東北林蛙皮糖胺聚糖分析及其體外免疫活性

于 奇鄭冉張怡李波劉達 李宜平 焦麗麗

（1.長春中醫藥大學藥學院， 吉林 長春130117； 2.長春中醫藥大學吉林省人參科學研究院， 吉林 長春130117）

東北林蛙Rana dybowskiiGuenther 為蛙科林蛙屬兩棲動物，俗稱“哈士蟆”［1］，廣泛分布于黑龍江、吉林、遼寧、內蒙古等地區，主產于長白山區域，是我國著名的藥食兩用藥材［2］。東北蛙皮中具有一定量的糖胺聚糖，在抗氧化［3］、抗凝血［4］、抗腫瘤［5］及免疫調節［6］方面呈現出較強的生物活性。近年來，許多國內外學者對林蛙皮多糖的研究主要集中在提取、分離純化及抗氧化［7?9］活性等方面，但對其結構特征仍不清楚。基于此，本研究以東北林蛙皮為原料，采用水提醇沉法分離純化得到林蛙皮多糖DGP 和DGPA，初步分析兩者基礎結構，并對其體外免疫活性進行研究，以期為進一步研究該成分結構及構效關系奠定基礎。

1 材料

1.1 試劑、藥物與動物 東北林蛙皮采自吉林省舒蘭市上營森林經營局桃園林場（東經127°25′36.18＂，北緯44°09′41.7＂，海拔338 m），經長春中醫藥大學李宜平教授鑒定為東北林蛙Rana dybowskiiGuenther 的干燥皮膚。8～10周齡ICR 雄性小鼠，體質量（20.0±2.0）g，購自長春市億斯實驗動物技術有限責任公司，實驗動物生產許可證號SCXK（遼）2020?0001，在相對濕度40%～60%，溫度22～25 ℃的無菌動物房中適應性喂養1 周。研究獲長春中醫藥大學倫理委員會批準，實驗操作嚴格執行國際動物實驗方針。SepharoseTMCL?6B 凝膠柱購自美國GE Healthcare 公司。標準分子量葡聚糖、單糖對照品購自上海源葉生物科技有限公司；考馬斯亮藍試劑盒購自南京建成生物工程研究所；1640 培養基購自美國Gibco 公司；新生牛血清購自浙江天杭生物科技股份有限公司；脂多糖（LPS）、半刀豆蛋白（ConA）、青霉素、鏈霉素、二甲基亞砜、MTT 均購自美國Sigma 公司。無水乙醇、氫氧化鈉、三氟乙酸、三氯甲烷、正丁醇、氨基磺酸、鹽酸、苯酚、硫酸等試劑均購自國藥集團化學試劑有限公司。

1.2 儀器 Model 680 型酶標儀購自美國Bio?Rad 公司；真空干燥箱購自上海精宏實驗設備有限公司；恒溫磁力攪拌器購自杭州儀表電機有限公司；離心機購自美國Sigma 公司；循環水式真空泵購自鄭州長城科工貿有限公司；二氧化碳培養箱購自日本Sanyo 公司；UV?8000 型紫外分光光度計購自上海元析儀器有限公司；傅里葉紅外光譜儀購自美國Thermo Fisher Scientific 公司。

2 方法

2.1 多糖制備 林蛙皮經水提［10］、醇沉后得粗多糖DGP，采用Sevage 法［7］脫蛋白后進一步用Sepharose CL?6B 瓊脂糖凝膠柱層析，得純化后多糖DGPA。

2.2 多糖理化性質分析 采用考馬斯亮藍法、間羥基聯苯法對DGP、DGPA 總蛋白及糖醛酸水平進行檢測。

2.3 多糖分子量測定 參考文獻［6］ 報道，色譜條件為TSKgel G3000 PWXL 色譜柱（7.8 mm×30.0 cm，5 μm）；流動相超純水；體積流量0.5 mL／min；柱溫40 ℃；進樣量20 μL。采用視差折射檢測器，用流動相配制不同分子量對照品溶液，多糖配制為10 mg／mL 溶液，0.22 μm 微孔濾膜過濾。

2.4 多糖傅里葉變換紅外光譜分析 2～3 mg 多糖與適量KBr 混合研細后壓片，在4 000～500 cm－1波數范圍內進行紅外光譜掃描。

2.5 單糖組成分析 多糖經三氟乙酸（TFA）水解后進行PMP 衍生。參考文獻［11］ 報道，色譜條件為C18Thermo hyperil ODS?2 色譜柱（4.6 mm×25 cm，5 μm）；流動相17%乙腈?83% PBS；體積流量1 mL／min；柱溫25 ℃；進樣量20 μL；檢測波長245 nm。

