趙金剛,楊玉瑩
(長江大學,湖北 荊州 434023)
隨著規模化和集約化新養殖模式的推廣,水產養殖業發展迅速,然而由于存在養殖方式不合理以及環境污染等問題,造成養殖魚體脂過度沉積的現象越來越多(程漢良等,2006)。過多的脂肪沉積不僅會影響魚的品質,而且還會導致魚免疫機能受損,患病概率增加,從而造成較大的經濟損失。環境中多種污染物,包括有機錫均能夠干擾脂類代謝,引起體內脂肪增加,這些化合物在低濃度暴露時,通過干擾脂肪生成的關鍵核受體,導致脂肪堆積,而三丁基錫(TBT)是環境內分泌干擾物中對動物有致肥胖作用的一種代表性物質。有研究發現TBT 暴露能夠導致肝臟DNA 損傷,進而導致肝細胞凋亡,嚴重影響肝臟的功能(王云等,2007)。也有研究表明,從鱈魚肝臟提取的混合物能夠誘導斑馬魚體重增加,并干擾體脂調節(Lyche J L等,2011),表明環境內分泌污染物可能與魚脂肪過度沉積有關。TBT作為環境污染中環境內分泌干擾物質的代表,研究其對于脂類代謝的影響及其作用機制具有重要意義。因此,筆者選擇環境內分泌干擾物TBT,在環境水平下進行長時間暴露,以探究其與魚脂肪過度沉積的關系,為保護水生態環境和漁業資源提供理論依據。
(1)試驗動物。選用的斑馬魚為同一批次體形基本相近的雌魚,個體重為(0.25±0.07)克。每組隨機選取40尾雌魚,先在含60升清潔沙濾海水的水族箱中暫養15天,連續充氣增氧,再選取30尾活力好的個體進行成魚污染試驗。經測量魚體長、體重后分缸飼養,保持水溫在26~28℃,設置對照組和不同濃度梯度的試驗組。每缸9 升水,每天換水4.5升,添加TBT暴露液9微升。
斑馬魚分別于不同濃度TBT的水體中飼養,飼養水體每天更換1/2,并清除魚排泄物。早期幼魚用草履蟲投喂飼養,后期用豐年蟲投喂飼養。每天飼喂兩次,上午8 點、下午6 點各1次,每次適量喂食。
(2)試劑。TBT 純度≥95%,磷酸氫二鈉、磷酸二氫鉀、香蘭素、三油精、膽固醇試劑盒、甘油三酯試劑盒、PBS 緩沖溶液、MS-222 麻醉劑、磷酸—香蘭素。
(3)試驗儀器。電子天平、96 孔“U”形微量反應板、量筒、移液器(10、50、200、1 000 微升)、酶標板、比色皿、洗滌瓶、250毫升燒杯、容量瓶(250、1 000毫升)、膠頭滴管、試管、試管架,UV-300紫外分光光度計、酶標分析儀。
(4)溶液配置。①TBT 暴露液。先用無水乙醇配制成一定濃度的儲備液,避光于4℃保存,試驗前用無氯自來水分別配置成1、10、100 納克/升3種濃度的TBT 暴露液。對照組只加無水乙醇,無水乙醇的終濃度為1 微升/升。②中性甲醛配制。10毫升甲醛(37%~40%)中加入90毫升雙蒸水、4克磷酸二氫鈉、6.5克磷酸氫二鈉。③磷酸鹽緩沖液(PBS)。稱取8克氯化鈉、0.2克氯化鉀、3.63克磷酸氫二鈉和0.24克磷酸二氫鉀,先溶于800毫升雙蒸水,然后用鹽酸調pH 至7.4,雙蒸水定容至1 升。④4%多聚甲醛(PFA)。稱取40克PFA,置于三角燒瓶中,加入500~800毫升PBS,加熱至60℃左右,持續攪拌,使粉末完全溶解,滴加少許氫氧化鈉溶液使溶液清亮,最后補足0.1摩爾/升的PBS于1升,充分混勻。⑤磷酸—香蘭素。0.12克香蘭素加入20毫升水,充分溶解后用85%磷酸定容至100毫升。
