藜麥麩皮黃酒和普通黃酒的品質比較

姜學敏，張 虹,2，高 慧，蔡雨情，趙 雷, ，薛 鵬,2,

（1.濰坊醫學院公共衛生學院，山東濰坊 261053；2.濰坊醫學院公共衛生檢測檢驗中心，山東濰坊 261053）

黃酒與葡萄酒、啤酒并稱世界三大古釀造酒[1]。黃酒是用糧食為原料加酒曲釀制而成。酒曲主要分為米曲和麥曲，其中麥曲包括生麥曲和熟麥曲。長久以來，中國南方地區的黃酒多以當地盛產的稻米為原料，加以米曲或麥曲釀制而成，尤以紹興地區的黃酒最為出名。而中國北方地區的黃酒多以黍米、高粱等谷物為原料，加以麥曲釀制而成，其中山東地區使用陳伏曲釀造的即墨老酒以其“紅褐透明、微苦焦香、后味深長、盈盅不溢”的獨特風格而聞名[2]。陳伏曲是選用優質小麥在三伏天自然發酵而成的生麥曲，它也常為中醫所用，被譽為“神曲”[3]。不同于葡萄酒和啤酒，我國將黃酒應用于中藥由來已久，《長沙藥解》中就提到黃酒具有“辛溫升發，溫血脈而消寒澀”之功效，尤其適于婦女和老年人飲用。

黃酒中除了含有豐富的營養物質，還含有許多活性成分，如多肽、多糖、有機酸、多酚等[4-7]。另外，黃酒余韻悠長的風味特點來自于酒體中豐富的揮發性風味物質。研究發現大多數的風味來源于黃酒中的醇類物質和酯類物質，例如苯乙醇、異戊醇、異丁醇、乙酸苯乙酯等[8-10]。除此之外，劉少璞等[11]采用全二維氣相色譜-飛行時間質譜技術檢測到黃酒中也含有揮發性酸類物質，其含量占總揮發性物質總量的6.0%。總體來說，大多數研究集中在揮發性風味物質的檢測上，但是對于非揮發性的物質檢測報道較少。在釀酒原材料的選擇上，基本以糧食的籽粒為主，包括糯米、小麥、高粱等，也有學者采用藜麥籽粒為原料進行發酵，得到風味口感較好的藜麥黃酒以及藜麥啤酒[12-13]；另外，黃月等[14]采用青稞麩皮作為原材料進行釀酒，結果表明青稞麩皮的加入對黃酒風味的形成有積極意義。但由于麩皮常被用來當作飼料，所以對于麩皮釀酒的研究少之又少，更沒有利用藜麥麩皮釀酒的先例。而研究表明，藜麥麩皮富含多種營養成分以及植物化學物質[15-16]，包括黃酮[17]、皂苷[18-19]等，而這些物質具有良好的生物活性[20-23]。如果可以將其引入到黃酒當中，不僅會增加黃酒的營養價值，也能提高藜麥麩皮的利用率。

目前來說，利用藜麥制成的產品主要包括藜麥啤酒、藜麥面包、藜麥植物蛋白飲料、藜麥功能性酸奶[24-26]等，而對于利用藜麥麩皮制成的產品卻始終處于起步階段。因此，為了填補藜麥麩皮黃酒產業的空白，也為了提升藜麥麩皮的實用性和經濟性，本研究將以自制陳伏曲作為發酵曲，用高梁和豌豆作為原料，藜麥麩皮作為輔料釀造黃酒。采用液相色譜-質譜聯用技術（High-Performance Liquid Chromatography-Mass Spectrometer，HPLC-MS）和氣相色譜-質譜聯用技術（Gas Chromatography-Mass Spectrometer，GC-MS）對普通黃酒以及藜麥麩皮黃酒中的非揮發性化合物和揮發性風味物質進行分析比較，測定兩種黃酒的抗氧化活性，探究加入藜麥麩皮對黃酒風味、潛在活性的影響，也為高值化利用藜麥麩皮提供實踐及理論依據。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

