趙 磊,萬 磊,劉 健,黃傳兵,賈光輝,朱子衡,胡恩欽,婁淵和
(1. 界首市人民醫院,安徽 界首 236500;2. 安徽中醫藥大學第一附屬醫院,安徽 合肥 230031;3. 新安醫學教育部重點實驗室,安徽 合肥 230038)
類風濕關節炎(rheumatoid arthritis,RA)是一種以大量炎癥細胞伴隨滑膜、軟骨組織損傷的慢性自身免疫性疾病,影響全球約1 %的人口,其特征是炎癥和血管翳形成,隨后關節和軟骨退化[1-2]。雖然治療RA的藥物很多,但效果均不是很理想,且長期用藥不良反應明顯[3]。近些年生物制劑治療RA的療效得到肯定,但患者對治療的臨床反應表現出高度的異質性[4]。中醫中藥可通過多靶點和整體調節作用控制RA病情,且能減少西藥所致的不良反應[5]。復方雷公藤制劑(新風膠囊)為新安醫家劉健教授據多年臨床經驗所創,廣泛用于治療RA及免疫相關疾病。課題組臨床研究表明,復方雷公藤制劑可能通過調控炎性細胞因子和趨化因子平衡,抑制FAK/CAPN/PI3K通路異常激活而改善RA患者體內炎癥反應及關節癥狀[6];動物實驗研究表明,復方雷公藤制劑可通過調節巨噬細胞極化改善佐劑關節炎(AA)大鼠關節炎癥[7]。但復方雷公藤制劑調控巨噬細胞極化的作用機制尚不明確,故本實驗以Notch信號通路調控巨噬細胞極化為研究突破口,并以復方雷公藤制劑調控為切入點,研究了復方雷公藤制劑調節RA巨噬細胞極化平衡的機制。
1.1動物 清潔級SD雄性大鼠30只,體重(190±20)g,由安徽醫科大學實驗動物中心提供,動物合格證號:Lscxk(皖)2017-001。大鼠飼養于溫度18~22 ℃、相對濕度50%~60%的標準清潔級動物房,保持通風排氣10~20次/h。本實驗經安徽中醫藥大學第一附屬醫院實驗動物倫理委員會批準(AHUCM-rats-2021022)。
1.2藥物及試劑 復方雷公藤制劑(由雷公藤、黃芪、薏苡仁、蜈蚣配伍組成,安徽中醫藥大學第一附屬醫院制劑中心提供,皖藥制字號Z20050062,批號:191015,規格:0.34 g/粒);甲氨蝶呤(上海上藥信誼藥廠有限公司,國藥準字H22022674,批號:191213,規格:2.5 mg/片);Notch1抑制劑(上海藍木化工有限公司,貨號:S7399);弗氏完全佐劑(美國Sigma公司,貨號:MB9887);白細胞介素-1β(IL-1β)、白細胞介素-4(IL-4)、白細胞介素-10(IL-10)、白細胞介素-13(IL-13)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α) ELISA檢測試劑盒(武漢基因美科技有限公司,貨號分別為JYM0083Hu、JYM0142Hu、JYM0155Hu、JYM0151Hu、JYM0110Hu,批號均為GR2021-10);抗鼠M1型巨噬細胞標志物(CD86-PE)、M2型巨噬細胞標志物(CD206-AF647)(美國Santa Cruz公司,貨號分別為Sc19617、S58986);山羊抗小鼠IgG、山羊抗兔IgG、β-actin(北京中杉金橋生物技術有限公司,貨號分別為ZB-2305、ZB-2305、TA-09);兔Notch1、Jagged1、Hes1抗體(英國abcam公司,貨號分別為ab52627、ab109536、ab119776);兔RBP-Jκ抗體(中國bioss公司,貨號:bs-2966R)。
1.3儀器 流式細胞儀(美國貝克曼庫爾特有限公司,型號:navios);倒置顯微鏡(日本OLYMPUS公司,型號:CKX31);離心機(上海和欣科教設備有限公司,型號:80-2);電泳儀(上海天能科技有限公司,型號:EPS300);生物組織自動脫水機、生物組織包埋機、生物組織攤烤片機(湖北亞光公司,型號分別為ZT-12M、YB-7LF、YT-7FB)。
1.4實驗方法 將30只大鼠隨機分為正常組、模型組、復方雷公藤組、甲氨蝶呤組、Notch1抑制劑組,每組6只。除正常組不造模外,其余組大鼠參考文獻[8-9]方法向右后足跖皮內注射弗氏完全佐劑(0.1 mL/只)構建佐劑關節炎模型。致炎后第19天開始,根據人與動物體表面積比值[10]計算給藥劑量,復方雷公藤組給予340 mg/L復方雷公藤制劑混懸液(將復方雷公藤制劑粉末溶于0.9%氯化鈉溶液制成)灌胃,每天1次;甲氨蝶呤組給予0.95 mg/L甲氨蝶呤混懸液(甲氨蝶呤片研成細粉后溶于0.9%氯化鈉溶液制成)灌胃,每周1次;Notch1抑制劑組給予0.56 mg/L Notch1抑制劑混懸液(將Notch1抑制劑溶于0.9%氯化鈉溶液制成)尾靜脈注射,隔天1次;正常組及模型組給予生理鹽水10 mL/kg灌胃,每天1次。各組均連續干預30 d。
1.5檢測指標及方法
1.5.1足趾腫脹度、關節炎指數 造模前1 d、干預前1 d、干預30 d后測量各組大鼠足趾容積,計算干預前1 d、干預30 d后的足跖腫脹度、關節炎指數。足跖腫脹度=(造模后足趾容積-造模前足趾容積)/造模前足趾容積。關節炎病變指數按5級評分法評價,無紅腫現象為0分,小趾關節出現紅腫為1分,趾關節和足跖出現腫脹為2分,踝關節以下的足爪發生腫脹為3分,包括踝關節在內的全部足爪發生腫脹為4分[11]。
1.5.2外周血炎癥極化標志物CD86、CD206表達情況 末次干預結束后麻醉大鼠,取腹主動脈血100 μL,按照說明書每106個細胞/管分別加入抗鼠CD86-PE、CD206-AF647各0.25 μg,渦旋混勻后避光室溫染色20 min;加入1 mL紅細胞裂解液,4 ℃靜置15 min,2 500 r/min 室溫離心10 min,棄上清;用預冷PBS 500 μL重懸細胞,2 500 r/min 室溫離心5 min,棄上清;用預冷PBS 500 μL重懸細胞,上機檢測;用 flowJoV10軟件對流式細胞圖像進行分析。
1.5.3血清炎癥因子水平 腹主動脈采血,離心取上清液,依照ELISA試劑盒說明檢測IL-1β、IL-4、IL-10、IL-13、TNF-α水平。
1.5.4關節滑膜組織中Notch1、Jagged1、RBP-Jκ、Hes1蛋白表達情況 分別采用免疫組化和免疫印跡法檢測。
1.5.4.1免疫組化檢測方法 處死各組大鼠,取右后肢關節滑膜組織,切片后放入干燥箱66 ℃烤片20~30 min;二甲苯處理,3×5 min;梯度乙醇處理(100%,95%,80%),每次3 min;將切片放入燒杯中,流水緩慢沖洗,洗去乙醇至切片干凈透明;脫水后加入Notch1(1∶50)、Jagged1(1∶350)、RBP-Jκ(1∶50)、Hes1(1∶200)一抗4 ℃孵育過夜,結合山羊抗兔二抗、DAB顯色、封片,顯微鏡觀察Notch1、Jagged1、RBP-Jκ、Hes1陽性表達情況并拍照。
1.5.4.2免疫印跡檢測方法 用蛋白提取試劑盒提取滑膜總蛋白,電泳分離,采用半干法轉膜使蛋白質從膠轉移至膜上,用室溫5%的脫脂奶粉封閉膜2 h。免疫反應:將兔Notch1、Jagged1、RBP-Jκ、Hes1抗體1∶2 000稀釋,和膜室溫下孵育2 h,采用Anti-Rabbit二抗(稀釋比例均為1∶8 000)室溫孵育1 h。采用增強化學發光法顯色并拍照。計算各組目的蛋白條帶的灰度值,以條帶與各組內參β-actin灰度值的比值作為相對表達量。

