豬傳染性胸膜肺炎的防控及凈化措施

宋映霞

蕉嶺縣動物衛生監督所，廣東 蕉嶺 514100

0 引言

豬傳染性胸膜肺炎（Porcine Contagious Pleuropneumonia，PCP）是一種由胸膜肺炎放線桿菌（APP）感染引起的一種接觸性、傳染性呼吸道疾病，主要臨床癥狀是發生出血性纖維素性、胸膜肺炎和纖維素性壞死性胸膜肺炎[1］。該病易與豬肺疫、豬支原體肺炎等疾病混淆，是目前規模化養豬場高發的呼吸道疾病之一。由于該病的病原具有較多的血清型，因而其治療難度通常高于其他疫病。通過深入調研，筆者發現豬傳染性胸膜肺炎的發病率和病死率都較高，其中最急性型的病死率最高。生豬感染該病后，不僅生產性能降低，飼養成本增加，還會導致機體的抵抗能力減弱，容易混合感染其他多種呼吸道疾病，增加治療難度，造成大批量生豬死亡，給生豬養殖業造成嚴重的經濟損失。因此，養殖戶在養殖過程中要做好豬傳染性胸膜肺炎的防控及凈化工作，為生豬養殖業穩定健康發展提供助力。

1 豬傳染性胸膜肺炎病原學分析

胸膜肺炎放線桿菌（APP）是在一種革蘭氏陰性球桿菌，菌體表面具有莢膜和纖毛，在外界環境中生存時間較短，使用化學消毒劑即可將其殺滅。當APP 與機體作用后，會形成多種血清型。根據細菌細胞壁外莢膜中莢膜多糖（CPS）成分的不同，可將APP 分成多個血清型，目前已發現的有15 個血清型，每個血清型的細菌毒力存在較大差異（細菌毒力越強，對機體的侵害越嚴重）。根據APP 生長是否需要輔酶I（NAD），可將其分為兩種生物型。其中，生物Ⅰ型（對NAD有依賴）包括1～12型和15型，細菌毒力強，可引起急性壞死性胸膜肺炎，致死率較高；生物Ⅱ型（不依賴NAD）包括13、14 型，細菌毒力較弱，可引起慢性壞死性胸膜肺炎，致死率較低。

2 豬傳染性胸膜肺炎流行病學分析

APP 是一種呼吸道寄生菌，主要寄生于感染豬的鼻腔、扁桃體、支氣管及肺部等部位，通過口腔或鼻腔分泌物的接觸及帶菌物品的接觸進行傳播，主要傳染源是病豬和帶菌豬。相關專業人士對國內大規模養豬場細菌性疾病的流行病學調查顯示，2012—2021 年APP的流行率為0.4%～2.8%，且有逐年上升的趨勢[2］。豬傳染性胸膜肺炎一年四季均可發生，多發于高溫高濕季節[3］。各個年齡段的豬均易感該病，其中2～4 月齡的豬為最易感豬群，育成豬和出欄豬染病后多為重癥病例，哺乳期仔豬因食用的母乳中含有母源抗體而感染率較低，同一豬群有可能會同時感染幾種不同血清型的APP。該病的發生與飼養管理、飼養環境等因素有關，在氣溫驟變、潮濕、通風不良、飼養密度過大、管理不善等情況下，豬只的發病率和病死率較高。

3 豬傳染性胸膜肺炎臨床癥狀

3.1 最急性型

最急性型豬傳染性胸膜肺炎具有發病突然、病程短、死亡快、致死率高等特點。該類型病豬的臨床癥狀為體溫迅速升高，最高可達41.5 ℃，精神萎靡，食欲不振，兩眼發呆，鼻、耳朵、四肢皮膚等部位發紺。在發病后期，病豬出現呼吸困難、呈犬坐姿勢、肛溫下降等癥狀。病豬死后，口、鼻排出大量帶血泡沫。從感染到死亡，病程在6 h左右。

3.2 急性型

急性型豬傳染性胸膜肺炎通常具有群發性、發病急等特點。該類型病豬的臨床癥狀為體溫迅速升高，可達41 ℃，食欲減退，精神萎靡等，還伴有呼吸系統癥狀（如呼吸困難、咳嗽等）。病豬的鼻、耳尖、四肢等部位皮膚常會發紺。發病后期，病豬會出現低頭張口呼吸、呈犬坐姿勢。瀕死時，病豬口、鼻通常會排出大量血色泡沫。如果治療不及時，病豬在1～2 d內死亡，也有耐過后康復或轉為慢性發病。

