風(fēng)味酵母A10-2的高密度培養(yǎng)及其生長動力學(xué)

朱婭媛，王曉謙，苗春雷，李巧連，朱新貴,2,

（1.李錦記（新會）食品有限公司，廣東江門 529100；2.華南農(nóng)業(yè)大學(xué)，廣東廣州 510642）

調(diào)味品是現(xiàn)代生活的必需品。研究表明發(fā)酵類調(diào)味品在釀造過程中產(chǎn)生的風(fēng)味物質(zhì)已知有300余種[1-2]，其風(fēng)味的形成是多菌種相互作用的結(jié)果，如米曲霉、乳酸菌及酵母菌等。其中酵母菌在發(fā)酵過程中主要產(chǎn)生的酯類、醇類等物質(zhì)，對醬料風(fēng)味的形成具有十分重要的貢獻(xiàn)[3]。在發(fā)酵特定階段接種選育的耐鹽產(chǎn)香酵母，使其在發(fā)酵過程中合成及積累特征性風(fēng)味物質(zhì)，如苯乙醇、呋喃酮、4-乙基愈創(chuàng)木酚等，可合理改善及優(yōu)化醬料風(fēng)味協(xié)調(diào)性及提升最終感官指標(biāo)[4-5]。近年來，充分發(fā)揮酵母菌在醬醪中的生香作用，是國內(nèi)外醬料生產(chǎn)企業(yè)所重點(diǎn)關(guān)注的研究內(nèi)容[6]，而目前對人為篩選獲得可應(yīng)用于醬料的風(fēng)味酵母的高密度培養(yǎng)工藝及生長動力學(xué)的研究較少，對其高密度批量培養(yǎng)工藝的研究及實(shí)現(xiàn)是其可應(yīng)用化的前提。

高密度培養(yǎng)指微生物在液體培養(yǎng)中細(xì)胞群體密度超過常規(guī)培養(yǎng)10倍以上時(shí)的生長狀態(tài)的培養(yǎng)技術(shù)[7]。流加補(bǔ)料工藝在高密度培養(yǎng)技術(shù)廣泛應(yīng)用：通過流加工藝進(jìn)行培養(yǎng)基限制性底物的不間斷補(bǔ)充，如碳、氮源，確保菌體維持高速生長、繁殖，而最終得到高濃度菌體的培養(yǎng)液，有效節(jié)省培養(yǎng)容器體積及培養(yǎng)基的消耗，降低生產(chǎn)周期及成本[8]。因此，研究風(fēng)味酵母的高密度培養(yǎng)工藝及優(yōu)化是具有實(shí)踐意義的。生長動力學(xué)將培養(yǎng)過程中菌體繁殖、基質(zhì)消耗、產(chǎn)物生成有關(guān)的因素用一定形式的數(shù)學(xué)模型進(jìn)行表達(dá)和定量描述[9-11]。在醬料風(fēng)味調(diào)控技術(shù)中，醬醪中產(chǎn)香酵母的篩選、馴化及繁殖應(yīng)用是非常關(guān)鍵的環(huán)節(jié)，建立目標(biāo)酵母的生長動力學(xué)模型，將為風(fēng)味酵母的高密度產(chǎn)業(yè)化培養(yǎng)提供理論及實(shí)踐指導(dǎo)基礎(chǔ)[12]。，

本文通過對醬醪中篩選的風(fēng)味酵母A10-2的高密度流加分批補(bǔ)料工藝進(jìn)行研究，對培養(yǎng)基質(zhì)氮源、碳源優(yōu)化，生長動力學(xué)、基質(zhì)消耗動力學(xué)進(jìn)行參數(shù)探索及模型構(gòu)建，分析其生長及基質(zhì)消耗的動態(tài)平衡形成條件以及內(nèi)在規(guī)律，以獲得培養(yǎng)的最大菌體干重濃度以及最短培養(yǎng)時(shí)間。同時(shí)，根據(jù)生長動力學(xué)模型對目標(biāo)酵母培養(yǎng)條件進(jìn)行分析，評價(jià)所建生長動力學(xué)預(yù)測模型的有效性，為設(shè)計(jì)合理的風(fēng)味酵母高密度流加補(bǔ)料培養(yǎng)工藝及酵母生長指標(biāo)的預(yù)測提供理論指導(dǎo)依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

