中厚壁菌門與擬桿菌門的比值見表7,回腸內容物厚壁菌門與擬桿菌門的比值高于盲腸和結腸。回腸內容物中,MG厚壁菌門與擬桿菌門的比值最高,為304.5,PG最低,為75.6,且除MG外,PG、OG和BG回腸內容物厚壁菌門與擬桿菌門的比率分別比BDG低66.2%、47.7%和39.2%;盲腸內容物中,4種谷物雜糧組厚壁菌門和擬桿菌門的比值均低于BDG;結腸內容物中,OG厚壁菌門和擬桿菌門的比值最高,為20.8,BG最低,為11.4。同時發現,BG大鼠回腸、盲腸和結腸內容物厚壁菌門和擬桿菌門的比值分別比對照組低39.2%、38.8%和24.5%。

表7 不同谷物日糧對大鼠回腸、盲腸、結腸內容物厚壁菌門和擬桿菌門比值的影響Table 7 Effects of experimental diets on the ratio of Firmicutes to Bacteroidetes in ileum, cecal, and colonic contents of rats

人體實驗研究發現,肥胖個體中厚壁菌門和擬桿菌門比例較高,在能量限制的條件下,體質量減輕與厚壁菌門和擬桿菌門比例降低有關。有研究顯示在肥胖模型中,厚壁菌門和擬桿菌門的比例可能與腸道微生物的代謝潛力相關,可能增加微生物從膳食中獲取能量的能力,擬桿菌門豐度增加或厚壁菌門豐度降低都有利于控制肥胖。本實驗結果顯示,在回腸和盲腸內容物中PG厚壁菌門和擬桿菌門的比例最低,結腸內容物中BG厚壁菌門和擬桿菌門的比值最低,可見全谷物可以調節腸道菌群的組成,腸道菌群的組成與體質量的控制有重要聯系。說明甜蕎和糜米有通過調節腸道微生物菌群的結構從而改善腸道健康的潛力。

大鼠飼喂6 周后,其回腸、盲腸和結腸內容物菌群在屬水平上的相對豐度比較如圖2所示。回腸中豐度最高的3個菌屬依次是、和(圖2A)。相對豐度以OG最高(40%),BDG最低(10%)。相對豐度以PG最高(12%);盲腸中相對豐度較高的菌屬依次是、、和(圖2B)。其中,相對豐度最高的是BDG(14%),最低的是PG(5%)。對于,PG相對豐度最高(13%),OG和BG相對豐度較低(均小于5%)。對于,OG相對豐度最高(4%);結腸中相對豐度較高的菌屬依次是、、和(圖2C)。在PG中相對豐度最高(37%),其次為BG(20%),BDG相對豐度最低(5%)。在BG中相對豐度最低(5%)。在BG中相對豐度較高(4%)。

圖2 不同谷物日糧對大鼠回腸(A)、盲腸(B)和結腸(C)內容物中屬水平微生物群相對豐度的影響(n=5)Fig. 2 Effects of experimental diets on relative abundance of microbiota at the genus level in ileal (A), cecal (B), and colonic (C)contents of rats (n = 5)

3 討 論

當前,我國居民膳食中主食攝入的問題主要集中在以下3個方面:一是主食攝入過精過細,全谷物攝入不足;二是主食攝入結構單一,主要攝入大米和小麥粉,雜糧雜豆和薯類的攝入不足;三是口糧攝入總量不足。結構單一且精細加工的谷物過量攝入會增加各種慢性疾病的患病風險,如肥胖、2型糖尿病、腸癌等。近年的大量研究表明,全谷物和雜糧的攝入對營養相關慢性疾病的預防有積極的作用,但是大部分研究集中于全谷物或雜糧的某一成分的研究。本研究將谷物雜糧作為一個整體替代50%的日糧,探究其對大鼠消化道菌群和SCFAs含量的影響。