3.3 亞急性型

亞急性型豬傳染性胸膜肺炎是由急性型轉變而來，一般出現在急性期后，病程通常為15～20 d。該類型病豬的臨床癥狀為體溫正常或略微偏高，伴有程度不同的間歇性咳嗽，食欲不振，生長緩慢。

3.4 慢性型

慢性型豬傳染性胸膜肺炎通常沒有明顯癥狀，主要發生在亞急性癥狀消失但還未完全控制感染時，或輕型血清型菌株引起的感染。如果在感染該病時沒有受到其他病原微生物刺激，病豬可自行康復，病情較輕。

4 豬傳染性胸膜肺炎病理變化

豬傳染性胸膜肺炎的病變程度與豬只所感染的菌株毒力及機體的載菌量密切相關。該病的病理變化局限于胸腔，主要病變為肺炎和胸膜炎。

通過解剖發現，病死豬的胸腔出現不同程度的肺炎或胸膜炎。豬傳染性胸膜肺炎的病理變化主要表現為胸腔有渾濁積液；肺部病變區域呈紫紅色、明顯腫大，指壓有疑似橡膠樣彈性硬塊，感染的肺部界線明顯，常常會波及尖葉、心葉和部分膈葉，同時胸膜和肺漿膜表面分布彌漫性纖維性滲出物，與胸壁間發生粘連；氣管和支氣管內含有大量黏液，呈粉紅色泡沫狀；肝臟輕度腫大、充血，出現暗紅色瘀血斑；小腸空虛且滯氣；胃黏膜脫落，有明顯的潰瘍。

5 豬傳染性胸膜肺炎的實驗室診斷

5.1 病原學診斷

在豬傳染性胸膜炎的病原學診斷中，檢測人員應從病豬的肺臟、氣管、扁桃體或鼻腔采集檢測樣本。在采集樣品時，檢測人員應優先選取病死豬或有咳喘等癥狀的豬只。采集肺臟、氣管、扁桃體等部位的樣本時，為保證器官的完整性，工作人員應在病死豬充分放血后，打開胸腔、咽喉部，鈍性分離肺臟，在采取氣管部位樣本的同時取下扁桃體；在采集鼻腔處的樣本時，先清理鼻部明顯的污物，再用棉簽或植絨拭子伸入病豬鼻腔4～5 cm 處，待豬只打噴嚏后取出拭子，然后將其放入EP管。

采集樣品后，分離病原。檢測人員應先用乙醇對肺臟、氣管、扁桃體等樣品表面進行消毒處理，取其中一部分組織在巧克力瓊脂平板上劃線接種并培養，然后進行革蘭氏染色鏡檢。針對鼻腔樣品，檢測人員要按無菌操作標準進行操作，將拭子放在巧克力瓊脂平板上按壓涂抹，然后接種到血瓊脂平板上，以便觀察菌株的溶血性和“衛星現象”。用金黃色葡萄球菌劃線接種，置于5%二氧化碳的恒溫箱進行分離，恒溫箱中的溫度設置為37 ℃，隨后采用巧克力瓊脂平板進行傳代培養。培養1～2 d后，APP菌落形態呈露珠樣，其大小與靠近金黃色葡萄球菌菌落的距離成反比關系，呈現革蘭氏陰性小球桿菌。而繼代培養的APP 菌落呈多種形態，早期偶見絲狀。當檢測結果呈現革蘭氏陰性小球桿菌或多形態、血瓊脂平板上產生溶血現象、存在“衛星現象”、尿素酶試驗為陽性等4個特征時，即可確診為APP感染。

5.2 血清學診斷

在血清學診斷中，檢測人員通常采用ELISA 方法檢測豬胸膜肺炎放線桿菌（APP）的Apx I、Apx Ⅱ和Apx Ⅲ毒素抗體，采用商業化試劑盒Apx Ⅳ-ELISA進行豬胸膜肺炎放線桿菌Apx Ⅳ抗體檢測。用Apx IVELISA 進行檢測時，染病豬的Apx Ⅳ抗體為陽性，而滅活疫苗免疫豬的Apx Ⅳ抗體為陰性。因此，通過抗體檢測，可有效區分感染豬和滅活疫苗免疫豬。

