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臨床銅綠假單胞菌對頭孢他啶異質(zhì)性耐藥研究

2022-08-18 02:40:58李金玲李文茹張建設黃旭斌廖康謝小保
關鍵詞:耐藥生長實驗

李金玲,李文茹,張建設,黃旭斌,廖康,謝小保

(1.浙江海洋大學國家海洋設施養(yǎng)殖工程技術研究中心,浙江舟山 316022;2.廣東省科學院微生物研究所,華南應用微生物國家重點實驗室,廣東省菌種保藏與應用重點實驗室,廣東廣州 510070;3.中山大學附屬第一醫(yī)院呼吸與危重癥醫(yī)學科,廣東廣州 510080;4.中山大學附屬第一醫(yī)院醫(yī)學檢驗科,廣東廣州 510080)

銅綠假單胞菌(Pseudomonas aeruginosa,PA)是一種引起院內(nèi)感染的主要條件致病菌,能適應惡劣的生存環(huán)境,且分布廣泛,常存在于水體、土壤以及空氣等自然環(huán)境中以及人類的皮膚、消化道和呼吸道等位置。該菌可引起肺炎、燒傷感染、血流感染等多種感染,致死率高。PA 具有龐大的基因庫,極易產(chǎn)生耐藥,對多種抗生素具有較強耐藥性[1-4]。據(jù)中國細菌耐藥監(jiān)測網(wǎng)(CHINET)報道2005-2020 年銅綠假單胞菌的臨床分離率均位于革蘭氏陰性菌的前五[5-11],一直是治療院內(nèi)感染亟待解決的問題,給臨床抗感染治療帶來了極大困擾,已成為臨床關注焦點[12-13]。近年來,關于PA 異質(zhì)性耐藥(heteroresistance,HR)的報道也越來越多,使其臨床治療越發(fā)棘手。

異質(zhì)性耐藥是細菌中的不同細胞亞群對抗生素的敏感性不同,是細菌由敏感菌株發(fā)展成耐藥菌株的中間階段[14-15]。異質(zhì)性耐藥現(xiàn)象最早見報于1947年[16],但1970 年這種現(xiàn)象才被命名為“異質(zhì)性耐藥”[17]。NICOLOFF,et al[18]研究者認為當某種細菌在臨床檢驗中主要群體為藥敏,但存在最低抑菌濃度(minimum inhibitory concentration,MIC)與最高不抑菌濃度(maximum non inhibitory concentration,MNIC)比值大于8,且發(fā)生頻率大于1×10-7的耐藥亞群,則可以確認為是異質(zhì)性耐藥。1997 年,有研究者發(fā)現(xiàn)對甲氧西林異質(zhì)性耐藥的金黃色葡萄球菌[19],后續(xù)有研究人員相繼在肺炎克雷伯菌、肺炎鏈球菌、結核分枝桿菌等多種常見致病菌中發(fā)現(xiàn)了異質(zhì)性耐藥現(xiàn)象[20-24]。但對PA 異質(zhì)性耐藥的研究較少,大多局限于PA 對碳青霉烯類抗生素的異質(zhì)性耐藥,目前PA 對頭孢菌素類抗生素異質(zhì)性耐藥的相關報道較少,其異質(zhì)性耐藥機制也尚不明確。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 實驗菌株

實驗菌株為中山大學附屬第一醫(yī)院檢驗科臨床分離的50 株PA,質(zhì)控菌株為銅綠假單胞菌ATCC27853,由廣東省科學院微生物分析檢測中心保存。

1.1.2 試劑及培養(yǎng)基

Kirby-Bauer(K-B)藥敏紙片:CAZ(30 μg),購自英國Oxoid 公司;頭孢他啶粉劑,購自北京索萊寶科技有限公司;水解酪蛋白胨(Mueller-Hinton,MH)瓊脂培養(yǎng)基、Luria-Bertani(LB)肉湯培養(yǎng)基,購自廣東環(huán)凱微生物科技有限公司;陽離子調(diào)節(jié)Mueller-Hinton(MH)肉湯(CAMHB)培養(yǎng)基,購自北京酷來搏科技有限公司;哥倫比亞血平板,購自廣州市左克生物科技發(fā)展有限公司。