(1)暴露試驗。培養期間采用自然光周期,溫度控制在26~28℃。雌斑馬魚分別置于不同濃度的TBT水體中培養。培養期間,每天夜里換1/4 體積的水體,重新添加TBT使各組濃度保持不變,對照組添加無水乙醇,無水乙醇的終濃度為1 微升/升。養殖40天后收集各組魚,用蒸餾水沖洗,除去殘留毒物。
(2)測量魚體長、體重。每組隨機抓取3尾魚,用適宜濃度的麻醉液進行麻醉。之后測量魚體長;用吸水紙吸干魚體表的水,再用電子天平測量體重,測量后記錄數據。
(3)斑馬魚的解剖。將麻醉過后的斑馬魚用大頭針固定在石蠟培養基上,注意不能傷害內臟,可以將大頭針插在斑馬魚頭部和尾部。未解剖的雌性斑馬魚須用冰塊冷凍保存。使用眼科剪沿魚體腹部剪開,用鑷子掀開腹部皮膚,暴露出腹腔,分離出肝臟和性腺,放入PBS溶液中保存。
(4)檢測總脂質、甘油三酯、膽固醇。將提取的組織用勻漿器研磨均勻,研磨液倒入小試管,用2∶1 的氯仿、甲醇洗滌勻漿管,研磨后可用2∶1 的氯仿、甲醇混合液進行組織勻漿,萃取脂質。萃取物中加入0.88%氯化鉀,靜置過夜。為防止試管溶液揮發,可用塑料保鮮膜覆蓋在試管頂部。經過靜置過夜的組織液,小心移除上層液相層,在下層的有機相層中加入氯仿、甲醇、水(3∶48∶47)洗滌、萃取,靜置一段時間。待溶液完全分層后,用移液器穿過上層液,直接抽取下層液體。將下層液抽取出來3等分,分別置于3支試管中,做好標記。最終的萃取物用氮吹儀在氮氣的保護下吹干,加入100微升雙蒸水,用于脂質的測定。
檢測總脂質:每個試驗樣本各取1支試管用于總脂質的測定。脂質的測定采用Tietz(1976)的方法。在每個待測的樣品中加入2毫升硫酸,沸水浴10分鐘,室溫水浴冷卻5分鐘;然后加入磷酸—香蘭素試劑,37℃水浴15分鐘,室溫水浴冷卻10分鐘;用雙蒸水調零,在UV300 紫外分光光度計540納米吸收波長處讀取光密度。以梯度稀釋的三油精(10~100微克)作為標準,繪制標準曲線,并計算脂質含量。
檢測甘油三酯:甘油三酯的測定采用甘油三酯測定試劑盒(酶偶聯比色法/單試劑型)取3 微升待測樣品,在每個待測的樣品中加入300微升檢測試劑,混勻,置37℃水浴5分鐘,以空白管校零,在酶標儀570 納米波長下比色讀取各管吸光光度值,計算甘油三酯含量。
總膽固醇的檢測:采用總膽固醇測定試劑盒(酶偶聯比色法/單試劑型)取3 微升待測樣品在酶標儀570納米波長下,利用終點法檢測各管的吸光光度值,計算總膽固醇的含量。
當TBT 濃度為1 納克/升和100 納克/升時,基本沒有引起肥滿度發生變化,當TBT 濃度為10 納克/升時引起雌性斑馬魚肥滿度升高,但差異不顯著。