藜麥麩皮 內蒙古益稷生物科技有限公司；高粱、豌豆 市售；陳伏曲 自制，于夏季伏天，取用普通小麥，將其碾碎，加水拌濕，制成約200 g 的圓餅狀曲塊，用特殊草葉包裹，置于麥稈中保存約1 個月，期間溫度保持在35 ℃，濕度70%，即成陳伏曲；碳酸氫鈉、氯化鈉、三氯乙酸、鐵氰化鉀、磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉、三氯化鐵、氯化亞鐵、維生素C、硫酸亞鐵、水楊酸、過氧化氫均為分析純，無水乙醇、無水甲醇、乙腈均為色譜純 國藥集團化學試劑有限公司；酪氨酸酶（ACT=25 KU/mg）上海麥克林生化科技有限公司；左旋多巴（L-Dopa）Sigma 公司；酒樣標準品 滕州中科譜分析儀器有限公司；實驗中的用水未經特殊說明均為超純水。

Shimadzu GC 2030 氣相色譜儀、Shimadzu GCMS TQ8050NX 氣相色譜質譜儀 日本島津公司；Ulti-MateTM3000 液相色譜質譜聯用儀 美國Thermo Fisher Scientific 公司；Agilent GTA 120 原子吸收分光光度計 美國安捷倫科技公司；SpectraMax M2 多功能酶標儀 美谷分子儀器（上海）有限公司；PALLcascade 超純水制備機 濟南東岱科學器材有限公司；HH-4 型數顯恒溫水浴鍋 常州國華電器有限公司。

1.2 實驗方法

1.2.1 藜麥麩皮黃酒釀造工藝流程及技術要點 藜麥麩皮黃酒釀造工藝流程見圖1。將高粱用等體積的2 g/mL 碳酸氫鈉水溶液室溫密封浸泡48 h 去除種皮中大部分單寧以減少苦澀味，75 ℃下以2 倍體積水浸泡24 h。同時取等質量豌豆，2 倍體積水浸泡24 h，隨后將兩者混合，加入2 倍體積水，600 W加熱至100 ℃后轉小火300 W 煮至完全糊化，呈糜狀，室溫冷卻至65 ℃備用。將陳伏曲塊稍加焙炒出曲香后研成粉末，與煮糜后的原料和高溫滅菌后的藜麥麩皮混合攪拌均勻，藜麥麩皮的添加量為5%（w/w），同時以未加藜麥麩皮的作為對照，陳伏曲粉末的加入量為0.5%（w/w）。在30 ℃，濕度為70%的條件下主發酵7 d，28 ℃后發酵5 d。發酵結束后，在4 ℃條件下，8000 r/min 離心15 min，分離出酒糟，獲得的上清液即為黃酒原液。

圖1 黃酒釀造工藝流程圖Fig.1 Flow chart of Huangjiu brewing process

1.2.2 實驗分組 利用高粱與豌豆發酵的普通黃酒記為SP，利用高粱、豌豆與藜麥麩皮發酵的藜麥麩皮黃酒記為SPQ，每組設置三個平行樣品，分別記為SP1、SP2、SP3 和SPQ1、SPQ2、SPQ3。

1.2.3 黃酒的理化指標及可能污染物測定

1.2.3.1 總糖 按照國標GB/T 13662-2018《黃酒》中的方法測定。

1.2.3.2 可溶性固形物 按照國標GB/T 13662-2018《黃酒》中的105 ℃恒重法測定。總固形物含量減去總糖含量即為可溶性固形物的含量。

1.2.3.3 酒精度 按照國標GB 5009.225-2016《酒中乙醇濃度的測定》中的氣相色譜法進行測定。

1.2.3.4 總皂苷 色譜條件[27]：C18色譜柱（YMC ODS-Pack，4.6 mm×250 mm，5 μm），柱溫：25 ℃；檢測波長：202 nm；流動相A：超純水；流動相B：乙腈；流速：1.0 mL/min；梯度洗脫（流動相B）：0.01 min 10%；5 min 10%，10 min 15%，15 min 20%，25 min 22%，35 min 28%，45 min 35%，50 min 40%，55 min 45%，60 min 60%，65 min 85%，70 min 10%。

