郭瑛,趙文惠,李安林,馮倩倩,田莉,3*
(1.新疆醫(yī)科大學(xué)中醫(yī)學(xué)院,新疆烏魯木齊 830011;2.新疆醫(yī)科大學(xué)中心實驗室,新疆烏魯木齊 830011;3.新疆名醫(yī)名方與特色方劑學(xué)重點實驗室,新疆烏魯木齊 830017)
疏花薔薇(RosalaxaRetz.)屬于薔薇科灌木植物,在新疆阿爾泰山區(qū)、額敏河谷平原、準(zhǔn)噶爾山區(qū)以及沿天山一帶廣泛分布,其多生于海拔500~1 200 m 的平原荒漠、礫質(zhì)河灘地、灌叢、戈壁荒地、鹽堿地、干溝邊或河谷旁[1]。疏花薔薇耐干旱、耐瘠薄、耐寒、抗病蟲、抗逆性強,其株型優(yōu)美,凈化空氣能力強,同時花開繁密、色白清雅,現(xiàn)為新疆一種主要的園林景觀灌木[2]。疏花薔薇的花蕾或初開的花可以作為茶飲,具有清熱解毒、活血、止痛等功效,可用于治療感冒、發(fā)燒、延緩衰老和癲癇發(fā)作[3]。目前,疏花薔薇花作為新疆特色植物資源尚未被有效開發(fā)利用。
多酚類化合物廣泛分布于自然界植物中,包括酚酸類、黃酮類、花色苷類等芳環(huán)上連有多個酚羥基的化合物,其所含酚羥基易與自由基發(fā)生反應(yīng)具有抗氧化作用[4]。鞣花酸是廣泛存在于植物中的一種天然多酚成分,具有良好的抗氧化特性,被廣泛應(yīng)用于食品、醫(yī)藥領(lǐng)域[4?6]。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),疏花薔薇花含有鞣花酸、沒食子酸、兒茶素等多酚成分,其中鞣花酸含量最高,目前,對疏花薔薇花的化學(xué)成分及藥效研究尚無文獻報道。本研究采用單因素試驗結(jié)合響應(yīng)面法優(yōu)化疏花薔薇花總多酚的提取工藝,以疏花薔薇花總多酚、鞣花酸和浸膏得率的綜合評分為考察指標(biāo),并評價其抗氧化活性,以期為該資源的開發(fā)研究提供參考。
疏花薔薇花:2022年6月采自于烏魯木齊市雅瑪里克山,經(jīng)新疆醫(yī)科大學(xué)徐海燕教授鑒定為薔薇科(Rosaceae)植物疏花薔薇(RosalaxaRetz.)的花,置于陰涼通風(fēng)處陰干。
鞣花酸、沒食子酸(純度>98%):成都曼思特公司;維生素C:成都市科龍化工試劑廠;1,1?二苯基?2?三硝基苯肼(1,1?diphenyl?2?picrylhydrazyl radical,DPPH)、2,2′?聯(lián)氮?雙?3?乙基苯并噻唑啉?6?磺酸[2,2′?azino?bis(3?ethylbenzothiazoline?6?sulfonic acid),ABTS]:上海麥克林生化科技有限公司;鐵氰化鉀、三氯乙酸、三氯化鐵:天津市盛奧化學(xué)試劑有限公司;磷酸緩沖液:武漢賽維爾生物科技有限公司;無水乙醇:天津市致遠化學(xué)試劑有限公司;無水甲醇、甲酸(均為色譜純):中國湖北弗頓科學(xué)技術(shù)有限公司。除特殊說明外,均為分析純。
SL?200 高速多功能粉碎機:浙江省永康市松青五金廠;1200 高效液相色譜儀:美國安捷倫科技公司;722S可見分光光度計:上海菁華科技儀器有限公司;XS105電子天平:瑞士梅特勒?托利多儀器有限公司;KQ?5200DE數(shù)控超聲波清洗儀:昆山市超聲儀器有限公司。
1.3.1 總多酚含量測定
疏花薔薇花經(jīng)高速多功能粉碎機粉碎,過80 目篩,制得疏花薔薇花粉末。參照文獻[7?8]的方法測定疏花薔薇花粉末中總多酚的含量。
1.3.2 鞣花酸含量測定
1.3.2.1 對照品溶液的制備
精密稱取鞣花酸對照品10.00 mg,加入甲醇溶解,稀釋至濃度為1.00 mg/mL 的鞣花酸對照品儲備液。
1.3.2.2 鞣花酸的色譜條件