6 豬傳染性胸膜肺炎的預防與治療

6.1 豬傳染性胸膜肺炎的預防措施

6.1.1 保持良好的舍內環境。養殖戶要及時清理豬舍內的污染物，保持干燥衛生；合理調節豬舍內的溫濕度，注意防寒保暖、降暑；適當通風，確保空氣清新，減少環境刺激。

6.1.2 合理確定養殖密度。養殖戶要根據豬場規模，在不影響養殖效益的前提下，合理確定養殖密度，仔豬0.3～0.4 m2/頭，育成豬0.6～0.7 m2/頭，出欄豬1.0～1.1 m2/頭。

6.1.3 建立嚴格消毒管理制度。胸膜肺炎放線桿菌對外界環境抵抗力差，養殖戶可定期采用多種消毒藥劑對欄舍、用具及周圍環境進行消毒，防止病菌傳播[4］。同時，養殖戶要對進入場內的人員、物品、用具、車輛等進行消毒，以減少環境病原菌數量，避免疫病傳播。

6.1.4 科學飼喂。嚴禁使用發霉變質的飼料，避免生豬產生免疫抑制，增強豬體抗病能力。在季節變化時，養殖戶可在飼料中添加適量保健藥物，預防疾病發生。

6.1.5 做好隔離防控。養殖戶發現感染豬后，應根據養豬場實際情況，將病豬隔離區設置在距離中心養殖區50 m 以外的位置，在隔離區周圍和頂部用遮陽網攔好，并做好消毒工作。

6.1.6 藥物防控。為加強防控效果，養殖戶還應采取藥物預防措施。養殖戶可在飼料中定期投放適量的土霉素、林肯霉素、泰樂菌素、利高霉素等高敏藥物，減少群發感染的情況。此外，養殖戶要做好豬喘氣病、豬偽狂犬、豬肺疫等有關疾病疫苗接種工作，防止豬感染后免疫系統遭到破壞，從而降低對APP的易感性。

6.2 豬傳染性胸膜肺炎治療措施

養殖戶要根據病情，采取相應的藥物治療措施，以縮短病程，強化治療效果。在感染初期，養殖戶可根據藥敏試驗結果及豬場藥物使用情況等，選用敏感的抗生素治療，如頭孢噻呋、恩諾沙星、氟苯尼等。

6.2.1 個體治療。養殖戶可根據藥敏試驗結果和豬場的實際情況進行治療，可按病豬體質量用頭孢噻呋鈉5 mg/kg 或蒽諾沙星5 mg/kg 或10%氟苯尼注射液0.2 mL/kg，肌內注射，每天1 次，連續用藥3～5 d。在藥物治療過程中，養殖戶要注意鎮咳、增強豬只免疫力。根據病情，養殖戶可使用一定劑量的地塞米松，肌內注射，每天2次，連續用藥3 d。

6.2.2 群體治療。發生群體感染，病例較多時，養殖戶可在每噸飼料中混入70%阿莫西林300 g+30%多西環素多西環素1 000 g+80%泰妙菌素120 g，或混入10%氟苯尼考400 g+30%多西環素1 000 g，連續飼喂7 d。對于食欲不振的豬只，養殖戶可在每噸飲用水中添加40%水溶性氟苯尼考200 g+40%林可霉素300 g+葡萄糖5 000 g，連續飼喂7 d，具有良好的治療效果。在病情康復期，養殖戶可在豬只飲用水中添加適量的維生素C，有助于病情康復。

7 豬傳染性胸膜肺炎的凈化措施

7.1 感染狀態普查

檢測人員可采取抽樣的方式調查豬場發生豬傳染性胸膜肺炎的情況，隨機抽取養豬場內一定數量的豬只進行病原學樣品和血清學樣品采集，將采集的樣品放入無菌EP 管中保存。采集的樣品必須在24 h 內檢測，未在24 h 內檢測的樣品需要放置在4 ℃環境下短期保存。檢測人員要根據養豬場疫病發生情況，確定具體凈化措施。

7.2 種豬場分類及凈化方案

通過豬群感染狀態普查，確定種豬場的疫病發生情況，按照感染程度將種豬場劃分為重度感染場、中度感染場、輕度感染場和陰性場。不同程度感染場的Apx Ⅳ抗體陽性率、APP陽性率、發病率和病死率情況如表1 所示。只有針對不同程度的感染場確定相應的凈化方案，如此才能有效提高凈化效果，具體如表2所示。