首先，將齊墩果酸型皂苷標準品精確配制成不同濃度的溶液，分別過0.45 μm 濾膜后進樣20 μL 于高效液相色譜中，以標準品濃度X（μg/mL）為橫坐標，峰面積Y 為縱坐標繪制標準曲線，得到標準曲線回歸方程為Y=4992.7321X+848412.1171（R2=0.9998）。然后，吸取200 μL 酒樣，加入800 μL 乙醇充分混勻，3000 r/min 離心15 min，將上清液過0.45 μm濾膜，準確進樣20 μL，將出峰面積代入標準曲線回歸方程計算總皂苷含量[27]。

1.2.3.5 總酚酸 參照Xiao 等[28]的研究方法稍作改動后測定。準確稱取10 mg 沒食子酸對照品配制成不同濃度的對照液。各取2 mL 標準液，準確加入0.5 mL 福林酚試劑，搖勻后再加入2 mL10%的碳酸鈉溶液，定容至10 mL，75 ℃水浴10 min，冷卻至室溫后750 nm 下測定吸光度值，制作標準曲線。取2 mL 酒樣按照上述方法進行吸光度值的測定，利用標準曲線計算總酚酸的含量。

1.2.3.6 重金屬離子 按照國標GB 2762-2017《食品中污染物限量》中石墨爐原子吸收光譜法進行測定。

1.2.3.7 黃曲霉毒素B1 根據國標GB 5009.22-2016《食品中黃曲霉毒素B 族和G 族的測定》進行測定。

1.2.4 黃酒中的非揮發性有機化合物測定 樣品處理：取300 μL 黃酒與700 μL 乙腈混勻，然后4 ℃，12000 r/min 離心15 min，取上清液用超純水稀釋10 倍，過0.45 μm 濾膜，于液相小瓶中備用。

色譜柱條件[29]：Waters Acquity UPLC BEH Amide 柱（2.1 mm×100 mm，1.7 μm）；柱溫：30 ℃；進樣量：20 μL；流動相A：0.1%乙酸銨水溶液；流動相B：乙腈；梯度洗脫（流動相B）：0～5 min 1%，5～15 min 1%～40%，15～25 min 40%～1%，25～30 min 1%。

質譜條件[30]：電噴霧離子源（ESI）；離子源電壓：3.2 kV；載氣體積流量：40 L/min；離子源溫度：320℃；裂解電壓：300 V；數據采集范圍：100～1500 m/z；采用Full MS-ddMS 模式在正負離子模式下掃描。

1.2.5 黃酒中的揮發性物質測定 直接進樣樣品處理：取1 mL 酒樣，加入2 mL 乙醇，然后4 ℃，12000 r/min 離心15 min，上清液過0.45 μm 濾膜，放置于20 mL 氣相小瓶中備用，進樣量為4 μL。頂空進樣樣品處理：取1 mL 酒樣，加入0.5 g 氯化鈉，放置于20 mL 氣相小瓶中備用，進樣量為1000 μL。

根據王洪燕等[31]的方法確定色譜柱條件為CPWax 57 CB 毛細管柱（50 mm×0.25 mm，0.2 μm）；進樣口溫度：190 ℃；分流比：19:1；柱溫：38 ℃；載氣：99.999%氦氣；色譜柱流量：2 mL/min；程序升溫：38 ℃保持3 min，4 ℃/min 升至46 ℃，8 ℃/min 升至70 ℃，10 ℃/min 升 至150 ℃，15 ℃/min 升 至190 ℃保持10 min，10 ℃/min 升至200 ℃保持2 min。質譜條件為電子電離源；離子源溫度：200 ℃；接口溫度：195 ℃；溶劑延遲：3 min；采用Q3 Scan掃描方式。

定量方法：采用峰面積歸一化法計算揮發性物質的相對含量。采用外標法進行測定，將白酒標準樣品（30 種白酒混標）用20%的乙醇溶液稀釋100 倍，取2 mL 于氣相小瓶中，按照上述直接進樣方法進行測定，以標準樣品中測得物質的峰面積為標準計算酒樣當中對應物質的含量。