菌株 由李錦記（新會）食品有限公司醬油醪篩選所得，經(jīng)分析為高產(chǎn)4-乙基愈創(chuàng)木酚的風(fēng)味酵母，初步鑒定為Wickerhamiella versatilis，命名為A10-2[13]；葡萄糖、蛋白胨、酵母浸粉、MgSO4·7H2O、NH4H2PO4、（NH4）2HPO4、CH4N2O、NH4Cl等 均為國產(chǎn)分析純；維生素B1、維生素B5、維生素B6、生物素 均為阿拉丁純品；糖蜜 廣西陸屋歐亞糖業(yè)有限公司。

30 L自吸式發(fā)酵罐 南京天匯生物技術(shù)裝備有限公司；BlueStar B紫外可見分光光度計(jì) 北京萊伯泰科儀器股份有限公司；H2050R離心機(jī) 湖南湘儀離心機(jī)儀器有限公司；MS3002TS/02電子秤 梅特勒-托利多儀器（上海）有限公司；794自動點(diǎn)位滴定儀 瑞士萬通公司；ZWY-211C搖床 上海智城分析儀器制造有限公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 培養(yǎng)基制備 種子液培養(yǎng)基：酵母浸粉10 g/L，葡萄糖20 g/L，蛋白胨20 g/L。

發(fā)酵培養(yǎng)基配方：維生素B120 mg/L, 維生素B620 mg/L，維生素B520 mg/L，生物素10 mg/L，MgSO4·7H2O 30 mg/L，KH2PO40.1 g/L。酸化糖蜜作為培養(yǎng)基碳源根據(jù)其總糖含量添加，控制培養(yǎng)液總糖濃度為10 g/L。

pH調(diào)節(jié)劑：10% H2SO4，10% Na2CO3。

流加補(bǔ)料液配方：碳源為酸化糖蜜（50°Brix；硫酸調(diào)節(jié)pH至4.3，4 h后調(diào)整pH至5.3），氮源按單因素實(shí)驗(yàn)優(yōu)選氮源配成，磷源為10% KH2PO4。

單因素實(shí)驗(yàn)篩選培養(yǎng)基：在發(fā)酵培養(yǎng)基配方基礎(chǔ)上去除碳源與氮源，加入所需篩選因素配成。

1.2.2 種子液培養(yǎng) 取新鮮斜面菌種接種至滅菌（121 ℃，15 min）后裝有100 mL種子液培養(yǎng)基的250 mL搖瓶中，在30 ℃、180 r/min條件下?lián)u床培養(yǎng)24 h。

1.2.3 氮源單因素實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì) 使用發(fā)酵培養(yǎng)基，添加酸化糖蜜至培養(yǎng)液中總糖濃度為20 g/L。分別使用磷酸氫二銨、磷酸二氫銨、尿素、氯化銨作為氮源變量，配制不同濃度（0.05、0.1、0.15、0.2、0.25、0.3 g/100 mL）培養(yǎng)基各100 mL于250 mL三角瓶中，分別接種斜面新鮮菌種，于30 ℃、180 r/min條件下?lián)u床培養(yǎng)，48 h后測定OD600nm值。

1.2.4 發(fā)酵罐補(bǔ)料流加高密度培養(yǎng) 將20 L發(fā)酵培養(yǎng)基加入發(fā)酵罐（最大裝液量30 L），實(shí)消后取液體菌種按10%接種量接種至發(fā)酵培養(yǎng)基中，使用自吸式發(fā)酵罐進(jìn)行酵母高密度培養(yǎng)，培養(yǎng)過程控制溶氧大于30%，pH4.8～5.3，溫度（30±0.3） ℃。每2 h測定菌體干重濃度，對數(shù)期增長后菌體干重濃度不再升高定義為培養(yǎng)終止?fàn)顟B(tài)。酸化糖蜜作為碳源，選擇單因素實(shí)驗(yàn)優(yōu)選氮源進(jìn)行流加補(bǔ)料，根據(jù)《酵母生產(chǎn)與應(yīng)用手冊》，流加糖液速度符合函數(shù)關(guān)系式[14]：

