利用DNA免疫技術制備人CLDN18.2單克隆抗體

戎卓娜 趙傳科 孟 麟 王 冰 鐘堂武 王立新 壽成超 （北京大學腫瘤醫院暨北京市腫瘤防治研究所，生物化學與分子生物學研究室，惡性腫瘤發病機制及轉化研究教育部重點實驗室，北京 100142）

CLDNs（claudins）蛋白家族在哺乳動物細胞中由27 個成員組成，這些成員均為四次跨膜蛋白，具有兩個胞外區，其N 端和C端均位于細胞內，分子量為20~34 kD［1］。CLDNs蛋白是維持上皮細胞緊密連接的重要成分，相同或不同家族成員間的相互作用可賦予細胞不同功能，在多種生理和病理狀態中發揮重要作用［2］。

CLDN18 基因位于染色體3q22.3，具有兩種不同的剪切形式，分別編碼CLDN18.1 和CLDN18.2蛋白［3］。CLDN18.1 和CLDN18.2 的表達譜存在顯著差異，CLDN18.1 可廣泛表達于肺泡上皮組織，而CLDN18.2 除在分化良好的胃黏膜上皮有一過性表達外，其主要表達于多種腫瘤組織，如胃癌、胰腺癌、肺癌、卵巢癌等，在胃腸腺癌中其表達可達80%，在胰腺癌中表達可達60%。因此，CLDN18.2成為近年來腫瘤治療的重要研究靶點，多個CLDN18.2抗體藥物已進入臨床試驗［4-5］。

CLDN18 蛋白的N 端和C 端均位于胞內，經4 次跨膜后形成兩個胞外區。第一胞外區約由50 個氨基酸組成，人CLDN18.1 和CLDN18.2 之間僅有8 個氨基酸的差異；第二胞外區約由22 個氨基酸組成，CLDN18.1和CLDN18.2間完全同源。因此，針對第一胞外區是獲得CLDN18.2特異抗體的關鍵。由于第一胞外區在CLDN18.1 和CLDN18.2 間高度同源，同時在人鼠間完全同源［6］，這對常規采用蛋白或多肽經小鼠免疫后，通過細胞融合獲得CLDN18.2特異性單克隆抗體的策略構成巨大的挑戰和障礙。本文在構建CLDN18.2 真核表達質粒的基礎上，嘗試采用in vivo-jet PEI-Gal 轉染試劑通過小鼠尾靜脈注射進行質粒DNA 免疫，發現在經2 次免疫后，小鼠體內即可檢測到高滴度抗體，隨后課題組經細胞融合和篩選，獲得了多株CLDN18.2高特異性、高親和力的抗體，為后續的CLDN18.2 抗體藥物研發奠定了重要基礎。

1 材料與方法

1.1 材料 pcDNA3.1（+）-CLDN18.2 質粒由上海生工生物技術有限公司全基因合成；293T、293TCLDN18.1 和293T-CLDN18.2 細胞均購自康源博創生物技術有限公司，細胞培養條件為DMEM+10%FBS，37 ℃5%CO2；小鼠SP2/0 骨髓瘤細胞系由我室保存，培養條件為1640+15%FBS；6~8周齡雌性BALB/c 小鼠購自北京華阜康生物技術有限公司；in vivo-jetPEI-Gal（Cat#.202-10G）購自Polyplus；CLDN18抗體（Cat#.700178）購自Thermo 公司；次黃嘌呤、氨基蝶呤、胸苷（hypoxathine，aminopterin，thymidine，HAT）購自Sigma公司；FITC-羊抗小鼠購自北京中杉金橋生物技術有限公司；EndoFree Plasmid Maxi Kit購自Qiagen公司。

1.2 方法

1.2.1 質粒的提取及鑒定 37 ℃過夜培養pc-DNA3.1（+）-CLDN18.2質粒菌液200 ml。離心收取菌液后，采用EndoFree Plasmid Maxi Kit 提取質粒DNA。經HindⅢ和NotⅠ雙酶切后，采用1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定。載體大小5.4 kb，目的片段約800 bp。