1.2 方法

1.2.1 菌株保存

菌株保存采用甘油保存法,采集的菌株于平板上劃線培養(yǎng),37 ℃恒溫培養(yǎng)過夜,挑取單菌落接種于LB 肉湯培養(yǎng)基中,37 ℃、180 r·min-1條件下振蕩培養(yǎng)至對數(shù)生長期,將高溫消毒后的50%甘油與處于對數(shù)生長期的菌液按1:1 的比例混勻,置于-80 ℃冰箱保存。

1.2.2 最小抑菌濃度測定

公共圖書館服務對象廣泛,涉及各個年齡段,一般采用調(diào)查問卷的方式來采集用戶評價。調(diào)查問卷包含3各部分,第一部分是用戶基本信息,如年齡、性別、家庭住址等;第二部分是調(diào)查問卷的核心內(nèi)容,即LibQUAL+TM的各個指標;最后一部分是開放性問題,如用戶對圖書館服務的建議與意見。調(diào)查問卷的核心是用戶對LibQUAL+TM各指標的滿意情況,每一指標可分若干種滿意程度,并用不同分值計量。通過調(diào)查問卷的回收統(tǒng)計,對公共圖書館各服務層面進行客觀總結,以便提高圖書館服務質(zhì)量。

CAZ 對PA 的MIC 測定按照標準微量肉湯稀釋法進行[25]。在12×8 孔板中每孔各加入100 μL CAMHB培養(yǎng)基,設置CAZ 濃度梯度為0.5、1、2、4、8、16、32、64、128、256 μg·mL-1,以指數(shù)生長期的PA 細胞配制菌懸液,實驗菌株終濃度為5×105CFU·mL-1。本實驗陽性對照孔內(nèi)無CAZ,陰性對照孔內(nèi)無菌液,實驗均設置3 個平行。將加好樣的孔板在37 ℃靜置培養(yǎng)16~20 h 后讀取結果。本實驗所用質(zhì)控菌株為銅綠假單胞菌ATCC27853。根據(jù)CLSI 2020版[25]進行結果判讀,裸眼觀察到的孔內(nèi)無明顯細菌生長的最低CAZ 濃度判定為MIC。陽性對照孔內(nèi)細菌正常生長,陰性對照孔內(nèi)沒有細菌生長,參考質(zhì)控菌株的抗生素MIC 結果在指南要求范圍內(nèi)。

1.2.3 K-B 藥敏實驗

K-B 藥敏紙片擴散法的實驗操作步驟參考臨床和實驗室標準協(xié)會(Clinical and Laboratory Standard Institute,CLSI)2020版[25]。挑取血平板上過夜生長的單菌落配制菌懸液,使用生理鹽水將菌懸液濃度調(diào)整為(1~2)×108CFU·mL-1。以上述菌液濃度接種,使用無菌棉簽浸入菌懸液后均勻的涂布于MH 瓊脂平板上,將CAZ 藥敏紙片平置于涂布菌液的平板中央。37 ℃條件下恒溫培養(yǎng)16~18 h,測定CAZ 抑菌圈的直徑。根據(jù)CLSI 2020版[25]進行結果判讀。通過裸眼觀察抑菌圈內(nèi)是否有菌落出現(xiàn),抑菌圈內(nèi)出現(xiàn)菌落生長則初步判斷為異質(zhì)性耐藥。本實驗所用質(zhì)控菌株為銅綠假單胞菌ATCC27853。

1.2.4 菌落譜型分析(population analysis profile,PAP)