式中：V0表示初始培養(yǎng)液體積，L；X0表示初始菌體干重濃度，g/L；μ表示設(shè)定比生長速度（根據(jù)定期菌體干重濃度變化進(jìn)行計(jì)算及調(diào)整），h-1；Yx/s表示菌體對基質(zhì)（總糖）得率，g菌體干重/g基質(zhì)；F表示濃基質(zhì)（糖液）的流加速度，L/h； SF表示濃基質(zhì)濃度，g/L；S表示培養(yǎng)液中基質(zhì)濃度，g/L；t表示培養(yǎng)時(shí)間，h。

1.2.5 高密度培養(yǎng)過程流加工藝碳源最適濃度的研究

多批次補(bǔ)料流加培養(yǎng)菌體，調(diào)整碳源（酸化糖蜜）泵入流速，通過持續(xù)流加糖液保持培養(yǎng)液總糖濃度不同批次分別為0～0.2、0.2～0.4、0.4～0.6、0.6～0.8、0.8～1.0、1.0～1.2、1.2～1.4 g/100 mL，根據(jù)培養(yǎng)終酵母干重濃度與培養(yǎng)時(shí)間，對比不同批次發(fā)酵培養(yǎng)液中不同碳源（總糖）濃度對菌體干重平均生長速度的影響。

1.2.6 高密度培養(yǎng)菌體生長動力學(xué)模型建立 流加補(bǔ)料高密度培養(yǎng)，培養(yǎng)過程中每2 h進(jìn)行取樣，檢測菌體干重。根據(jù)菌體生長情況，以進(jìn)入對數(shù)生長時(shí)期的時(shí)間為起點(diǎn)，取樣時(shí)間縮短為每0.5 h，同時(shí)檢測總糖含量、菌體干重，計(jì)算進(jìn)入對數(shù)生長時(shí)期后單位體積菌體生長所需的總糖耗用量。通過研究高密度培養(yǎng)過程中菌種干重與時(shí)間及基質(zhì)（總糖）消耗的對應(yīng)關(guān)系，建立生長動力學(xué)、基質(zhì)消耗動力學(xué)模型。

1.2.6.1 菌體生長動力學(xué)模型的建立 Logistic 方程是用來描述培養(yǎng)過程中菌體生長隨時(shí)間變化規(guī)律最常用的模型，是典型的“S”形曲線，選擇使用Logistic方程建立酵母A10-2的生長動力學(xué)，菌體生長模型的微積分表達(dá)式如公式（2）所示[15]：

對式（2）進(jìn)行積分后得到：

式中：X0表示菌體初始濃度，g/L；X表示菌種濃度，g/L；Xm表示菌種濃度，g/L；μm表示最大比生長速率，h-1；t表示發(fā)酵時(shí)間，h。

1.2.6.2 菌體底物消耗動力學(xué)模型的建立 由物料恒算可知，限制性底物的消耗用于菌體生長、菌體維持和產(chǎn)物合成這3 個(gè)方面[16]。對于限制性底物的消耗一般采用類似Luedeking-Piret方程[17-18]來描述：

由于培養(yǎng)過程中盡可能地抑制菌體代謝，其代謝產(chǎn)物所耗用的基質(zhì)則微乎其微。忽略菌體代謝產(chǎn)物所耗用的碳源后：

比底物消耗速率方程為：

將式（5）微積分后得：

式中：X表示菌體干質(zhì)量濃度，g·L-1；P表示產(chǎn)物濃度，g·L-1；Yx/s表示菌體對基質(zhì)（總糖）得率，g菌體干質(zhì)量/g基質(zhì)；Yp/s表示產(chǎn)物對基質(zhì)得率，g產(chǎn)物/g基質(zhì)；ms表示維持系數(shù)，g·L-1·h-1；qs=dS/Xdt，底物比消耗速率，g·g-1·h-1； μ=dX/Xdt比生長速率，h-1；t表示培養(yǎng)時(shí)間，h。

1.2.7 分析檢測 菌體干重測定：準(zhǔn)確量取100 mL培養(yǎng)液，離心10 min（4000 r/min），棄上清液。加100 mL蒸餾水洗滌，再次離心10 min，棄上清液后以蒸餾水將菌種打散洗出至培養(yǎng)皿，置于烘箱中105 ℃至恒重后進(jìn)行測定[19]。