1.2.2 小鼠DNA 免疫 選取6~8周齡雌性BALB/c小鼠進行免疫。將40 μg pcDNA3.1（+）-CLDN18.2質粒與6.4μlin vivo-jetPEI-Gal按說明書混勻，靜置15 min 后，尾靜脈注射至小鼠體內。21 d 后使用相同方案再次免疫小鼠。第2次免疫7 d后取尾血，分別采用293T、293T-CLDN18.1、293T-CLDN18.2 細胞進行ELISA 檢測尾血效價。于融合前3 d 選擇抗體滴度最高的1只小鼠加強免疫后進行細胞融合。

1.2.3 細胞融合與篩選 取免疫后小鼠脾臟，采用傳統的雜交瘤技術與骨髓瘤SP2/0 細胞融合，以HAT 選擇性培養基培養。在融合后第8 天左右，吸取克隆孔培養上清同時采用293T、293T-CLDN18.1及293T-CLDN18.2 三種細胞進行常規細胞ELISA檢測，篩選只與293T-CLDN18.2 細胞反應、與293T及293T-CLDN18.1 均不反應的克隆孔，通過有限稀釋法進行亞克隆及篩選，直至獲得能穩定分泌抗CLDN18.2的雜交瘤單克隆細胞株。

1.2.4 單克隆抗體的制備與純化 BALB/c 小鼠腹腔注射0.5 ml 弗氏不完全佐劑，次日腹腔注射雜交瘤細胞（2×106個/只）。待約7 d 后小鼠腹部顯著膨隆時收取腹水，2 000 r/min 離心20 min，取上清。經平衡緩沖液等體積稀釋后，0.45 μm 濾器過濾。將過濾后的腹水以1 ml/min 流速通過Purify 蛋白純化儀，平衡緩沖液洗去雜蛋白，洗脫液（100 mmol/L 甘氨酸-鹽酸，pH=2.8）洗脫抗體，收取OD280>0.5的抗體洗脫液，經PBS 4 ℃透析后進行SDS-PAGE電泳鑒定。

1.2.5 細胞ELISA 293T、293T-CLDN18.1和293TCLDN18.2 細胞以2×104個/孔鋪96 孔板，18 h 后直接加入0.25%的戊二醛，100 μl/孔，室溫固定細胞20 min，PBST 清洗5 遍；然后采用5%的脫脂奶粉室溫封閉2 h，PBST 清洗5 遍；將稀釋的小鼠血清或單抗以100 μl/孔加入各孔，室溫反應2 h，PBST 清洗5 遍；加入HRP 標記的羊抗小鼠二抗，100 μl/孔，室溫反應1 h，PBST 清洗5 遍；加入底物顯色液OPD（100 μl/孔），室溫避光顯色15 min；加入12.5%H2SO4終止（50 μl/孔）。酶標儀檢測OD490讀數。采用Graphpad prism 軟件，以抗體濃度為橫坐標，OD490讀數為縱坐標做散點圖并模擬結合曲線，計算EC50值作為抗體的親和力。

1.2.6 免疫沉淀 采用RIPA 裂解液裂解細胞收取蛋白。各取1 μg CLDN18.2 單抗與20 μl Protein G瓊脂糖凝膠珠加入1 ml PBST中，同時以1μg小鼠IgG 作為陰性對照，室溫搖床孵育1 h，PBST 洗珠3 次，然后分別加入100 μl 細胞裂解液和900 μl PBST 4 ℃搖床過夜。次日PBST洗珠3次，加入與柱等體積的2×SDS裂解液，煮沸7 min，常規電泳、轉膜后，采用商業化CLDN18 抗體進行Western blot檢測。

1.2.7 流式細胞檢測 常規消化細胞并以預冷的PBS 清洗2 遍后，PBS 重懸至2×106個/ml，取100 μl細胞液，用2 μg/ml 的CLDN18.2 單抗室溫染色45 min，PBS清洗3遍，采用Alexa Fluor 488標記的羊抗小鼠二抗室溫染色30 min，PBS 清洗3 遍，300 μl PBS重懸細胞上機檢測（BD FACS Aria）。

1.2.8 免疫熒光實驗 細胞爬片以100μg/ml的多聚賴氨酸37 ℃包被2 h，采用高壓ddH2O 清洗3 遍，晾干備用。293T-CLDN18.2、293T-CLDN18.1 和293T 細胞消化重懸，以相同細胞數鋪在放置了經上述預處理的載玻片的24孔板中。細胞貼壁24 h后，采用預冷的PBS 清洗2 遍，以2 μg/ml 的CLDN18.2單抗和Hochest 33258（1∶100）37 ℃染色45 min，PBS清洗3遍，以Alexa Fluor 488標記的羊抗小鼠二抗室溫染色30 min，PBS清洗3遍，90%甘油封片后，采用Leica SP2共聚焦顯微鏡進行觀察。