菌落譜型分析法作為一種菌落計數(shù)的相對定量方法,也被認為是異質(zhì)性耐藥確證的金標準[26]。使用MHA 培養(yǎng)基配制CAZ 濃度梯度為0、0.25、0.5、1、2、4、8、16、32、64、128、256 μg·mL-1的MH 平板,以指數(shù)生長期的PA 細胞配制菌懸液,菌液濃度為107~102CFU·mL-1。以上述菌液濃度取100 μL 均勻涂布于MH平板上,實驗均設置3 個平行。37 ℃靜置培養(yǎng)48 h 后進行菌落計數(shù),使用Microsoft Excel 處理數(shù)據(jù)并作圖,若菌株MIC 與MNIC 比值大于8,且耐藥亞群發(fā)生頻率大于1×10-7,則可以確認為是HR 菌株。對照菌株為非異質(zhì)性耐藥的銅綠假單胞菌ATCC27853 和臨床分離的耐藥菌株PAS96。

1.2.5 適應成本測定

生長實驗主要是檢測實驗菌株的生長曲線特征[27]。本實驗主要是通過對比親本菌株和異質(zhì)性耐藥亞群兩者在相同培養(yǎng)條件下的生長速率是否有顯著差異以判斷異質(zhì)性耐藥菌株是否產(chǎn)生適應成本。

在12×8 孔板中每孔各加入100 μL 的LB 肉湯培養(yǎng)基,用處于指數(shù)生長期的PA 菌株配制菌懸液,實驗菌株終濃度為1×106CFU·mL-1。實驗設置3 個平行。孔板置于全波長酶標儀37 ℃振蕩培養(yǎng)24 h,每小時測定1 次OD600值,直至24 h。根據(jù)數(shù)據(jù)繪制時間生長曲線圖,對測量結果進行生物統(tǒng)計學分析,判斷生長速度是否有顯著差異。

1.2.6 耐藥穩(wěn)定性測試

耐藥穩(wěn)定性實驗是為了證實CAZ 異質(zhì)性耐藥亞群在無抗生素壓力下是否能夠穩(wěn)定遺傳。挑取PAP實驗中最高CAZ 濃度平板上的耐藥亞群,制備甘油管于-20 ℃冰箱保存。按照1%的接種量在無抗生素的MH 平板上進行傳代培養(yǎng),37 ℃恒溫培養(yǎng)箱孵育過夜,連續(xù)傳代50 代并且在超低溫冰箱(-80 ℃)保存菌株。使用CAMHB 培養(yǎng)基對原始菌株和耐藥亞群以及傳代菌株進行MIC 值的測定。

2 結果

2.1 MIC 藥敏結果

根據(jù)CLSI(2020)發(fā)布的M100-S30 文件中所制定的PA 的CAZ 耐藥標準[25],采用肉湯稀釋法根據(jù)MIC值判斷藥敏結果為:MIC 值≤8 μg·mL-1為敏感(susceptible,S),MIC 值≥32 μg·mL-1為耐藥(resistant,R),MIC 值是16 μg·mL-1時為中介(intermediate,I)。本次研究對50 株臨床分離的PA 對CAZ 的MIC 范圍為1~256 μg·mL-1,其中,37 株菌株的MIC 值在1~8 μg·mL-1范圍內(nèi),判定為CAZ 敏感;1 株菌株MIC 值為16 μg·mL-1,判定為中介;12 株菌株MIC 值在32~256 μg·mL-1范圍內(nèi),判定為CAZ 耐藥(表1)。其中菌株PAS56、PAS73、PAS95 的MIC 為4 μg·mL-1,菌株PAS81 的MIC 為8 μg·mL-1。

表1 50 株銅綠假單胞菌對頭孢他啶的藥敏結果Tab.1 Experimental results of 50 P.aeruginosa strains susceptibility to CAZ