總糖測定：采用酸水解法，使用3，5-二硝基水楊酸進(jìn)行測定[20]。

1.3 數(shù)據(jù)處理

采用Excel 2019軟件對3次重復(fù)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析并作圖，取平均值作為擬合數(shù)據(jù)。使用SAAinc-Elisa軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合。

2 結(jié)果與分析

2.1 碳、氮源優(yōu)選實(shí)驗(yàn)

2.1.1 氮源優(yōu)選單因素實(shí)驗(yàn) 糖蜜中含有少量氮源，甘蔗糖蜜中總氮含量約為0.6%（質(zhì)量比），其中大部分以生物堿及胺態(tài)氮形式存在[21-22]。流加補(bǔ)料高密度培養(yǎng)工藝中，糖蜜所帶入培養(yǎng)液的總氮不足0.1 g/L，遠(yuǎn)不足以支持酵母的增殖。為解決氮源缺乏而導(dǎo)致的增長遲緩問題，需通過外加氮源進(jìn)行補(bǔ)充。菌體對有機(jī)氮源的利用優(yōu)于無機(jī)氮源，但批量生產(chǎn)中，使用無機(jī)氮源更符合對成本的控制需求[23]。

圖2 不同濃度磷酸二氫銨（氮源）對培養(yǎng)終酵母濃度的影響Fig.2 Effects of different concentration of NH4H2PO4 as nitrogen on the maximum density of yeast

圖3 不同濃度磷酸氫二銨（氮源）對培養(yǎng)終酵母濃度的影響Fig.3 Effects of different concentration of （NH4）2HPO4 as nitrogen on the maximum density of yeast

使用搖瓶法進(jìn)行氮源優(yōu)選實(shí)驗(yàn)，因單次培養(yǎng)基投入搖瓶培養(yǎng)而收獲菌體濃度小，為避免低濃度時(shí)檢測菌體干重的誤差，使用OD600nm檢測值作為干重濃度的反饋。根據(jù)檢測數(shù)據(jù)及統(tǒng)計(jì)分析，在不同氮源條件下，如圖1～圖4所示，氮源濃度在0.05～0.2 g/100 mL時(shí)，各實(shí)驗(yàn)組均呈現(xiàn)了菌體吸光度隨氮源濃度增加而增大的趨勢；在氮源濃度大于0.2 g/100 mL時(shí)，菌體吸光度隨氮源濃度增加而減少。結(jié)果表明，氮源濃度在0.05～0.3 g/100 mL范圍內(nèi)，尿素與磷酸氫二銨對酵母菌體培養(yǎng)效果無顯著差異（P＞0.05），磷酸二氫銨作為氮源的培養(yǎng)效果最佳，氯化銨作為氮源時(shí)培養(yǎng)效果較差。在氮源濃度0.2 g/100 mL情況下，磷酸二氫銨作為氮源得到吸光度最大（P＜0.05），即反饋菌體干重濃度最大。

圖1 不同濃度尿素（氮源）對培養(yǎng)終酵母濃度的影響Fig.1 Effects of different concentration of CH4N2O as nitrogen on the maximum density of yeast

圖4 不同濃度氯化銨（氮源）對培養(yǎng)終酵母濃度的影響Fig.4 Effects of different concentration of NH4Cl as nitrogen on the maximum density of yeast

2.1.2 高密度培養(yǎng)過程流加工藝碳源最適濃度的研究 糖蜜中含有大量的蔗糖和轉(zhuǎn)化糖，根據(jù)研究，甘蔗糖蜜中總糖占比約50% （糖蜜固形物80°Brix～85°Brix），其中非發(fā)酵性糖僅占總糖含量的10%左右[24]。除碳源、氮源外，糖蜜中還含有鉀、鈣、磷、硫及維生素等微量元素，亦能促進(jìn)酵母菌體的增長[25]。使用糖蜜作為高密度培養(yǎng)過程的唯一碳源，是滿足菌體所需且成本低廉、培養(yǎng)效果較好的原料。影響高密度培養(yǎng)的因素有很多，如溫度、pH、菌體活性等，而基質(zhì)濃度則是流加補(bǔ)料高密度培養(yǎng)工藝影響酵母干重得率的關(guān)鍵因素之一[26-27]。