1.2.6 黃酒的抗氧化活性分析 將制得的兩種黃酒用超純水稀釋成0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL/mL 后，依次按照以下5 種方法進行測定。

1.2.6.1 鐵氰化鉀還原力實驗 參照汪江波等[32]的方法進行測定并稍作改動。取上述濃度的樣品溶液各0.1 mL，加入0.5 mL PBS 緩沖液和0.5 mL 1%的鐵氰化鉀水溶液，搖勻，50 ℃下水浴20 min，加0.5 mL 10%的三氯乙酸，3000 r/min 條件離心10 min，取0.5 mL 上清液于比色管中，加入0.5 mL 超純水和0.1 mL 0.1%的三氯化鐵水溶液，混勻后靜置10 min，700 nm 下測定吸光度值。

1.2.6.2 羥自由基清除實驗 按照林冰潔等[33]的方法進行測定。

1.2.6.3 DPPH 自由基清除實驗 按照蘇龍等[34]的方法進行測定。

1.2.6.4 Fe2+螯合實驗 按照Decker 等[35]與趙文婷[36]的方法進行測定。

1.2.6.5 酪氨酸酶抑制實驗 按照表1 配制反應體系，參照相關文獻[27]進行測定，每個樣品做三個平行。A～D 代表不同實驗組下的吸光度值，酪氨酸酶抑制率的計算公式如下：

表1 酪氨酸酶抑制實驗反應體系Table 1 Reaction system of tyrosinase inhibition experiments

1.3 數據處理

2 結果與分析

2.1 黃酒的理化指標及可能污染物測定

藜麥麩皮黃酒（SPQ）和普通黃酒（SP）的理化指標如表2 所示，SPQ 中皂苷和總酚酸含量明顯優于SP（P＜0.05），這是因為藜麥麩皮本身就含有一定量的皂苷和酚酸[15]，除此之外其余理化指標均無差異。按照理化指標進行劃分，兩種黃酒均屬于傳統半干型黃酒。重金屬離子檢測方面選取了食品中較為常見的鉛、鉻、砷、汞，在兩種黃酒中僅檢測到鉛（普通黃酒的鉛離子含量為1.9×10-2mg/kg，藜麥麩皮黃酒中鉛離子含量為1.3×10-2mg/kg）且兩種酒樣中鉛離子含量也均小于國標限量（0.5 mg/kg），這可能是高粱、豌豆和藜麥在生長過程中吸收了來自土壤、大氣中的鉛所致，兩種黃酒中也均未檢測到黃曲霉毒素B1。

表2 黃酒理化指標Table 2 Physicochemical indexes of Huangjiu

2.2 黃酒中的非揮發性有機化合物差異分析

根據HPLC-MS 分析獲得的兩種黃酒中的非揮發性有機化合物制作的主成分分析散點圖如圖2a所示，該圖反應樣本之間的差異程度，樣本之間聚合度越高說明樣本相似性越高，反之，表明樣本之間差異性越高。根據實驗結果，第一主成分（PCA1）和第二主成分（PCA2）的貢獻率分別為73.92%和10.34%，代表性較高。對數據進行中心化、歸一化處理后發現兩種黃酒對應的散點在組內呈現相互聚集的情況，說明組內重復性較好，而組間則有較好的區分度，說明兩種黃酒中的化合物差異性較大，這可能是由釀酒輔料藜麥麩皮的加入引起的。火山圖的橫坐標（log2（FC））反應化合物在兩個分組之間差異倍數，其絕對值越大，差異越大，紅色代表差異上調，綠色代表差異下調。由圖2b 所示，差異化合物共計48 種，其中上調增加23 種，下調減少25 種。其中log2（FC）＞2 的化合物共計12 種，1＜log2（FC）＜2 的化合物有11 種；log2（FC）＜-2 的化合物共計19 種，-2＜log2（FC）＜-1 的化合物共6 種。縱坐標-lg（P-value）反應化合物在兩種黃酒之間差異的顯著性，P值越小，代表差異越顯著，對應的-lg 值就越大，圖中縱坐標數值在1.3 以上的所有紅色點和綠色點代表的化合物在兩種黃酒中都具有明顯差異。綜上所述，在火山圖的左上角和右上角的點分別代表差異非常顯著的下調差異化合物和上調差異化合物。