2.2 異質(zhì)性耐藥菌株的初篩

根據(jù)CLSI(2020)中所制定的PA 的CAZ 耐藥標準[25],采用紙片擴散法并根據(jù)抑菌圈直徑大小判斷其藥敏結果為:抑菌圈直徑≥18 mm 為敏感,抑菌圈直徑≤14 mm 為耐藥,抑菌圈直徑介于15 mm 與17 mm 之間的為中介耐藥,標準菌株ATCC27853 的抑菌圈直徑質(zhì)控范圍為22~29 mm。

本次研究對50 株臨床分離的PA 進行了K-B 藥敏實驗,結果如表1 所示。50 株PA 對CAZ 的抑菌圈直徑的范圍為8.29~31.55 mm,其中,37 株菌株的抑菌圈直徑范圍為22~32 mm,判定為CAZ 敏感,占比74%;1 株菌株的抑菌圈直徑則為15 mm,判定為中介,占比2%;12 株菌株其抑菌圈直徑范圍為8~11 mm,判定為CAZ 耐藥,占比24%。

PA 對CAZ 的K-B 藥敏表型如圖1 所示,通過觀察抑菌圈內(nèi)是否出現(xiàn)大小不等的菌落生長,對實驗菌株進行異質(zhì)性耐藥情況的初步篩選。質(zhì)控菌株銅綠假單胞菌ATCC27853 的K-B 藥敏結果,抑菌圈的直徑為28 mm 且圈內(nèi)無菌落生長,根據(jù)CLSI 標準該菌株為CAZ 敏感(圖1A);臨床分離株PAS64 的抑菌圈直徑為25 mm,根據(jù)CLSI 標準該菌株為CAZ 敏感(圖1B);臨床分離株PAS96 的抑菌圈直徑為9 mm,根據(jù)CLSI 標準該菌株為CAZ 耐藥(圖1C);臨床分離株PAS81 的抑菌圈直徑為26 mm,CAZ 紙片抑菌環(huán)的邊緣出現(xiàn)了一些菌落(透射光下裸眼可見),這些菌落是可能的異質(zhì)性耐藥菌落(圖1D),初步判定為CAZ 異質(zhì)性耐藥。初步篩選到異質(zhì)性耐藥菌株20 株,占總實驗菌株的40%。

圖1 銅綠假單胞菌對頭孢他啶的K-B 藥敏表型Fig.1 Phenotypic susceptibility of P.aeruginosa to CAZ by K-B test

2.3 異質(zhì)性耐藥菌株的確認

本研究對初步篩選出的20 株異質(zhì)性耐藥菌株進行菌落譜型分析驗證,實驗結果表明,有4 株為異質(zhì)性耐藥菌株(圖2)。敏感菌株ATCC27853 在CAZ 濃度達到8 μg·mL-1無菌落生長;耐藥菌株PAS96 在藥物濃度為128 μg·mL-1時,仍保持穩(wěn)定生長;而這4 株(PAS56、PAS73、PAS81、PAS95)異質(zhì)性耐藥菌株的曲線則是緩慢下降,隨著頭孢他啶濃度的增加,菌株可以在平板上生長的耐藥亞群數(shù)量也逐漸減少,且MIC 與MNIC 比值大于8,異質(zhì)性耐藥亞群的發(fā)生頻率也均大于等于1×10-7(表2)。其中圖2A 中銅綠假單胞菌ATCC27853 的MIC/MNIC 值為4,判定為CAZ 敏感菌株;臨床分離株PAS96 的MIC 值大于32 μg·mL-1,且在藥物濃度為128 μg·mL-1時,仍保持穩(wěn)定生長,判定為CAZ 耐藥菌株;臨床分離株PAS56 的MIC/MNIC 值為32,判定為CAZ 異質(zhì)性耐藥菌株;臨床分離株PAS81 的MIC/MNIC 值為16,判定為CAZ 異質(zhì)性耐藥菌株;圖2B 中臨床分離株PAS73 的MIC/MNIC 值為64,判定為CAZ 異質(zhì)性耐藥菌株;臨床分離株PAS95 的MIC/MNIC 值為32,判定為CAZ 異質(zhì)性耐藥菌株。這4 株(PAS56、PAS73、PAS81、PAS95)異質(zhì)性耐藥菌株的MIC 值均表現(xiàn)為CAZ 敏感,而PAP 實驗結果顯示一部分亞群細胞對CAZ 耐藥。當耐藥發(fā)生頻率大于10-7時,將抗生素濃度最高的平板上生長的菌落數(shù)除以對照(無抗生素)平板上的菌落數(shù),計算得到本次這4 株菌株的異質(zhì)性耐藥亞群的發(fā)生頻率范圍為1×10-7~1.2×10-5。