流加補(bǔ)料過程中，通過調(diào)整碳源泵入速度以維持培養(yǎng)液中總糖濃度在設(shè)定范圍內(nèi)。根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果，培養(yǎng)液總糖濃度不同，則酵母增長的平均生長速度（培養(yǎng)終狀態(tài)酵母干重濃度/培養(yǎng)總耗時(shí)）也有較大差異。如圖5所示，當(dāng)培養(yǎng)過程中培養(yǎng)液總糖濃度始終維持在0～0.6 g/100 mL時(shí)，酵母干重平均增長速度隨總糖濃度增大而增大。當(dāng)總糖濃度超過0.6 g/100 mL，酵母干重平均增長速度隨總糖濃度增加而減小。在培養(yǎng)液總糖濃度控制在0.4～0.6 g/100 mL時(shí)，其干重平均增長速度達(dá)到最大。酵母的生長與代謝取決于很多因素，如氧、基質(zhì)、生長周期等。根據(jù)研究，酵母具有“Crabtree效應(yīng)”（又稱“葡萄糖效應(yīng)”），當(dāng)培養(yǎng)液含糖量過高時(shí)，即使在氧充足的情況下，酵母也會進(jìn)行酒精發(fā)酵而減少糖的利用率，致使自身細(xì)胞增長速度降低[28-29]。而根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果，在培養(yǎng)液總糖濃度大于0.6 g/100 mL時(shí)，單位體積酵母的干重增長速度顯著降低亦印證了此效應(yīng)。

圖5 培養(yǎng)液不同總糖濃度對菌體干重的影響Fig.5 Effects of different concentrations of total sugar in culture medium on yeast cell dry weight

2.2 菌體動力學(xué)模型建立

2.2.1 菌體生長動力學(xué)模型建立 現(xiàn)代微生物動力學(xué)理論起源于Monod方程，作為描述菌體生長的模型，被認(rèn)為更適合菌體生長較慢、密度較低且無抑制作用的環(huán)境，反饋了菌體增長與基質(zhì)消耗的μ=μ（S）情況[30]。嘗試使用Monod模型對A10-2酵母培養(yǎng)階段各數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合，以1/S為橫坐標(biāo)，1/μ為縱坐標(biāo)作圖，所得結(jié)果擬合決定系數(shù)并不高（R2=0.807）。Monod模型在補(bǔ)料流加高密度培養(yǎng)工藝中，無法描述菌體密度對自身的抑制，且流加基質(zhì)的補(bǔ)充亦降低了基質(zhì)對菌體的限制性影響，擬合系數(shù)相對較低亦佐證了此理論。Logistic方程能夠很好的詮釋分批發(fā)酵過程中菌體濃度增加對自身的抑制而呈現(xiàn)S形生長曲線[31]。因此，選擇使用Logistic方程更適用于描述產(chǎn)香酵母的生長。

如圖6所示，使用酵母高密度培養(yǎng)過程中干重與時(shí)間數(shù)據(jù)作圖，根據(jù)Logistic模型進(jìn)行數(shù)據(jù)分析，并運(yùn)用SAAinc-Elisa軟件對實(shí)驗(yàn)值進(jìn)行非線性擬合，得到擬合公式中μm值為0.4764 h-1。將動力學(xué)參數(shù)X0=1.73 g/L、Xm=36.09 g/L、μm=0.4764 h-1代入式（3）中，可得到菌體生長動力學(xué)方程：

圖6 酵母生長動力學(xué)模型擬合曲線Fig.6 Fitting curve of yeast growth kinetic model

擬合決定系數(shù)R2=0.9721，驗(yàn)證了Logistic方程能夠很好地描述產(chǎn)香酵母A10-2分批高密度培養(yǎng)過程中菌體的生長情況。

在高密度培養(yǎng)過程中，流加補(bǔ)料使培養(yǎng)液總體積增大。但由于A10-2酵母的遲緩期時(shí)間較長（約20 h），而對數(shù)期時(shí)間較短（8～10 h），補(bǔ)料流加時(shí)濃糖液產(chǎn)生的稀釋率對發(fā)酵液整體體積的影響較小（耗用糖液體積:培養(yǎng)液終體積=1:8.5）。由此認(rèn)為取樣間隔時(shí)間為2 h或更短的情況下，可忽略流加造成的體積變化，此動力學(xué)方程對實(shí)際生產(chǎn)是具有預(yù)測指導(dǎo)意義的。