色譜柱為ZORBAX Eclipse Plus C18(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動相為甲醇(A)?0.1% 甲酸水(B),等度洗脫:0~10 min,50%A;檢測波長:254 nm;流速1.0 mL/min;柱溫30 ℃;進樣量為10μL。
1.3.2.3 線性考察
精密吸取1.3.2.1 項下鞣花酸對照品儲備液適量,用甲醇稀釋制成質(zhì)量濃度分別為5、10、25、50、75、100 μg/mL 的系列濃度溶液,按照1.3.2.2 項下條件測定,記錄峰面積。以鞣花酸的質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),峰面積為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.3.2.4 精密度、重復(fù)性和穩(wěn)定性考察
取1.3.2.3 項下溶液,按照1.3.2.2 項下條件重復(fù)測定6 次,記錄峰面積,并計算相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(relative standard deviation,RSD)值,考察儀器的精密度。
稱取疏花薔薇花粉末約2.000 0 g,平行6 份,按照1.3.2.2 項下條件測定,記錄峰面積,并計算RSD 值,考察樣品的重復(fù)性。
取疏花薔薇花供試品溶液,按照1.3.2.2 項下條件分別在0、4、8、12、16、20、24 h 測定,記錄峰面積,并計算RSD 值,考察鞣花酸的穩(wěn)定性。
1.3.2.5 加樣回收率
精密稱取疏花薔薇花約2.000 0 g,平行6 份,加入一定量的鞣花酸,按照1.3.2.2 項下條件測定,計算加樣回收率。
1.3.3 供試樣品提取方法考察
精密稱取疏花薔薇花粉末約2.000 0 g,平行9 份,分為3 組,3 份/組,考察浸漬、超聲和回流3 種提取方法的提取效率。以50% 乙醇為提取溶劑,料液比1∶20(g/mL),分別按照浸漬提取12 h、超聲輔助提取60 min、回流提取60 min,提取液均過濾,續(xù)濾液蒸干,稱重;再分別稱取適量浸膏,用50%乙醇溶液復(fù)溶,分別按1.3.1 和1.3.2.2 項下方法測定總多酚和鞣花酸的含量,按下列公式計算浸膏得率和綜合評分。
p=m/M×100
C=(x/X)×0.4×100+(y/Y)×0.4×100+(p/P)×0.2×100
式中:p為浸膏得率,%;m為浸膏質(zhì)量,g;M為藥材質(zhì)量,g;C為綜合評分;x為總多酚含量,mg/g;X為最大總多酚含量,mg/g;y為鞣花酸含量,mg/g;Y為最大鞣花酸含量,mg/g;P為最大浸膏得率,%。
1.3.4 樣品回流次數(shù)的選擇
精密稱取疏花薔薇花粉末約2.000 0 g,平行12份,分為4 組,3 份/組,以50% 乙醇為回流提取溶劑,料液比1∶20(g/mL),回流提取60 min,分別回流提取1、2、3、4 次,所得提取液以總多酚含量、鞣花酸含量及浸膏得率的綜合評分為考察指標(biāo),考察不同回流次數(shù)的提取效果。
1.3.5 疏花薔薇花總多酚提取工藝單因素試驗
以總多酚含量、鞣花酸含量及浸膏得率的綜合評分為指標(biāo),分別考察回流時間(30、60、90、120、150 min)、乙醇體積分?jǐn)?shù)(20%、35%、50%、65%、80%)、料液比[1∶15、1∶20、1∶25、1∶30、1∶35(g/mL)]對綜合評分的影響[9?11]。
1.3.6 響應(yīng)面優(yōu)化疏花薔薇花總多酚提取工藝試驗
根據(jù)單因素試驗結(jié)果,確定響應(yīng)面的自變量范圍。精密稱取疏花薔薇花粉末約2.000 0 g,采用Box?Benhnken 試驗設(shè)計,以響應(yīng)面試驗優(yōu)化疏花薔薇花總多酚提取工藝參數(shù)[12?13],因素水平見表1。