2.6 體外免疫活性檢測

2.6.1 多糖對小鼠淋巴細胞增殖轉化的影響 小鼠脫頸處死，無菌條件下解剖并取出脾臟，研磨制成脾細胞懸液，1 500 r／min離心5 min，棄上清，Tris?NH4Cl 低滲液裂解紅細胞，離心，D?Hanks 緩沖液洗滌，培養液將細胞密度稀釋至1×106／mL，制成單細胞懸液［12］，加入細胞培養板中，每孔100 μL，隨機分為空白 組、ConA 組（5 μg／mL ConA）、LPS 組（10 μg／mL LPS）、DGP 組（50、100、200、400 μg／mL 多糖溶 液）、DGPA 組（50、100、200、400 μg／mL 糖胺聚糖溶液）、陽性對照組（5 μg／mL ConA或10 μg／mL LPS），培養液補至200 μL，混勻，重復3孔，在5% CO2、37 ℃條件下培養44 h后，每孔加入20 μL MTT（5 mg／mL），繼續培養4 h，棄上清，加入150 μL 二甲基亞砜，于570 nm 波長處測定吸光度。

2.6.2 多糖對腹腔巨噬細胞的影響 小鼠腹腔注射6%可溶性淀粉2 mL，3 d 后處死，10 mL D?Hanks 緩沖液清洗腹腔，收集液體，4 ℃離心后棄上清，1640 完全培養基重懸細胞，調整細胞密度為2×106／mL，取100 μL 接種至96 孔板，在5% CO2、37 ℃下預孵3 h，PBS 清洗2～3次，除去貼壁細胞，制得純化巨噬細胞。

2.6.2.1 多糖對腹腔巨噬細胞吞噬功能的影響 將純化后的巨噬細胞加到待測糖樣（200 μL／孔）中，繼續培養24 h后吸棄上清，每孔加入100 μL 0.075%中性紅溶液繼續培養1 h，pH 7.4 PBS 洗去剩余中性紅后，加入100 μL 細胞裂解液，24 h 后采用酶標儀于550 nm 波長處檢測吸光度。

2.6.2.2 多糖對腹腔巨噬細胞NO 水平的影響 配制6 個不同濃度的NaNO2溶液，分別加到96 孔板中，加入等體積Griess 試劑，10 min 后于540 nm 波長處檢測吸光度，繪制標準曲線。細胞以2×106／mL 密度接種至24 孔板，加入多糖培養24 h，吸取細胞培養液上清100 μL 加到另一培養板中，加入等體積Griess 試劑，10 min 后在540 nm 波長處測定吸光度，根據標準曲線計算NO 水平。

2.6.2.3 TNF?α 水平檢測 腹腔巨噬細胞與多糖一起培養，取上清液，采用ELISA 試劑盒檢測細胞上清TNF?α水平。

2.7 統計學分析 通過SPSS 23.0 軟件進行處理，結果以（）表示，組間比較采用單因素方差分析，兩兩比較采用t檢驗。P＜0.05 表示差異具有統計學意義。

3 結果

3.1 糖胺聚糖柱層析純化 圖1 顯示，DGP 過SepharoseTMCL?6B 柱后得到單一、對稱的洗脫峰，收集相應多糖洗脫液，即為糖胺聚糖DGPA。

圖1 糖胺聚糖DGPA SepharoseTMCL?6B 柱層析

3.2 多糖理化性質 DGP、DGPA 總蛋白質量分數分別為19.93%、6.24%。采用間羥基聯苯法，以D?半乳糖醛酸含量為橫坐標（X），吸光度為縱坐標（A）進行回歸，得方程為A＝0.010 7X＋0.059 2（R2＝0.998 3），DGP、DGPA糖醛酸質量分數分別為14.5%、18.6%。DGPA 經高效凝膠滲透色譜法分析，以保留時間為橫坐標（X），標準分子量為縱坐標（Y）進行回歸，得方程為Y＝－0.354 1X＋9.392 7（R2＝0.996 7），測得DGPA 分子量為141 kDa。

3.3 單糖組成 圖2～3 顯示，DGP、DGPA 單糖組成相同，均由甘露糖、葡萄糖醛酸、葡萄糖、氨基半乳糖、半乳糖組成，前者摩爾比為0.30∶2.05∶0.17∶1∶0.23，以葡萄糖醛酸、氨基半乳糖為主，表達為81.3%；后者摩爾比為0.41∶2.67∶0.16∶1∶0.25，以糖醛酸為主，表達為59.4%。

圖2 DGP 單糖HPLC 色譜圖

3.4 多糖紅外光譜分析 圖4 顯示，3 370.38 cm－1左右的吸收峰為糖類?OH 的特征吸收峰，2 936.27 cm－1處的吸收峰為C?H 鍵強伸縮振動，1 653.10、1 544.57 cm－1左右的吸收峰說明有乙酰氨基（?NH2COCH3）存在，1 408.12 cm－1處的吸收峰為?COO－的特征吸收峰。綜上所述，?OH、?C?H鏈、?NH2COCH3、?COO 是糖的特征基團，故DGPA 為糖胺聚糖。