圖2 6 株銅綠假單胞菌對頭孢他啶的菌落譜型分析曲線圖Fig.2 Population analysis profiling curves of 6 P.aeruginosa strains to CAZ

表2 4 株銅綠假單胞菌頭孢他啶異質(zhì)性耐藥菌株的菌落譜型分析結果Tab.2 Population analysis profiles results of 4 P.aeruginosa heteroresistance to CAZ

2.4 異質(zhì)性耐藥菌株的適應成本

生長曲線的實驗結果如圖3 所示,圖3A 中異質(zhì)性耐藥菌株(親本菌株)PAS56 與其兩株PAP 實驗中最高CAZ 濃度平板上的耐藥亞群在對數(shù)生長期(4~12 h)的生長速率均沒有表現(xiàn)出統(tǒng)計學差異(PAS56-1(P=0.079 4)、PAS56-3(P=0.084 3)),但同樣從PAP 實驗中最高濃度平板上分離的耐藥亞群(記作PAS56-2)則比親本菌株在對數(shù)生長期(4~8 h)的生長速率明顯慢許多,有極顯著差異(P=0.007 7),而在9~12 h 時則無統(tǒng)計學差異(P=0.059 6),從整體來看,生長速率并無統(tǒng)計學差異;圖3B 中PAS95 與3 株PAP 實驗中最高CAZ 濃度平板上的耐藥亞群在對數(shù)生長期的生長速率(4~12 h) 均表現(xiàn)為有極顯著差異(P<0.01) (PAS95-1(P=1.4E-7)、PAS95-2(P=3.2E-7)、PAS95-3(P=5.8E-7)),3 株耐藥亞群在對數(shù)生長期的生長速率與親本菌株相比明顯快許多,并且親本菌株的細菌總量相對較少。本結果表明異質(zhì)性耐藥菌株的耐藥亞群的生長速率與親本菌株相比沒有顯著差異。

圖3 銅綠假單胞菌頭孢他啶異質(zhì)性耐藥菌株的生長曲線Fig.3 Growth curve of P.aeruginos heteroresistance to CAZ

2.5 異質(zhì)性耐藥菌株的耐藥穩(wěn)定性

將PAP 實驗中最高CAZ 濃度平板上生長的的耐藥亞群接種在無抗生素的平板上連續(xù)傳代50 代后,每5 代進行1 次MIC 值的測定,結果如表3 所示。PAS56 親本菌株經(jīng)微量肉湯稀釋實驗測定MIC 為4 μg·mL-1,其耐藥亞群(PAS56-1、PAS56-2、PAS56-3)的初始MIC 為32 μg·mL-1,耐藥亞群的MIC 值是親本菌株的8 倍。經(jīng)過在不含抗生素的平板傳代50 代后,PAS56-1 和PAS56-2 亞群的MIC 值一直保持在32 μg·mL-1,未發(fā)生CAZ 敏感性回復。耐藥亞群PAS56-3 的MIC 值在10-15 代左右由32 μg·mL-1回復為16 μg·mL-1,并且在后續(xù)傳代過程中MIC 值保持在16 μg·mL-1,是親本菌株的4 倍,回復為CAZ 中介。PAS95 親本菌株的MIC 經(jīng)實驗測定為4 μg·mL-1,其耐藥亞群(PAS95-1、PAS95-2、PAS95-3)的初始MIC 均為32 μg·mL-1,耐藥亞群MIC 是親本菌株的8 倍,在經(jīng)過50 代傳代后,PAS95-1、PAS95-2、PAS95-3 的MIC 均保持在32 μg·mL-1,CAZ 敏感性未發(fā)生回復。結果表明,除PAS56-3 亞群分離株CAZ 敏感性傳代后回復為中介,其他亞群分離株PAS56-1、PAS56-2、PAS95-1、PAS95-2、PAS95-3 傳代后耐藥亞群的CAZ 敏感性均未發(fā)生回復,耐藥表型穩(wěn)定。

