樣本狀態對血漿EB病毒DNA檢測結果準確性的影響

王筱雨， 色米熱·艾尼瓦爾， 李士軍

（1.大連醫科大學附屬第一醫院檢驗科，遼寧 大連 116011；2.新疆維吾爾自治區莎車縣人民醫院檢驗科，新疆 喀什 844700）

EB病毒（Epstein-Barr virus，EBV）屬于皰疹病毒科嗜淋巴細胞病毒，有1個雙鏈線性DNA基因組[1]。EBV是一種普遍存在的病毒，主要通過血液和唾液傳播，會在宿主體內引發潛伏性感染，還可能引起EBV感染相關疾病，如鼻咽癌、淋巴瘤、傳染性單核細胞增多癥、EBV相關的移植后淋巴組織增生性疾病。目前，臨床實驗室檢測EBV的方法主要有EBV特異性抗體檢測和EBV DNA定量檢測。血清學抗體檢測僅可反映病毒感染情況，而實時熒光定量聚合酶鏈反應（polymerase chain reaction，PCR）可準確反映機體內EBV的復制情況，也是EBV DNA定量檢測的標準方法。多種臨床樣本均可以用于檢測EBV DNA載量，如血漿或血清、外周血單個核細胞、全血、鼻咽拭子和組織樣本等[2]。血漿EBV DNA水平可用于疾病診斷和感染活動期的評估，也可用于預后和治療評估，對EBV感染相關疾病的診斷和治療具有重要意義[3]。血漿EBV DNA檢測會受到外來因素或樣本本身等因素的影響，干擾是實驗室誤差的重要來源，直接影響檢測結果的準確性。溶血和脂血是最常見的內源性干擾因素，可通過多種機制影響EBV DNA檢測結果[4-5]。在大多數情況下，溶血樣本是由采血過程不順、采血后劇烈搖晃、運輸過程保存不當、樣本轉運至實驗室后未及時離心等因素導致的。脂血樣本最常見的分析前因素是餐后或靜脈給藥后立即采血、患者的飲食和身體狀況，以及一些臨床治療使患者體內存在較多的脂肪乳劑。本研究旨在探討溶血與脂血是否會對PCR法檢測EBV DNA的準確性產生影響，并分析其可能的原因，以規范實驗室樣本接收和保存規則，指導實驗室人員正確處理臨床樣本，避免分析前因素造成檢測結果的不準確。

1 材料和方法

1.1 研究對象

收集2020年6月—2021年3月大連醫科大學附屬第一醫院無肉眼可見溶血和脂血的EBV DNA陽性樣本40例，隨機分為2組，每組20例（覆蓋低、中、高水平）。

1.2 方法

（1）模擬溶血樣本制備。將EBV DNA陽性樣本（20例）與滅菌蒸餾水按照1∶1比例混合作為對照樣本。取1例EBV DNA陰性乙二胺四乙酸二鉀抗凝全血樣本，離心后棄去血漿，用0.9%氯化鈉溶液洗滌紅細胞數次，然后加入與棄去的血漿等量的滅菌蒸餾水溶解紅細胞，使血紅蛋白濃度為121.00 g/L；保留一部分原水平血紅蛋白溶液，將其與滅菌蒸餾水分別按1∶1和1∶3的比例稀釋成另外2個濃度梯度的血紅蛋白溶液；將20例EBV DNA陽性樣本與血紅蛋白溶液進行1∶1混合，制備成EBV DNA含量相同而血紅蛋白終濃度分別為60.50、30.25和15.13 g/L的模擬溶血樣本。（2）模擬脂血樣本制備。將EBV DNA陽性樣本（20例）與0.9%氯化鈉溶液按照1∶1的比例混合作為對照樣本。收集不同患者的濃度為12.72 mmol/L且EBV DNA陰性的三酰甘油混合血漿，保留一部分原水平血漿，將其與0.9%氯化鈉溶液分別按2∶1和1∶2的比例稀釋成另外2個濃度的三酰甘油混合血漿；將20例EBV DNA陽性樣本與三酰甘油混合血漿按照1∶1的比例混合，制備成EBV-DNA含量相同而三酰甘油終濃度分別為6.36、4.24、2.12 mmol/L的模擬脂血樣本。采用SLAN-96P實時熒光定量RCR儀（上海宏石醫療科技有限公司）檢測EBV DNA含量。