當TBT 濃度為1 納克/升時,雌性斑馬魚總脂質含量差別不大,而TBT 濃度為10 納克/升和100 納克/升時,肝臟的總脂質顯著增加,表現出顯著性變化(P<0.05),分別是對照組的1.4 倍和2.67倍。與對照組相比,TBT暴露未使雌性斑馬魚肝臟中甘油三酯含量呈現顯著性變化,但隨著TBT濃度的升高,雌性斑馬魚肝臟中甘油三酯的含量逐漸上升。當TBT濃度為10納克/升和100納克/升時,雌性斑馬魚膽固醇含量有所降低,但差異不顯著。當TBT 濃度為1 納克/升時,雌性斑馬魚膽固醇含量顯著增加(P<0.05),為對照組的1.4倍。
通過比較雌性斑馬魚甘油三酯的含量,能更直觀地發現TBT 的誘導致肥作用。隨著TBT 濃度的增加,試驗組雌性斑馬魚甘油三酯含量隨之而增加。乙酰輔酶A 羧化酶(ACC)在哺乳動物脂肪酸合成和分解代謝中發揮著重要作用(lnagaki T,2007)。Murondoti A(2004)證實,ACC 在奶牛肝臟中脂肪酸的合成及氧化代謝起著關鍵作用,ACC的mRNA 表達水平對于研究奶牛酮病、脂肪肝等物質代謝障礙性疾病具有重要意義。ACC1 和ACC2 催化乙酰輔酶A 羧化至丙二酰輔酶A,丙二酰輔酶A 是脂肪酸合成的物質基礎,同時也是脂肪酸β 氧化的抑制劑。韓春春等(2006)研究證實,ACC1 主要調節脂肪酸的合成,在脂肪生成活躍的組織中表達,如肝臟、脂肪組織和乳腺。ACC2 主要調節脂肪酸的氧化,WonKeun(2005)也證明了只有ACC2產生的丙二酸單酰輔酶A水平的下降在脂肪酸氧化的下降中起關鍵作用。所以肝臟中ACC1 的特異性缺失能夠導致脂肪生成和甘油三酯積累的減少,但不會影響脂肪酸的氧化。SCD1 是單一不飽和脂肪酸合成的限速酶,由SCD1 合成的單一不飽和脂肪酸是關于各種脂類(如磷脂)、甘油三酯和膽固醇酯合成的主要底物。本試驗中,試驗組中甘油三酯的含量低于對照組中的原因可能是TBT對肝臟脂代謝中多種因子共同作用的結果。
通過比較各雌性斑馬魚組膽固醇含量,可以發現當TBT 濃度為1 納克/升時,膽固醇含量明顯升高,其他各試驗組與對照組相比沒有太大變化,表明在相對較低濃度TBT的情況下,能使膽固醇含量增加得更明顯。膽固醇在體內有著廣泛的生理作用,但當其過量時便會導致高膽固醇血癥,對機體產生不利影響,表明低濃度的TBT對于魚的生長有著更大的潛在危害性。試驗結果發現,環境水平TBT暴露魚體后,與對照組相比甘油三酯含量并沒有顯著增加,相反卻有所下降,而魚體總膽固醇含量卻顯著上升,特別是1 納克/升組的魚體。有研究表明TBT 是RXR/PPARγ 的異源二聚體受體的調節劑。RXR 有3種亞型,即RXRα、β、γ,在肝臟中富集的是RXRα 異構體。RXRα是一種獨一無二的核受體,在多個細胞通路中與其他核受體組成異源二聚體,肝臟在脂肪代謝中具有至關重要的作用,因此對脂代謝的調節也發生重要的影響(Kanayama T,2005)。而肝臟又是脂肪代謝的主要器官,因此環境水平的TBT暴露造成了總脂質含量的增加。肝臟中乙酰輔酶A羧化酶的特異性缺失能夠導致脂肪生成和甘油三酯積累的減少,但不會影響脂肪酸的氧化,而脂肪酸是脂類(如磷脂、甘油三酯和膽固醇酯)合成的主要底物,因此造成了膽固醇的增加。