2.2.2 菌體底物消耗模型建立選用類似Luedeking-Piret方程建立菌體總糖消耗模型，如圖7所示，根據(jù)式（5）比底物消耗速率方程將μ對比底物消耗速率qs作圖，并進(jìn)行線性回歸：

圖7 比生長速率μ與底物比消耗速率qs的關(guān)系Fig.7 Relationship curve of μ versus qs

得到擬合方程中Yx/s最大值YG=0.5879 g/g，ms=0.0127 g·L-1·h-1。將YG、ms及生長動力學(xué)所得X方程代入式（6）得：

對于流加補(bǔ)料高密度培養(yǎng)工藝，溶液中糖液的持續(xù)補(bǔ)充使公式中的S0無法賦予定值計(jì)算，而單位體積內(nèi)總糖的累加消耗量可通過上式變形得到：

該方程描述了高密度培養(yǎng)過程中單位體積培養(yǎng)液中總糖的累加消耗情況，相關(guān)系數(shù)R2=0.9767說明了模型擬合度高，方程建立較理想。

2.2.3 模型驗(yàn)證 為檢測模型的誤差及驗(yàn)證模型的準(zhǔn)確性，重復(fù)實(shí)驗(yàn)并測定、計(jì)算菌體干重?cái)?shù)據(jù)及單位體積總糖累加消耗數(shù)據(jù)，使用實(shí)驗(yàn)實(shí)際值與擬合公式計(jì)算值進(jìn)行對比，計(jì)算絕對誤差（表1）。

表1 A10-2酵母高密度培養(yǎng)動力學(xué)數(shù)據(jù)擬合值與實(shí)驗(yàn)值對比Table 1 Comparison of growth kinetics of A10-2 yeast between calculated and experimental data

由于菌體適應(yīng)期（0～22 h）生長緩慢且生物量受接種初期影響較大，為排除操作性影響而取菌種進(jìn)入對數(shù)期后數(shù)據(jù)進(jìn)行研究。數(shù)據(jù)表明，菌體干重與單位體積總糖耗用量實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)與擬合計(jì)算數(shù)據(jù)的絕對誤差均小于10%，認(rèn)為所建立菌體生長動力學(xué)模型與底物（總糖）消耗模型可較好地描述A10-2酵母高密度流加補(bǔ)料工藝的生長與總糖利用情況[32]，模型準(zhǔn)確性較高，能夠?yàn)閷?shí)際培養(yǎng)過程提供理論參考。

3 結(jié)論

本文對可應(yīng)用于醬料增香的風(fēng)味酵母進(jìn)行高密度培養(yǎng)補(bǔ)料碳、氮源的優(yōu)化，以成本控制為前提有效獲得了最佳補(bǔ)料方案：磷酸二氫銨作為氮源，0.2 g/100 mL為優(yōu)選濃度；糖蜜作為碳源流加補(bǔ)充，培養(yǎng)基中總糖流加保持0.4～0.6 g/100 mL濃度可獲得較高的培養(yǎng)終菌體干重收獲率。另外，本文也探索了高密度培養(yǎng)過程風(fēng)味酵母的生長動力學(xué)及基質(zhì)消耗動力學(xué)，對其模型的建立將為培養(yǎng)的預(yù)測性及可控性提供理論指導(dǎo)依據(jù)。

后續(xù)研究將圍繞放大生產(chǎn)批量高密度培養(yǎng)工藝進(jìn)行參數(shù)差異的探究及準(zhǔn)確性調(diào)整，從而建立以高菌體干重收獲率為目的的風(fēng)味酵母A10-2高密度補(bǔ)料流加工藝，并根據(jù)動力學(xué)模型對其進(jìn)行預(yù)測及培養(yǎng)控制。風(fēng)味酵母高密度批量生產(chǎn)的實(shí)現(xiàn)及調(diào)控，將對其在醬料中的有效應(yīng)用及風(fēng)味強(qiáng)化技術(shù)起到輔助性推動作用。