表3 銅綠假單胞菌頭孢他啶異質(zhì)性耐藥菌株耐藥穩(wěn)定性實驗Tab.3 Resistance stability test of P.aeruginos heteroresistance to CAZ

3 討論

本研究基于藥敏實驗(K-B test)并結合微量肉湯稀釋法對臨床分離的PA 進行異質(zhì)性耐藥菌株的初篩,50 株PA 中有37 株對CAZ 敏感,占比74%(37/50);1 株對CAZ 中介,占比2%(1/50);12 株對CAZ 耐藥,占比24%(12/50)。其中,37 株CAZ 敏感菌株有20 株初步判定為異質(zhì)性耐藥,占比40%(20/50)。吳婷婷[28]研究發(fā)現(xiàn)PA 對頭孢他啶(CAZ)藥敏紙片的耐藥率為23.5%,與本研究結果一致。本研究通過對初篩結果中的異質(zhì)性耐藥菌株進行菌落譜型分析驗證,顯示PA 對CAZ 的異質(zhì)性耐藥率為8%(4/50)。本研究PA 對CAZ 異質(zhì)性耐藥率低于許磊[29]研究中PA 對多粘菌素的異質(zhì)性耐藥率35%(7/20),略低于吳婷婷[28]研究中PA 對亞胺培南的異質(zhì)性耐藥率11.6%(36/310),且明顯低于何建春[30]研究中PA 對亞胺培南和美羅培南的異質(zhì)性耐藥率(54.3%,72.5%),以及JIA Xiaojiong,et al[31]研究中PA 對頭孢吡肟的異質(zhì)性耐藥率(57.3%)。本課題組選用這50 株PA 對哌拉西林異質(zhì)性耐藥進行研究,研究發(fā)現(xiàn)PA 對哌拉西林的異質(zhì)性耐藥率為26%(13/50),表明同一PA 可能對不同抗生素產(chǎn)生異質(zhì)性耐藥率不同[32]。篩選到的異質(zhì)性耐藥菌株的比例差異與多種因素有關,如實驗菌株的來源、抗生素的種類以及檢測異質(zhì)性耐藥菌株的實驗方法的不同等。本研究發(fā)現(xiàn)通過K-B 法初篩的異質(zhì)性耐藥率與PAP 實驗后確證的異質(zhì)性耐藥率相差較大,因此不能將K-B 法的結果作為臨床使用的標準,需結合K-B 和PAP 實驗結果進行綜合判定。前人也發(fā)現(xiàn)使用K-B 法以及Etest 法這2 種方法檢測異質(zhì)性耐藥菌株仍存在較高的假陰性率,導致異質(zhì)性耐藥菌株的漏檢[33]。K-B 法以及E-test 法兩種方法判斷是否為異質(zhì)性耐藥菌的依據(jù)都是通過裸眼觀察藥敏紙片所形成的抑菌圈內(nèi)是否有菌落生長。此類方法的優(yōu)點是對于臨床上來說操作簡單快捷,結果判定一目了然;但其缺點是國際上目前對異質(zhì)性耐藥菌株的判斷沒有標準,只能通過主觀方面進行判斷,抑菌圈內(nèi)的耐藥亞群的發(fā)生頻率不能準確計算,而且由于菌株對抗生素敏感性可能存在的差異性而導致異質(zhì)性耐藥菌株的漏檢。目前菌群譜型分析法(PAP)被認為是判斷異質(zhì)性耐藥細菌的金標準[19],但是該方法的缺點也十分明顯,實驗成本高、耗時長且操作繁瑣,只適合在實驗室中實施,不適用于臨床上的快速檢測。