表1 不同程度感染場Apx IV抗體陽性率、APP陽性率、發病率和病死率情況

表2 不同程度感染場的凈化方案

7.3 強化免疫

用安全有效的多價滅活疫苗進行強化免疫，具有良好的免疫效果，可降低同種血清型菌株感染造成的死亡率。但由于APP有15種血清型，不同血清型菌株之間交叉免疫性較弱，因此可使用從當地分離的APP菌株制成的滅活苗對養豬場的豬傳染性胸膜肺炎進行防控[5］。基層獸醫站應根據不同階段的豬只疫苗接種后抗體的產生時間，以及當地流行病血清型及養豬場的實際情況，制訂科學的免疫程序，具體如表3 所示。需要注意的是，接種疫苗前后1 周內，禁止使用任何抗生素類藥物，以免影響免疫效果。在豬只接種疫苗后3 周進行Apx Ⅱ毒素抗體檢測，當抗體效價≥1∶1 280時，說明該豬只注射的疫苗具有保護效力。待豬群中90%以上的豬只產生合格抗體后，方可認為該群體免疫為合格。通過強化免疫，豬群應無臨床癥狀出現。

表3 免疫接種方案

7.4 檢測與淘汰

對于不同用途的豬只，檢測與淘汰的方式各有不同。針對商品豬，檢測周期為6 個月，隨機抽檢豬群中10%～20%的豬只，將檢測APP 抗體陽性的豬只進行隔離飼養，防止與陰性豬產生交叉感染。根據檢測結果，逐步淘汰感染嚴重或病程過長的陽性豬。同時，加強對陰性豬的檢測，以保證豬群健康。針對種豬群，當APP 抗體陽性率小于10%時，可直接淘汰抗體陽性種豬。針對后備種豬，一般在其5月齡和配種前1月采集血清樣品進行Apx Ⅳ抗體檢測，若檢測結果為陽性或出現兩次陽性結果，則作淘汰處理。

7.5 生物安全措施

7.5.1 合理選址。在建設養豬場時，必須嚴格執行《標準化規模養豬場建設規范》（NY/T 1568—2007）規定。場址應選擇在水源充足、供電可靠、交通便利的位置，與居民點、畜產品加工廠、公路、鐵路的距離必須滿足表4 規定[6］。此外，在選擇場址時，養殖戶還應充分考慮其地理位置，避免豬舍的進風口與出風口出現交叉，以免造成病菌交叉污染。

表4 豬場選址距離要求

7.5.2 嚴格選用生產模式。規模化養豬場應嚴格參照《集約化豬場防疫基本要求》（GB/T 17823—2009），堅持自繁自養、全進全出、早期隔離斷奶的生產模式，以此阻斷引種、轉場過程中豬群及批次之間的病毒傳播。

7.5.3 加強引種管理。生豬感染豬傳染性胸膜肺炎的很大原因是引種不規范引起。因此，為有效防控該病，養殖戶要加強引種管理。引種時，養殖戶應選擇無疫病的種豬場，確保所有種豬來源清晰可查。引進的種豬要先隔離飼喂3 周，檢疫合格6 月以上，方可混養。

7.5.4 防治有害生物。禁止在豬場內飼養犬、貓等其他動物。每6個月至少開展1次全方位徹底滅鼠。定期殺蟲、防蠅。

7.5.5 其他生物安全措施。為保障公豬的生物安全，在人工授精過程中，養殖戶應加強檢測與管理，防止精液受到病毒污染；加強各生產流程的管理，尤其是在生豬轉陽的階段，必須全部清空豬舍，全面消毒并空欄7 d后方可再次使用。此外，養殖戶還必須保持凈化工作的連續性，以保證凈化效果。

8 結語

豬傳染性胸膜肺炎是各年齡段的生豬都可能感染的一種呼吸道疾病。該病的致病菌外界抵抗力差，只需要養殖戶加強日常管理，便有降低感染的可能。因此，在生豬養殖過程中，養殖戶要保持良好的舍內環境、合理確定養殖密度、建立嚴格消毒管理制度、科學飼喂、做好隔離防控及藥物防控等飼養管理工作，并采取相應的凈化措施，以提高豬傳染性胸膜肺炎的防控和凈化效果，從而促進養豬業的健康發展。