圖2 兩種黃酒化合物的主成分分析散點圖和差異化合物火山圖Fig.2 Principal component analysis scatter plot and volcano plot of different compounds in two kinds of Huangjiu

在利用HPLC-MS 對黃酒中的非揮發性有機化合物進行檢測分析時，使用了親水的氨基柱，分離得到48 種非揮發性有機化合物，根據非揮發性有機化合物含量繪制了熱點分析圖并進行聚類樹狀分析如圖3，該圖可以直觀反映非揮發性有機化合物在兩種黃酒之間的相對含量差異，顏色越紅代表對應的非揮發性有機化合物在此樣本中的含量越高。上軸樹狀圖是對兩種黃酒的聚類分析，左側SP1、SP2、SP3 被聚類為一組（普通黃酒），右側SPQ1、SPQ2、SPQ3被聚類為一組（藜麥麩皮黃酒），這說明兩種黃酒三個平行樣品的相似程度很高。左軸樹狀圖是對差異化合物的聚類分析，兩種黃酒的差異有機化合物主要被聚類為5 個組，由數據可視化顏色可知，第1 組和第4 組在兩種黃酒中具有較好的區分度，第1 組化合物在SPQ 中的含量較低，其中N，N-二甲基-6-嘌呤胺的含量最低，第4 組化合物在SPQ 中的含量較高，其中L-蘇氨酸二氫鞘氨醇的含量最高。

圖3 兩種黃酒差異化合物聚類分析熱點圖Fig.3 Cluster analysis hotspot map of different compounds in two kinds of Huangjiu

在48 種非揮發性差異化合物當中，數量最多的為醇類和酰胺類物質，均為10 種，其次為酸類物質4 種以及糖類物質2 種，以log2（FC）值和化合物生理功能等條件為依據，從48 種差異化合物中選取了21 種作為代表，如表3 所示，在藜麥麩皮黃酒中的含量高于普通黃酒的物質有14 種，包括L-亮氨酸、L-蘇氨酸二氫鞘氨醇、香草醛、甜菜堿、5-氨基水楊酸等。其中，L-亮氨酸作為一種人體必需氨基酸，可以為機體提供能量，在調節蛋白質代謝，修復肌肉以及降低血糖等方面也有一定作用[37]。L-蘇氨酸二氫鞘氨醇是一種PKC-α選擇性抑制劑，具有抗腫瘤活性[38]。甜菜堿是一種具有維持細胞滲透壓、轉甲基、調節脂肪代謝等生理功能的活性物質[39]。5-氨基水楊酸可以治療輕度、中度潰瘍性結腸炎[40]。香草醛是一種特殊風味物質[41]，具有香莢蘭豆香氣及濃郁的奶香，能起到增香和定香的作用。普通黃酒中含量高于藜麥麩皮黃酒的物質共計6 種，以糖類物質為主，相比于普通黃酒，藜麥麩皮黃酒中D-（+）-葡萄糖和棉子糖含量顯著降低，其原因可能是加入藜麥麩皮促進了發酵過程中微生物對糖類物質的利用[42]，而糖類物質含量的降低也是造成藜麥麩皮黃酒酒精度低于普通黃酒的重要原因，同時，糖類物質含量的降低也會影響高級醇的代謝途徑，使高級醇含量降低。研究表明，適量的高級醇可以提高酒的品質，使酒體更加醇厚豐富，而過量的高級醇會有較強的致醉性和有害性[43]。由此可見，加入藜麥麩皮可使發酵后的黃酒擁有更好風味的同時也兼具一定的生物活性，同時飲用藜麥麩皮黃酒相比于普通黃酒更有利于人體健康。

表3 藜麥麩皮黃酒與正常黃酒差異化合物（局部）Table 3 Different compounds of quinoa husks Huangjiu and ordinary Huangjiu (portion)