4 株異質(zhì)性耐藥菌株經(jīng)過PAP 實驗驗證后發(fā)現(xiàn),其耐藥亞群少數(shù)能在大于不抑制絕大多數(shù)群體生長的最高藥物濃度8 倍以上的抗生素平板上生長,極少數(shù)亞群甚至發(fā)展為高水平的耐藥。本次4 株異質(zhì)性耐藥菌株耐藥亞群的發(fā)生頻率為1×10-7~1.2×10-5。POURNARAS,et al[34]研究中指出PA 對亞胺培南和美羅培南這兩種碳青霉烯類抗生素異質(zhì)性耐藥耐藥亞群的發(fā)生頻率為1.2×10-7~6.9×10-5。吳婷婷[35]研究中臨床分離的PA 對亞胺培南異質(zhì)性耐藥的發(fā)生頻率介于4.5×10-9與8.9×10-7之間。許磊[29]研究發(fā)現(xiàn)PA 對多粘菌素的異質(zhì)性耐藥的發(fā)生頻率范圍為3.5×10-7~2×10-6。與本研究結果對比發(fā)現(xiàn),PA 對CAZ 異質(zhì)性耐藥的發(fā)生頻率相對較高。課題組研究發(fā)現(xiàn)PA 對哌拉西林異質(zhì)性耐藥亞群的發(fā)生頻率為7.3×10-7~1.2×10-5[32],與本研究結果相近。有研究指出異質(zhì)性耐藥細菌中表現(xiàn)為高耐藥性的亞群在無抗生素作用下培養(yǎng)5~10 代后,有少數(shù)亞群仍保持高耐藥性,絕大多數(shù)亞群回復為敏感且保持異質(zhì)性耐藥特性[36]。而本研究對挑取的高水平耐藥亞群進行無抗生素傳代50 代培養(yǎng),結果發(fā)現(xiàn)其耐藥表型可以保持穩(wěn)定遺傳,即高水平耐藥亞群保持高水平耐藥,低水平耐藥亞群保持低水平耐藥。本實驗結果表明PA 對CAZ 異質(zhì)性耐藥的菌株極易發(fā)展為完全耐藥菌株。PAS95 親本菌株與其3 個耐藥亞群在生長速率上表現(xiàn)出極顯著差異,耐藥亞群生長速率均大于親本菌株,且其耐藥穩(wěn)定性實驗表明耐藥亞群保持高水平耐藥。高耐藥性亞群的穩(wěn)定遺傳將對臨床上抗生素的抗菌效果產(chǎn)生影響,其機制仍待進一步研究。

本研究中所有的樣本均來自臨床分離,數(shù)量有限,研究可能具有一定的局限性。從以上分析可以看出,PA 對CAZ 的異質(zhì)性耐藥率相對較低,但其耐藥亞群的高耐藥性可以穩(wěn)定遺傳,極易發(fā)展成完全耐藥菌株,應當引起重視。異質(zhì)性耐藥菌株在臨床上不易檢出,常規(guī)藥敏實驗中常表現(xiàn)為“假敏感”,導致用藥失效,進而發(fā)展為耐藥菌株。由于目前臨床上還沒有實用的方法來準確檢測出異質(zhì)性耐藥菌株,因此開發(fā)新的檢測方法是當務之急。本研究在PA 對CAZ 異質(zhì)性耐藥表型等方面做了一定的探究,在后續(xù)工作中將對其異質(zhì)性耐藥機制進行深入研究,為相關臨床感染治療提供一些有效的依據(jù)。

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太空探索(2016年5期)2016-07-12 15:17:55
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