2 結果

2.1 質粒構建與鑒定 pcDNA3.1（+）-CLDN18.2構建質粒圖譜見圖1A。質粒轉化DH5α 感受態，次日稀釋至200 ml LB 培養基中擴增培養過夜。離心收取細菌沉淀，使用EndoFree Plasmid Maxi Kit 進行大提；提取的質粒經電泳鑒定，其純度在98%以上，且主要為超螺旋結構，適用于后續試驗（圖1B）。使用HindⅢ和NotⅠ對大提質粒進行雙酶切鑒定，其釋放的目的片段約800 bp，符合預期（圖1C）。質粒測序結果表明序列正確（圖略）。

圖1 pcDNA3.1（+）-CLDN18.2質粒圖譜及酶切鑒定Fig.1 Identification and construction of pcDNA3.1（+）-CLDN18.2

2.2 小鼠抗血清效價檢測 用上述質粒進行第2次免疫后第7 天取小鼠尾血進行梯度稀釋，然后采用293T-CLDN18.2、293T-CLDN18.1 和293T 細胞鋪96 孔板進行效價檢測。結果可見，受測小鼠的抗血清與293T-CLDN18.2 細胞有較強反應，而與293TCLDN18.1 和293T 細胞的反應較弱（圖2A），即使在1∶2 000 稀釋時，其OD490讀數仍>0.5，與293TCLDN18.1 和293T 細胞相比差異明顯（圖2B）。以上結果表明，質粒DNA 免疫可有效誘導小鼠產生抗人CLDN18.2的特異性抗體。

圖2 質粒免疫小鼠血清效價檢測Fig.2 Quantitation of serum antibody titers after immuni?zation in mice

2.3 細胞融合篩選與抗體的制備純化 對上述pcDNA3.1-CLDN18.2質粒免疫小鼠進行常規融合、293T-CLDN18.2、293T-CLDN18.1 及293T 細胞差異篩選及多輪亞克隆，最終獲得15 株抗人CLDN18.2的雜交瘤細胞株，并通過小鼠腹水制備和抗體純化獲得不同量的純化抗體。抗體經電泳鑒定未見明顯雜帶（圖3），純度良好符合后續實驗要求。

圖3 CLDN18.2單克隆抗體的純化Fig.3 Purification of CLDN18.2 monoclonal antibodies

2.4 細胞ELISA 檢測CLDN18.2 單克隆抗體特異性 293T、293T-CLDN18.1 和293T-CLDN18.2 細胞分別鋪96 孔板，用上述純化的CLDN18.2 抗體通過ELISA（2μg/ml）進行特異性檢測，結果如圖4 所示，制備獲得的15 株小鼠雜交瘤單克隆抗體，除4G3、5H8 和6D4 與293T-CLDN18.1 有較弱交叉反應外，其余均表現出CLDN18.2高特異性反應。

圖4 細胞ELISA檢測CLDN18.2單克隆抗體的特異性Fig.4 Detection of monoclonal antibodies reacted with CLDN18.2 protein by cell ELISA

2.5 細胞ELISA 檢測CLDN18.2 單克隆抗體親和力 293T-CLDN18.2 細胞鋪96 孔板，單克隆抗體以100、10、1、0.1、0.01、0.001、0.000 1和0.000 01 nmol/L濃度進行細胞ELISA，檢測抗體親和力。結果顯示15 株抗體與293T-CLDN18.2 細胞結合均呈濃度依賴性，并呈現出較高的結合活性（圖5）。表1是15株抗體的親和力EC50值，除4G3和5H7兩株單克隆抗體的EC50 為納摩爾級，其他單克隆株的EC50 均為亞納摩爾級。該結果表明本次制備的CLDN18.2小鼠單克隆抗體親和力較高。

表1 CLDN18.2單克隆抗體的親和力Tab.1 Affinity of CLDN18.2 monoclonal antibodies

圖5 細胞ELISA檢測CLDN18.2單克隆抗體的親和力Fig.5 Affinity of monoclonal antibodies reacted with CLDN18.2 protein by cell ELISA