2.3 黃酒中的揮發性物質

采用GC-MS 技術分別運用頂空進樣和直接進樣兩種方式檢測兩種黃酒中的揮發性物質，結果如表4～表5 以及圖4 所示，利用直接進樣共測得12種物質，藜麥麩皮黃酒中有12 種，普通黃酒中有11 種，其中正丁醇只存在于藜麥麩皮黃酒中，其相對含量占比為10.05%，利用外標法測得正丁醇的含量為7.40 μg/mL。除此之外，標定出的物質還包括甲酸丁酯（SP 和SPQ 中含量分別為5.10、9.00 μg/mL）、乙酸（含量分別為4.40、4.50 μg/mL）、丁酸（含量分別為10.80、9.50 μg/mL）。通過各物質在氣相色譜當中的峰面積來進行比較發現，在兩者共同擁有11 種物質中，甲酸丁酯在藜麥麩皮黃酒中的含量顯著高于普通黃酒（P＜0.05），另外10 種物質在兩種黃酒中均無統計學差異（P＞0.05）。直接進樣法測得的12 種物質中具有特殊風味的物質有3 種，分別是甲酸丁酯（4 號峰，占比分別為6.45%與11.31%），呈梅子香氣和甜味。丁酸（14 號峰，占比分別為17.96%與15.14%），呈強烈的奶油和干酪香氣。麥芽酚（17 號峰，占比分別為2.40%與1.95%），有似焦香奶油糖的特殊香氣，稀溶液呈草莓香味。

表4 藜麥麩皮黃酒和普通黃酒中揮發性物質的相對含量百分比Table 4 Relative contents of volatile substances in quinoa husks Huangjiu and ordinary Huangjiu

表5 藜麥麩皮黃酒和普通黃酒中部分揮發性物質直接進樣定量結果Table 5 Quantitative results of some volatile substances in quinoa husks Huangjiu and ordinary Huangjiu

圖4 黃酒揮發性物質氣相色譜圖Fig.4 Gas chromatograms of volatile substances of Huangjiu

頂空進樣共測得12 種物質，藜麥麩皮黃酒中有12 種，普通黃酒中有11 種，其中只存在于藜麥麩皮黃酒中的為異戊醇，其相對含量占比為0.07%，異戊醇屬于高級醇，它少量存在于藜麥麩皮黃酒中可以使酒體更加醇厚綿密，但過量的異戊醇可以使黃酒產生不良風味如汗臭味以及腐敗味。通過各物質在氣相色譜當中的峰面積來進行比較發現，在兩者共同擁有11 種物質中，異丙醇、乙酸丁酯、甲酸丁酯、丁酸丁酯在藜麥麩皮黃酒中的含量顯著高于普通黃酒（P＜0.05），另外7 種物質在兩種黃酒中均無統計學差異（P＞0.05）。頂空進樣法測得的12 種物質中具有特殊風味的物質有8 種，分別是丙酮（1 號峰，占比分別為4.37%與11.59%），呈薄荷似香味。異丙醇（2 號峰，占比分別為4.51%與19.99%），屬于高級醇的一種，具有類似乙醇氣味，可增強酒的風味口感。乙酸丁酯（3 號峰，占比分別為0.53%與1.13%），呈強烈香蕉香味。甲酸丁酯（4 號峰，占比分別為53.91%與53.14%），呈梅子香氣和甜味。乳酸丁酯（11 號峰，占比分別為0.35%與0.36%），呈甜奶油香氣和牛奶香味。苯甲醇（16 號峰，占比分別為1.27%與0.50%），呈微弱茉莉花香氣。另外還有乙酸（10 號峰，占比分別為2.50%與2.49%）和丁酸（14 號峰，占比分別為24.46%與12.57%）。氣相結果表明，藜麥麩皮的加入對黃酒中某些揮發性物質的相對含量影響較大，尤其是一些高級醇和脂類物質，其存在可能會改變黃酒的風味。