表1 試驗因素與水平Table 1 Factors and levels of experiment
1.3.7 工藝驗證
精密稱取疏花薔薇花粉末約2.000 0 g,平行3 份,按1.3.6 項下提取優(yōu)化工藝參數(shù)進行工藝驗證,按照1.3.3項下公式計算綜合評分,并與模型擬合值進行比較。
1.3.8 疏花薔薇花總多酚提取物的抗氧化活性研究
精密稱取疏花薔薇花總多酚提取物和維生素C 適量,以55%乙醇溶解,分別制得0.002 0、0.006 0、0.010 0、0.020 0、0.050 0、0.100 0、0.200 0 mg/mL 系列濃度供試品溶液。
1.3.8.1 DPPH 自由基清除能力
分別精密量取0.1 mg/mL DPPH 溶液1.0 mL 和系列濃度供試品溶液1.0 mL,混勻,作為樣品溶液;取55% 乙醇1.0 mL 與系列濃度供試品溶液1.0 mL,混勻,作為自身對照溶液;取無水乙醇1.0 mL 與DPPH溶液1.0 mL,混勻,作為空白對照溶液。樣品溶液、自身對照溶液、空白對照溶液均常溫避光反應(yīng)30 min,在517 nm 波長處測定,吸光度依次為A1、A2、A0,均重復(fù)測定3 次,取平均值,并以相同濃度的VC作為陽性對照,計算DPPH 自由基清除率(X,%)[14]和IC50值,公式如下。
X=[A0-(A1-A2)]/A0×100
1.3.8.2 ABTS+自由基清除能力
精密量取7 mmol/L 的ABTS 溶液10 mL 和2.45 mmol/L 的K2S2O8溶液10 mL,混勻,室溫避光條件放置12 h,制得ABTS 母液;再用無水乙醇稀釋ABTS 母液直至其在734 nm 波長處的吸光度為0.70±0.02,制得ABTS 工作液。分別精密量取ABTS 工作液2 mL 與系列濃度供試品溶液0.15 mL,混勻,作為樣品溶液;取55% 乙醇2 mL 與和系列濃度供試品溶液0.15 mL,混勻,作為自身對照溶液;取ABTS 工作液2 mL 與無水乙醇0.15 mL,混勻,作為空白對照溶液。樣品溶液、自身對照溶液、空白對照溶液均常溫避光反應(yīng)15 min,在734 nm 波長處測定,吸光度依次為A1、A2、A0,均重復(fù)測定3 次,取平均值,并以相同濃度的VC作為陽性對照,計算ABTS+自由基清除率(Y,%)[15]和IC50值,公式如下。
Y=[A0-(A1-A2)]/A0×100
1.3.8.3 還原能力
分別量取系列濃度供試品溶液1.0 mL,依次加入磷酸鹽緩沖液(0.2 mol/L,pH6.6)2.5 mL,1% 鐵氰化鉀溶液2.5 mL,混勻,50 ℃水浴20 min,加入10%三氯乙酸2.5 mL,5 000 r/min 離心5 min,取2.5 mL 上清液,依次加入3% 三氯化鐵溶液0.5 mL 和純水2.5 mL。在700 nm 波長處測定吸光度,重復(fù)測定3 次,取平均值,以相同濃度的VC溶液作為陽性對照,用吸光度表示還原力的大小[16]。
采用Design Expert 13.0.1 分析數(shù)據(jù),并對試驗結(jié)果進行多元回歸擬合。
2.1.1 線性關(guān)系考察
以沒食子酸對照品溶液濃度為橫坐標(biāo),以吸光度為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,回歸方程為y=110x+0.000 2(r=0.999 6),表明在1.5~7.5μg/mL 濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。
2.1.2 精密度、穩(wěn)定性、重復(fù)性試驗和加樣回收率試驗
精密度測定的RSD 為0.20%,表明儀器精密度良好;穩(wěn)定性RSD 為1.34%,表明供試品溶液在1 h 內(nèi)穩(wěn)定性良好;重復(fù)性RSD 為0.35%,表明方法的重復(fù)性良好;加樣回收率RSD 為2.07%,表明本檢測方法準(zhǔn)確。
2.2.1 專屬性考察
在建立的色譜條件下,鞣花酸與相鄰色譜峰分離度大于1.5,對稱因子在0.95~1.05,理論塔板數(shù)不低于5 000,色譜圖見圖1。
2.2.2 線性關(guān)系考察
以鞣花酸對照品溶液的質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),峰面積為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,回歸方程為y=14.92x-15.62(r=0.999 9),在5~100 μg/mL 范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。
2.2.3 精密度、穩(wěn)定性、重復(fù)性試驗
精密度RSD 為1.41%,結(jié)果表明儀器精密度良好;穩(wěn)定性RSD 為1.61%,表明供試品溶液在24 h 內(nèi)穩(wěn)定;重復(fù)性RSD 為3.48%,表明本法重復(fù)性符合要求。
2.2.4 加樣回收率試驗
鞣花酸加樣回收率的RSD 為2.32%,表明該檢測方法準(zhǔn)確,加樣回收率見表2。