2.1各組大鼠足趾腫脹度比較 造模前1 d各組大鼠足容積與正常組比較差異均無統計學意義(P均>0.05);干預前1 d,各造模組大鼠足趾腫脹度均明顯高于正常組(P均<0.05),各造模組間比較差異均無統計學意義(P均>0.05);干預30 d后,模型組大鼠足趾腫脹度明顯高于正常組(P<0.05),復方雷公藤組、甲氨蝶呤組、Notch1抑制劑組大鼠足趾腫脹度均明顯低于模型組(P均<0.05);3個給藥組大鼠足趾腫脹度比較差異均無統計學意義(P均>0.05)。見表1。

表1 正常組和佐劑關節炎各組大鼠足趾腫脹度比較
2.2各組大鼠關節炎指數比較 干預前1 d,各造模組大鼠關節炎指數均明顯高于正常組(P均<0.05),各造模組間比較差異均無統計學意義(P均>0.05);干預30 d后,模型組大鼠關節炎指數明顯高于正常組(P<0.05),復方雷公藤組、甲氨蝶呤組大鼠關節炎指數均明顯低于模型組(P均<0.05),Notch1抑制劑組大鼠關節炎指數與模型組比較差異無統計學意義(P>0.05);3個給藥組大鼠關節炎指數比較差異均無統計學意義(P均>0.05)。見表2。