由于定量分析是以酒樣當中的物質為基礎，在利用直接進樣和頂空進樣的外標法進行定量分析時發現，采用直接進樣的方法可以更直接的得到各物質的含量，方便快捷，適用于小批量樣品的分析，而利用頂空進樣的方法還需要測定出揮發性物質在氣體和液體中平衡時的比值，換算成在酒樣當中的具體含量，容易產生誤差，所以本研究采用直接進樣方法對黃酒中的揮發性物質進行標定。衛春會等[44]的研究中使用頂空固相微萃取-氣相色譜質譜聯用技術分析酒中的香氣成分，效果較好。后續研究中會采用此方法進一部研究藜麥麩皮黃酒中的揮發性風味物質。

2.4 黃酒的抗氧化活性

2.4.1 鐵氰化鉀還原能力 由圖5A 可知，兩種黃酒的還原力表現出一定的濃度依賴性，均隨著濃度的升高而增大，但SP 和SPQ 原液的還原力明顯低于400 μg/mL VC。經計算，SP 與SPQ 對于鐵氰化鉀還原能力的IC50值分別為0.36 和0.41 mL/mL，SP 的鐵氰化鉀還原能力要強于SPQ，說明釀酒時加入藜麥麩皮并不能提高酒樣的鐵氰化鉀還原能力。VC在100～400 μg/mL 之間呈良好的線性關系（Y=0.0054X+0.4095，R2=0.9937），經計算SP 和SPQ 原液的還原力分別相當于142.13 μg/mL VC和119.54 μg/mL VC。與顧逸菲等[45]的研究相比，藜麥麩皮黃酒的還原力優于2000 μg/mL 的發酵型枳椇子黃酒（VC當量為48.39 μg/mL）。

圖5 黃酒的抗氧化活性測定Fig.5 Determination of antioxidant activity of Huangjiu

2.4.2 羥自由基清除能力 由圖5B 可知，SP 在濃度為0.6、0.8 和1.0 mL/mL 時對羥自由基的清除率較高，SPQ 在濃度為0.8 和1.0 mL/mL 時對羥自由基的清除率較高。經計算，SP 與SPQ 對于羥自由基清除的IC50值分別為0.67 和0.79 mL/mL，SP 對于羥自由基的清除率要強于SPQ，說明釀酒時加入藜麥麩皮并不能提高酒樣對于羥自由基的清除能力。與其他類型黃酒相比，喬曉月等[46]釀造的白藜蘆醇丹陽黃酒對于羥自由基清除的IC50值為0.80 mL/mL，說明藜麥麩皮黃酒對于羥自由基的清除能力和白藜蘆醇丹陽黃酒幾乎相同。謝佳藝[47]釀造的香菇小米黃酒在濃度為1.0 mL/mL 時對于羥自由基的清除率為78.83%，明顯要高于SP、SPQ 對于羥自由基的清除率（P＜0.05），推測其原因可能是在釀造香菇小米黃酒時添加了香菇漿，與小米黃酒中的多酚等抗氧化成分發生協同作用，在一定程度上增強了小米黃酒的抗氧化能力[47]。

2.4.3 DPPH 自由基清除能力 由圖5C 可知，兩種黃酒均具有一定的DPPH 自由基清除能力，隨著濃度的增加呈現先上升后平緩的趨勢。經計算，SP 與SPQ 對于DPPH 自由基的清除的IC50值分別為0.11和0.05 mL/mL，SP 對于DPPH 自由基的清除能力稍弱于SPQ，說明釀酒時加入藜麥麩皮可以略微提高酒樣對于DPPH 自由基的清除能力。與其他類型黃酒相比，李杰等[48]釀造的紅小米黃酒的對于DPPH自由基清除的IC50值為0.45 mL/mL，說明藜麥麩皮黃酒對于DPPH 自由基的清除能力要強于紅小米黃酒，這可能與藜麥麩皮黃酒中皂苷、黃酮類的物質含量較高有關[15]。韓惠敏[49]釀造的黑米黃酒在0.5 mL/mL 時對DPPH 自由基的清除率為82.11%±0.76%，與SP 和SPQ 原液的DPPH 自由基清除率相比不存在顯著性差異（P＞0.05），所以藜麥麩皮黃酒對于DPPH 自由基的清除能力弱于黑米黃酒，推測其原因可能是黑米黃酒中含有大量的花青苷[49]。