從實驗結果可以看出,4種雜糧組大鼠糞便的含水率均高于BDG,且BG和OG大鼠糞便含水率均是BDG的2 倍。便秘是當今社會人群面對的頑疾之一,增加糞便的含水量可有效減輕便秘的癥狀。由表2可知,4種谷物雜糧富含不消化碳水化合物,如抗性淀粉、非淀粉多糖、阿拉伯木聚糖等,這些碳水化合物可逃避小腸消化,到達盲腸和結腸發酵,調節腸道微生物結構和組成。同時,SCFAs能降低消化道pH值。從表6可見,4種雜糧組大鼠盲腸和結腸的SCFAs都顯著高于BDG(<0.05),其中BG的SCFAs最高,是BDG的3.3 倍;同時,4種雜糧組大鼠盲腸和結腸的pH值也均顯著低于BDG(<0.05),同樣的BG的pH值在盲腸和結腸中也都是最低的,這與王勇等的研究結果略有不同,其研究中燕麥組SCFAs總量高于甜蕎組,可能的原因之一是,本實驗采用的是甜蕎,而王勇等研究原料采用的是苦蕎,且本實驗甜蕎的替代比例是50%,而王勇等的實驗苦蕎的替代比例是20%。一項對谷物蛋白質評價的研究也發現,甜蕎的蛋白品質評分高于燕麥,且三者的評分順序是甜蕎>苦蕎>燕麥。同時,以往的研究表明,SCFAs可調節宿主的生物反應,包括腸道完整性、脂質代謝和免疫系統。丁酸鹽是結腸上皮細胞的主要能量來源,可降低腸道黏膜通透性,促進腸道屏障恢復,預防或降低結腸癌的發病率,丙酸對代謝健康有積極作用,如降低血清膽固醇含量。本研究表明,BG盲腸和結腸消化道中的SCFAs總含量最高,可見甜蕎調節腸道健康作用非常顯著。

研究表明,當抗性淀粉和非淀粉多糖存在于谷物基質中時,通常與人類腸道微生物群產生的高產量SCFAs有關。在結腸中形成的SCFAs數量和類型可受微生物群組成、膳食纖維利用率及其理化性質等的影響。乳酸桿菌()主要產生乳酸,糞桿菌()主要產生丁酸和乙酸,阿克曼氏菌()主要產生丙酸。雖然抗性淀粉主要作用于盲腸,但在結腸中存在抗性淀粉的情況下,微生物群對非淀粉多糖的利用率較低。由表2可知,BG的抗性淀粉含量最高,這可能是BG盲腸和結腸SCFAs最高的原因之一;OG腸道中的高SCFAs含量可能與豐富的膳食纖維、非淀粉多糖和阿拉伯木聚糖有關。

腸道微生物通過發酵產生SCFAs,進而調節機體的能量代謝、免疫和腸道發育等。由于沒有任何一屬細菌能水解所有的營養底物,且沒有任何一屬細菌發酵碳水化合物都能產生乙酸、丙酸和丁酸這3種SCFAs,腸道的SCFAs類型和分布反映了不同微生物類型的代謝協作。肥胖人群中厚壁菌門與擬桿菌門的比例相對高于健康人群。抗性淀粉增加了人體中放線桿菌和擬桿菌的數量,減少了厚壁菌的數量。本研究發現,大鼠回腸、盲腸和結腸內容物中均以厚壁菌門為主,盲腸內容物中,4種雜糧組厚壁菌門和擬桿菌門的比值均低于BDG,PG回腸和盲腸消化道中厚壁菌門與擬桿菌門的比值最低,BG結腸消化道壁厚壁菌門與擬桿菌門的比值最低,且BG大鼠回腸、盲腸和結腸內容物厚壁菌門和擬桿菌門的比值分別比BDG低39.2%、38.8%和24.5%,說明4種雜糧均有利于大鼠盲腸和結腸中擬桿菌門的增殖,且甜蕎和糜米的這一作用表現突出。在本研究中,在攝食甜蕎和糜米飲食的大鼠中觀察到厚壁菌門和擬桿菌門比值下降,這一發現與Parnell等關于益生元的研究結果一致。甜蕎組飲食中含有最高的抗性淀粉,這可能部分導致結腸消化道中的厚壁菌門和擬桿菌門比值最低的結果。

4 結 論

本實驗研究了分別以甜蕎、燕麥、糜米、谷米替代50%大鼠基礎日糧,飼喂6 周后,大鼠腸道菌群變化和SCFAs的影響。主要實驗結論如下:1)4種谷物雜糧都可以增加大鼠糞便的含水率,BG和OG大鼠糞便含水率是BDG的2 倍,說明甜蕎和燕麥有改善便秘的的潛力;2)4種谷物雜糧都顯著增加了大鼠盲腸和結腸SCFAs的含量(<0.05),同時相應地降低了盲腸和結腸的pH值,且BG的SCFAs含量最高,是BDG的3.3 倍,說明甜蕎有明顯調節腸道健康的潛力;3)大鼠回腸、盲腸和結腸內容物中以厚壁菌門為主。PG回腸和盲腸消化道中厚壁菌門與擬桿菌門的比值最低,BG結腸消化道壁厚壁菌門與擬桿菌門的比值最低,說明甜蕎和糜米有通過調節腸道菌群開發成為減肥食品的潛力。綜上,谷物雜糧對大鼠腸道內容物的pH值、SCFAs含量和菌群組成都有重要的調節作用,且甜蕎調節作用尤其顯著,在日常膳食中應保證適量谷物雜糧的攝入。

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