1.3 統計學方法

采用SPSS 22.0軟件進行統計分析。呈正態分布的計量數據采用±s表示，組間比較采用配對樣本t檢驗。以P<0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 模擬溶血樣本EBV DNA PCR檢測結果

血紅蛋白濃度為30.25和60.50 g/L時，EBV DNA陽性血漿溶血樣本和對照樣本的PCR檢測結果差異有統計學意義（P<0.05）。血紅蛋白濃度為15.13 g/L時，EBV DNA陽性血漿溶血樣本和對照樣本的PCR檢測結果差異無統計學意義（P>0.05）。見表1。

表1 模擬溶血樣本EBV DNA PCR檢測結果 g/L

2.2 模擬脂血樣本EBV DNA PCR檢測結果

EBV DNA陽性血漿各濃度脂血樣本與對照樣本的PCR檢測結果差異均無統計學意義（P>0.05）。見表2。

表2 模擬脂血樣本EBV DNA PCR檢測結果 拷貝/mL

3 討論

PCR技術是一種快速、可靠的檢測技術，但由于患者臨床樣本具有多樣性，如溶血、脂血，可能會使PCR檢測結果受到影響[6-7]。

本研究結果顯示，模擬溶血樣本和對照樣本在血紅蛋白濃度為30.25和60.50 g/L時，EBV DNA PCR檢測結果差異有統計學意義（P<0.05），而血紅蛋白濃度為15.13 g/L的模擬溶血樣本和對照樣本PCR檢測結果差異無統計學意義（P=0.073），提示溶血對EBV DNA檢測結果有影響，但輕微溶血不會影響檢測結果。目前，大多商品化PCR檢測試劑盒選擇擴增的靶序列都是相對穩定的EBV DNA片段，不易受溶血因素的影響，且PCR反應體系也有較大的緩沖作用，所以溶血引起的PCR抑制作用不是很明顯。然而，本研究結果顯示，當臨床樣本溶血程度較嚴重（血紅蛋白≥30.25 g/L）時，會影響EBV DNA的檢測結果。原因可能是溶血可導致血紅素及其他代謝產物的殘留，血紅素通過卟啉環與Taq酶不可逆結合，抑制了DNA聚合酶，從而降低了PCR擴增效率，導致產生假陰性結果[8]。

乳糜微粒增多可引起脂血樣本渾濁，三酰甘油和膽固醇水平可以客觀反映脂血的嚴重程度。脂血樣本中的混濁和脂蛋白顆粒會干擾檢測結果，其原因是血脂會降低光的透射率，進而影響分光光度分析結果。本研究結果顯示，三酰甘油濃度為6.36、4.24 和2.12 mmol/L的模擬脂血樣本和對照樣本的EBV DNA PCR檢測結果差異均無統計學意義（P>0.05）。提示樣本中三酰甘油≤6.36 mmol/L時，不會明顯抑制PCR反應體系中Tap酶的活性和核酸的擴增。原因可能是血液中三酰甘油的密度較低，經高速離心機離心后會漂浮在上層，棄去上清步驟時可以去除大部分，又經過多次稀釋，其干擾作用幾乎不存在，但三酰甘油在更高濃度時是否會對EBV DNA定量檢測的結果產生影響仍需進一步驗證。因此，對于肥胖、高血脂患者的血液樣本，在乳糜不嚴重的情況下也能得到相對準確的EBV DNA檢測結果。對于較為嚴重的乳糜樣本，可以采取高速離心、0.9%氯化鈉溶液或血清稀釋、使用脂質清除劑等方法降低乳糜程度[9]。若仍未改善，應重新采血。

綜上所述，在進行EBV DNA定量檢測時，應盡量保證采血過程的順利，避免餐后或靜脈給藥后立即采血，保證血液樣本運輸條件，血液樣本運輸至實驗室后應盡快檢測，避免放置時間過長導致溶血；若不能立刻檢測，應于4℃冰箱冷藏保存樣本。如果樣本出現溶血、嚴重脂血等現象，實驗室工作人員應按不合格樣本處理，通知臨床重新采血，以保證檢測結果的準確性。