2.4.4 Fe2+螯合能力 由圖5D 可知，兩種黃酒與Fe2+的螯合率會隨著黃酒濃度的增大而提高，SPQ 原液（1.0 mL/mL）的Fe2+螯合率達到了45.79%，明顯高于SP 原液（6.51%）和10 μg/mL 檸檬酸（10.83%），經檢驗均有統計學差異。經計算，SP 與SPQ 對于Fe2+螯合能力的IC50值分別9.27 與1.28 mL/mL，SP的Fe2+螯合能力要弱于SPQ，說明釀酒時加入藜麥麩皮可提高酒樣對于Fe2+的螯合能力，該發現還可為后續Fe2+螯合補鐵劑的開發提供新的思路。

2.4.5 酪氨酸酶抑制能力 由圖5E 可知，兩種黃酒對于酪氨酸酶的抑制率呈現先急速上升后逐漸平緩的趨勢，SPQ 和SP 對酪氨酸酶的IC50值分別為0.27 和0.69 mL/mL，SPQ 對酪氨酸酶的抑制能力要強于SP，說明釀酒時加入藜麥麩皮可以提高酒樣對于酪氨酸酶的抑制能力，其原因可能是藜麥麩皮中含有大量可以抑制酪氨酸酶活性的皂苷[27]，此外，黃酒本身含有的抗氧化活性物質可能與皂苷產生協同效果，使得藜麥麩皮黃酒對酪氨酸酶的抑制效果更佳。

3 結論

藜麥麩皮黃酒中的總皂苷及總酚酸含量分別為2.47±0.36、1.19±0.07 mg/mL，相對于普通黃酒，總皂苷、總酚酸含量有所提升（P＜0.05）。利用HPLCMS 技術檢測到黃酒中有48 種差異性非揮發性物質，其中在藜麥麩皮黃酒中含量更高的物質主要有醇類、氨基類、酰胺類等，其含量的升高可以提高藜麥麩皮黃酒的營養功能和活性功能，在藜麥麩皮黃酒中含量降低的物質主要是糖類，其含量的降低可以在一定程度上控制高級醇的產生，增強酒體風味口感的同時也保護人的健康。利用GC-MS 技術檢測到12 種揮發性物質，其中異丙醇、甲酸丁酯、乙酸丁酯在藜麥麩皮黃酒中的含量顯著高于普通黃酒，此外正丁醇和異戊醇僅存在于藜麥麩皮黃酒中，這些高級醇類和脂類物質可以使藜麥麩皮黃酒變得更加醇厚，提高藜麥麩皮黃酒的特殊風味。抗氧化實驗表明，與普通黃酒相比，加入藜麥麩皮發酵的黃酒具有更好的Fe2+螯合能力（c=1 mL/mL 時，螯合率為45.79%）和酪氨酸酶抑制能力（c=1 mL/mL 時，抑制率為94.84%），藜麥麩皮黃酒的Fe2+螯合率和酪氨酸酶抑制率是普通黃酒的7.03 倍、1.33 倍。但在鐵氰化鉀還原能力、羥自由基清除能力方面，藜麥麩皮黃酒并不優于普通黃酒，造成差異的主要原因是藜麥麩皮中的多酚及黃酮類成分在釀造過程中釋放到黃酒中。綜合以上結果說明釀造藜麥麩皮黃酒存在可行性，在開發更具營養價值的黃酒以及提高藜麥麩皮的高值化利用方面具有較廣闊的應用前景，但藜麥麩皮的加入是否會影響整個原料發酵體系的精白度仍需進一步探討。后續將針對藜麥麩皮的添加量與發酵體系精白度之間的量效關系以及藜麥麩皮黃酒在發酵過程中微生物的優勢菌群及多樣性變化方面進行更加深入的研究，為釀造藜麥麩皮黃酒提供更加完善的理論依據。