表2 加樣回收率結(jié)果Table 2 Results of sample adding recovery
不同提取方法對提取綜合評分的影響見表3。

表3 提取方法測定Table 3 Extraction method determination
由表3 可知,回流提取法的綜合評分最高,因此采用回流提取法提取樣品。
不同回流次數(shù)對綜合評分的影響見表4。

表4 回流次數(shù)考察Table 4 Number of withdrawals examined
由表4 可知,為了綜合考慮能耗、試劑損耗以及工作時間,確定回流次數(shù)為2 次。
各因素提取疏花薔薇花總多酚的綜合評分見圖2。

圖2 各因素提取疏花薔薇花總多酚的綜合評分Fig.2 Comprehensive score of total polyphenol extraction effi?ciency of Rosa laxa Retz.flowers
由圖2 可知,當(dāng)回流時間為30~90 min 時,綜合評分隨時間延長而持續(xù)增加,繼續(xù)延長回流時間,綜合評分隨時間延長明顯下降,回流提取90 min 時綜合評分最高[17]。當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)從20%升至50%,綜合評分明顯上升,之后再增大乙醇體積分?jǐn)?shù),綜合評分下降,乙醇體積分?jǐn)?shù)為50% 時綜合評分最高[18]。當(dāng)料液比從1∶15(g/mL)增大到1∶20(g/mL)時,綜合評分隨之增加,之后再增大料液比,其綜合評分緩慢降低[19],確定料液比為1∶20(g/mL)時綜合評分最高。
2.6.1 響應(yīng)面試驗結(jié)果
疏花薔薇花提取工藝的響應(yīng)面試驗設(shè)計結(jié)果見表5。

表5 響應(yīng)面試驗設(shè)計與結(jié)果Table 5 Experimental design and results of response surface method
2.6.2 模型擬合及方差分析
采用Box?Benhnken 13.0.1 軟件擬合各因素,根據(jù)已確立的模型,繪制各影響因素對綜合評分影響的3D響應(yīng)面及等高線,如圖3所示。響應(yīng)面回歸模型方差分析見表6。


圖3 各因素交互作用對綜合評分影響的響應(yīng)面圖Fig.3 Response surface diagram of the influence of each element interaction on comprehensive score