圖3 DGPA 單糖HPLC 色譜圖

圖4 DGPA 紅外光譜圖

3.5 多糖對小鼠脾淋巴細胞增殖的影響 圖5 顯示，與空白組比較，DGP 組、DGPA 組小鼠淋巴細胞增殖能力增強（P＜0.05，P＜0.01），并均呈劑量依賴性；與DGP 組比較，DGPA 組小鼠淋巴細胞增殖能力增強（P＜0.05，P＜0.01）。圖6～7 顯示，在50～400 μg／mL 質量濃度范圍內，DGP組、DGPA 組協同ConA 作用小鼠脾淋巴細胞時，細胞增殖能力高于ConA 組（P＜0.01），表明兩者均能促進誘導ConA 誘導的T 淋巴細胞增殖，并呈劑量依賴性，在400 μg／mL時作用最強，為空白組的3～4 倍；在50～100 μg／mL質量濃度范圍內，DGP 組、DGPA 組協同LPS作用于小鼠脾淋巴細胞時，細胞增殖能力低于LPS 組（P＜0.05），表明兩者均能抑制LPS 誘導B 淋巴細胞增殖；在200～400 μg／mL 質量濃度范圍內，細胞增殖能力高于LPS組（P＜0.01），表明兩者促進LPS 誘導B 淋巴細胞增殖，并且在相同質量濃度下DGPA 組作用更優。

圖5 多糖對小鼠脾淋巴細胞增殖的影響（，n＝10）

圖6 多糖對ConA 誘導小鼠脾淋巴細胞增殖的影響（，n＝10）

3.6 多糖對小鼠腹腔巨噬細胞吞噬功能的影響 巨噬細胞的主要功能是吞噬病原體等異物［13］。圖8 顯示，與空白組比較，DGPA 組小鼠巨噬細胞吞噬功能增強（P＜0.05，P＜0.01），并呈劑量依賴性；當質量濃度為400 μg／mL時，DGP 組、DGPA 組均能增強小鼠巨噬細胞吞噬功能，效果分別為空白組的1.25、2 倍。

圖7 多糖對LPS 誘導小鼠脾淋巴細胞增殖的影響（，n＝10）

圖8 多糖對小鼠腹腔巨噬細胞吞噬功能的影響（，n＝10）

3.7 多糖對小鼠腹腔巨噬細胞NO 水平的影響 圖9 顯示，與空白組比較，DGPA 組小鼠巨噬細胞NO 水平升高（P＜0.05，P＜0.01），并呈劑量依賴性；當質量濃度為400 μg／mL時，DGP 組、DGPA 組均能增強小鼠巨噬細胞產生NO 的能力，效果分別為空白組的3、5 倍。

圖9 多糖對小鼠腹腔巨噬細胞NO 水平的影響（，n＝10）

3.8 多糖對小鼠巨噬細胞TNF?α 水平的影響 圖10 顯示，在100～400 μg／mL 質量濃度范圍內，DGPA 組能增強小鼠巨噬細胞分泌細胞因子TNF?α 能力（P＜0.05，P＜0.01），并呈劑量依賴性；當質量濃度大于100 μg／mL時，DGPA組增強小鼠巨噬細胞分泌TNF?α 的能力大于DGP 組（P＜0.05）。

圖10 多糖對小鼠腹腔巨噬細胞TNF?α 水平的影響（，n＝10）

4 討論

通過對分子量、單糖組成、特殊基團的研究，確定了DGPA 為糖胺聚糖類化合物。已有研究表明，糖胺聚糖類化合物等具有顯著的免疫調節作用，其功能與結構密切相關［14］，楊潔［15］發現仿刺參糖胺聚糖能促進DC 細胞的增殖和細胞因子IL?12、TNF?α 的分泌。多種糖胺聚糖，例如仿刺參糖胺聚糖［12］、菲律賓蛤仔糖胺聚糖［16］、珠貝母糖胺聚糖［17］、近江牡蠣糖胺聚糖［14］等均被證明具有顯著的有免疫活性。本研究發現，林蛙皮糖胺聚糖具有顯著的免疫調節作用，且純化后的林蛙皮多糖DGPA 對淋巴細胞和巨噬細胞的激活作用明顯優于粗多糖DGP，而這2 種多糖的單糖組成存在一定差異，尤其是純化后多糖DGPA 的氨基半乳糖和葡萄糖醛酸的相對水平高于粗多糖DGP，而單糖組成是影響多糖活性的重要因素。因此，林蛙皮多糖DGPA 組與DGP 組的免疫活性差異可能與其單糖組成的差異有關，具體影響機制有待進一步研究。