2.6 CLDN18.2 單克隆抗體在Western blot 和免疫沉淀中的應用檢測 為了解本次制備抗體是否可用于CLDN18.2 的Western blot 和免疫沉淀的檢測，分別用293T-CLDN18.1 和293T-CLDN18.2 細胞總蛋白進行電泳，轉膜后，用上述15株抗人CLDN18.2單克隆抗體作為一抗進行Western blot 檢測，但15株抗體均未檢出特異性條帶，本次制備的15株抗體均不適于Western blot的應用（數據未展示）。

為進一步鑒定抗體的應用，使用制備的CLDN18.2 小鼠單抗和上述細胞的裂解蛋白進行免疫沉淀，采用商品化CLDN18 通抗進行Western blot檢測。結果如圖6所示，除單抗6D4與CLDN18.1有較弱的交叉反應外，其余單克隆抗體均與CLDN18.2 呈特異性反應，單抗5H1-2、5H7、7A10、8C12和9A1在免疫沉淀中表現出更強的結合活性。

圖6 CLDN18.2單克隆抗體免疫沉淀應用Fig.6 Immunoprecipitation application of CLDN18.2 monoclonal antibodies

2.7 CLDN18.2單克隆抗體在流式細胞術中的應用檢測 收集293T、293T-CLDN18.1和293T-CLDN18.2細胞，預冷PBS 洗2 遍，進行流式染色，檢測結果見圖7。除單抗4G3、5H7和6D4 對293T-CLDN18.1細胞有一定陽性染色外（分別為9.3%、24.3% 和7.6%），其他抗體均對293T-CLDN18.2 細胞呈特異性染色，染色陽性率均大于80.0%。其中，5C9 的陽性染色率高達96.2%。以上結果表明，獲得的15 株CLDN18.2 單抗均可用于流式細胞染色的檢測，且該結果與細胞ELISA結果基本一致。

圖7 CLDN18.2單克隆抗體在流式細胞術中的應用Fig.7 Flow cytometry application of CLDN18.2 monoclo?nal antibodies

2.8 CLDN18.2 單克隆抗體在細胞免疫熒光中的應用檢測 根據ELISA 和流式染色結果，選擇1D5、5C9、5H1、5H7、8C12 和15G11 6 株特異性強的單克隆抗體進行免疫熒光應用的檢測。結果如圖8 所示，6 株單克隆抗體與293T 和293T-CLDN18.1 細胞均不反應，與293T-CLDN18.2 特異性結合且蛋白清晰膜定位，說明上述6 株抗體均可用于CLDN18.2的特異性免疫熒光檢測。

圖8 CLDN18.2單克隆抗體的免疫熒光應用Fig.8 Immunofluorescence application of CLDN18.2 monoclonal antibodies

3 討論

盡管近年來單克隆抗體制備技術獲得了較快發展，兔單克隆抗體的制備、噬菌體抗體庫篩選等也已成為獲得單克隆抗體的重要途徑，但傳統的小鼠雜交瘤抗體制備技術因其技術成熟、操作相對簡單及條件要求較低等優勢，依然是目前獲得單克隆抗體的常用方法［7-8］。特別是隨著基因工程技術的快速發展，鼠源抗體的人源化改造技術也已經非常成熟，研究者通過小鼠免疫獲得高特異性、高親和力的抗體，在此基礎上對其進行人源化改造，亦已成為抗體藥物研發的常用策略。

欲獲得特異性高、親和力強的單克隆抗體，首先需對小鼠進行抗原免疫。蛋白、多肽及細胞是常用的抗原形式，鑒于免疫用蛋白多為原核表達產物，缺少表達后的蛋白修飾及必要的空間構象；化學合成的多肽雖然成本低廉，但因其只是蛋白質的一級肽鏈結構，用原核表達蛋白或人工合成多肽進行免疫獲得的單克隆抗體雖然可與抗原結合，但有時難以同具有生物學活性的天然蛋白結合［6］。由于CLDN 家族蛋白間的同源性較高，特別是人CLDN18.1和CLDN18.2的兩個胞外區，組成第二胞外區的約22個氨基酸是完全相同的，組成第一胞外區的50 個左右氨基酸也僅有8 個氨基酸的差異。為獲得針對CLDN18.2 的特異抗體，研究者多采用第一胞外區差異多肽進行免疫。通過該方法獲得的抗體雖然可同多肽反應，但多難以同CLDN18.2蛋白結合。用穩定表達CLDN18.2 的細胞進行免疫，然后分別用表達CLDN18.1 和CLDN18.2 的細胞進行差異篩選，雖然也是可以考慮的技術路線，但因細胞含有的抗原極為復雜，又因CLDN18.1 和CLDN18.2間高度同源，要獲得CLDN18.2特異性單克隆抗體，除篩選工作量大外，還存在較高的不確定性［9-10］。