表6 響應(yīng)面回歸模型方差分析Table 6 Variance analysis of response surface regression model
所得二項式回歸模型為綜合評分=96.09-1.79×A+8.11B+2.64C-3.34AB-2.76AC+3.11BC-9.98A2-13.26B2-0.987 0C2,由方差分析結(jié)果和擬合后的二次多項回歸方程系數(shù)顯著性檢驗可知,模型一次項B極顯著(P<0.01),C顯著(P<0.05),A不顯著;二次項A2、B2極顯著(P<0.01),C2不顯著;交互項AB、BC顯著(P<0.05),AC不顯著。從F值可知單因素的影響順序B>C>A,即乙醇體積分?jǐn)?shù)>回流時間>料液比。
2.6.3 響應(yīng)面優(yōu)化預(yù)測
利用Design Expert 13.0.1 軟件,優(yōu)選疏花薔薇花總多酚提取各影響因素的最佳取值為乙醇體積分?jǐn)?shù)55.189%、料液比1∶23.849(g/mL)、回流提取88.881 min。為便于實際操作,調(diào)整提取工藝參數(shù)為乙醇體積分?jǐn)?shù)55%,料液比1∶25(g/mL),回流提取2 次,90 min/次。
2.6.4 3批樣品工藝驗證
疏花薔薇花總多酚提取結(jié)果顯示,浸膏得率為(51.36±0.78)%,總多酚含量為(141.36±2.07)mg/g,鞣花酸含量為(13.46±0.14)mg/g,綜合得分為98.56,RSD值為1.05%,與預(yù)測值99.76 的平均偏差為1.20%,表明驗證結(jié)果與預(yù)測值吻合良好。
疏花薔薇花總多酚提取物對DPPH 自由基和ABTS+自由基的清除能力及還原能力如圖4所示。

圖4 疏花薔薇花總多酚提取物的抗氧化能力Fig.4 Antioxidant capacity of total polyphenol extracts from Rosa laxa Retz.flowers
由圖4A 可知,疏花薔薇花總多酚提取物濃度在0.002~0.05 mg/mL 時,隨著濃度增加,其對DPPH 自由基清除率明顯增加,呈較強的劑量依賴性[20?22];當(dāng)濃度超過0.05 mg/mL 時,清除率增長趨勢變緩。疏花薔薇花總多酚提取物的DPPH 自由基清除能力略低于VC,兩者的IC50值分別為0.02 mg/mL 和0.01 mg/mL。
由圖4B 可知,疏花薔薇花總多酚提取物濃度在0.002~0.100 mg/mL 時,隨著濃度增加,其對ABTS+自由基的清除率明顯增加,呈較強的劑量依賴性,當(dāng)濃度超過0.100 mg/mL 時,清除率增長趨勢變緩[16]。疏花薔薇花總多酚提取物的ABTS+自由基清除能力略低于VC,兩者的IC50值分別為0.03 mg/mL 和0.02 mg/mL。
由圖4C 可知,隨著濃度增加,疏花薔薇花總多酚提取物的還原能力不斷增強,并呈明顯的劑量依賴性[23]。相同濃度下(0.04~0.16 mg/mL),VC的還原能力明顯高于疏花薔薇花總多酚提取物。
綜上所述,疏花薔薇花總多酚提取物的抗氧化能力存在明顯的劑量關(guān)系,與VC相比,具有較強的抗氧化活性。
本研究在單因素試驗的基礎(chǔ)上,采用響應(yīng)面法優(yōu)化疏花薔薇花總多酚和鞣花酸的提取工藝條件,最終確定疏花薔薇花總多酚的最佳提取工藝參數(shù)為回流提取2 次、每次90 min、乙醇體積分?jǐn)?shù)為55%、料液比為1∶25(g/mL),同時在最優(yōu)工藝的下進行了3 次工藝驗證,浸膏得率為(51.36±0.78)%、總多酚含量為(141.36±2.07)mg/g、鞣花酸含量為(13.46±0.14)mg/g,綜合評分為為98.56。疏花薔薇花對DPPH 自由基和ABTS+自由基清除率最高值分別為92.06% 和98.65%,還原能力較強。結(jié)果表明,疏花薔薇花具有較好的體外抗氧化活性,具有重要的食用價值。