DNA 免疫多用于基因治療或作為疫苗進行疾病預防，給藥途徑多為輔以佐劑予以肌肉注射，或采用金包顆粒通過基因槍給藥［11-13］。近年來DNA免疫也開始用于抗體制備，給藥途徑多為肌肉注射或者靜脈注射［14］。DNA 免疫多采用重組表達質粒作為免疫原，具有抗原便于制備獲得、免疫周期短、通過宿主細胞表達的抗原具有蛋白的天然結構，易于誘導機體產生針對蛋白構象性表位的單克隆抗體等優勢。在本研究中，采用jetPEI-Gal 作為免疫用佐劑。jetPEI 是目前常用的動物體內轉染試劑，本研究所用jetPEI-Gal 是連接了半乳糖的聚乙烯亞胺衍生物，能與DNA 形成陽離子復合物。該復合物可通過與肝細胞表面的去唾液酸糖蛋白受體特異性識別而被其大量攝取和表達。本研究雖然沒有檢測免疫小鼠體內的抗原表達水平，但質粒免疫2 次后獲得的高滴度抗體效價也可間接反映出用于免疫的DNA在小鼠體內得到了有效表達。

除DNA 需有效表達外，其表達蛋白的免疫源性與能否有效激活宿主機體的免疫反應也密切相關。人鼠間CLDN18.2 第一胞外區的約50 個氨基酸完全相同，理論上對小鼠不具有免疫原性，但由于成熟的正常小鼠不表達或低表達CLDN18.2，在質粒DNA 進入機體并獲得大量表達后，小鼠有可能將其視為異源蛋白而產生強烈的體液免疫反應。本研究成功獲得了15 株CLDN18.2 特異性的高親和力抗體，表明小鼠對DNA 免疫后的蛋白表達產生了良好的免疫反應。

本研究獲得的15 株單克隆抗體在細胞ELISA、免疫沉淀、流式檢測和免疫熒光實驗中均能特異性識別CLDN18.2，說明它們的結合部位均位于CLDN18.2的第一胞外區，故不與CLDN18.1形成交叉反應。在與CLDN18.2 第一胞外區的結合反應中，15 株單克隆抗體在與抗原的非變性實驗中，如細胞ELISA、免疫沉淀、流式檢測和免疫熒光實驗均可特異識別CLDN18.2，但均不能用于變性抗原的Western blot 檢測，表明它們識別的是CLDN18.2 第一胞外區的空間構象，而非肽鏈一級結構。在CLDN18.2 第一胞外區的50 余個氨基酸中含有4 個半胱氨酸（分別位于第4、25、30 和31 位），它們可以通過二硫鍵形成復雜的空間構象。與CLDN18.1存在差異的8 個氨基酸中（分別位于第2、10、15、18、20、29、38 和42 位），第15 位差異氨基酸在CLDN18.2 為丙氨酸，而在CLDN18.1 中為半胱氨酸，其連同第一胞外區的其他4 個半胱氨酸可能形成更為復雜的空間構象，造成CLDN18.2 與CLDN18.1 第一胞外區的較大構象差異。本研究獲得的15株抗體均與非變性蛋白反應，與變性蛋白不反應，說明它們識別的抗原表位是由CLDN18.2 胞外區肽鏈折疊后形成的某一特定空間構象。但要明確它們是否為識別同一構象或不同構象、是由多少位氨基酸組成的空間構象等問題，還需通過抗體競爭結合抑制實驗、第一胞外區氨基酸單點及多點突變等進行進一步確定。

本研究通過DNA 免疫成功獲得了15 株CLDN18.2 的特異性單克隆抗體。在后續研究中，課題組將評估所獲抗體對CLDN18.2高表達腫瘤的治療作用，并進一步探索其發揮作用的分子機制。