表2 正常組和佐劑關節炎各組大鼠關節炎指數比較
2.3各組大鼠血清炎癥因子水平比較 與正常組比較,模型組大鼠血清IL-1β、TNF-α水平均明顯升高(P均<0.05),血清IL-4、IL-10、IL-13水平均明顯降低(P均<0.05);與模型組比較,復方雷公藤組、甲氨蝶呤組、Notch1抑制劑組血清IL-1β、TNF-α水平均明顯降低(P均<0.05),血清IL-4、IL-10、IL-13水平均明顯升高(P均<0.05);復方雷公藤組血清IL-1β、TNF-α水平均明顯低于甲氨蝶呤組和Notch1 抑制劑組(P均<0.05),血清IL-4、IL-10、IL-13水平均明顯高于甲氨蝶呤組(P均<0.05)。見表3。

表3 正常組和佐劑關節炎各組大鼠血清炎癥因子水平比較
2.4各組大鼠外周血炎癥極化標志物CD86、CD206表達情況比較 與正常組比較,模型組大鼠外周血CD86表達占比明顯升高(P<0.05),CD206表達占比明顯降低(P<0.05);與模型組比較,復方雷公藤組、甲氨蝶呤組、Notch1抑制劑組大鼠外周血CD86表達占比均明顯降低(P均<0.05),CD206表達占比均明顯升高(P均<0.05);復方雷公藤組大鼠外周血CD86表達占比均明顯低于甲氨蝶呤組、Notch1抑制劑組(P均<0.05),CD206表達占比均明顯高于甲氨蝶呤組、Notch1抑制劑組(P均<0.05)。見表4。

表4 正常組和佐劑關節炎各組大鼠外周血炎癥極化標志物CD86、CD206表達占比比較
2.5各組大鼠關節滑膜組織中Notch1、Jadded1、RBP-Jκ、Hes1蛋白表達情況比較 模型組Notch1、Jadded1、RBP-Jκ、Hes1蛋白相對表達量均明顯高于正常組(P均<0.05);復方雷公藤組、甲氨蝶呤組、Notch1抑制劑組Notch1、Jadded1、RBP-Jκ、Hes1蛋白相對表達量均明顯低于模型組(P均<0.05);復方雷公藤組Notch1、Jadded1、RBP-Jκ、Hes1蛋白相對表達量均明顯低于甲氨蝶呤組(P均<0.05),且Jadded1、RBP-Jκ、Hes1蛋白相對表達量均明顯低于Notch1抑制劑組(P均<0.05)。見圖1、圖2及表5。

圖1 正常組和佐劑關節炎各組大鼠關節滑膜組織中Notch1、Jagged1、RBP-Jκ、Hes1蛋白陽性表達情況(免疫組化染色,×200)

圖2 正常組和佐劑關節炎各組大鼠關節滑膜組織中Notch1、Jagged1、RBP-Jκ、Hes1蛋白表達條帶

表5 正常組和佐劑關節炎各組大鼠關節滑膜組織中Notch1、Jagged1、RBP-Jκ、Hes1蛋白相對表達量比較
RA是一種慢性進展性免疫炎癥性疾病,會導致關節軟骨退化和骨侵蝕,目前治療方案主要是抑制炎癥、延緩疾病進展。中醫認為RA多存在“脾虛濕盛、痰瘀膠著”的特點[12]。復方雷公藤制劑即根據該病機特點而創制,方中雷公藤有祛風除濕、通絡鎮痛之功,現代研究表明雷公藤具有抗炎、免疫抑制作用[13];薏苡仁健脾利濕、舒筋除痹,薏苡仁提取物能通過抑制促炎因子表達和減輕氧化應激反應發揮抗RA的作用[14];黃芪益氣養血固表,其有效成分黃芪多糖具有免疫調節作用[15];蜈蚣祛風止痙、通絡止痛,其有效成分蜈蚣多肽具有明顯抗炎鎮痛作用[16]。諸藥合用,共奏健脾化濕、通絡止痛之功,且能制約雷公藤的毒性。
巨噬細胞極化參與RA炎癥反應,其可大量分泌促炎性細胞因子,激活成纖維細胞和破骨細胞,加速機體炎癥反應,造成關節破壞[17-19]。Notch信號通路協調許多細胞過程,可調節免疫細胞,促進巨噬細胞極化參與炎癥反應[20-21]。有研究表明, Notch1可以促進TNF-α誘導的RA滑膜細胞的增殖和炎癥因子的分泌,從而延遲巨噬細胞的凋亡,促進機體炎癥的發生和擴散;同時研究發現Jagged1在滑膜增生性病變的滑膜襯里和亞襯里細胞中過度表達[22-23]。當Notch1受體和Jagged1配體相互接觸結合后,其跨膜細胞內段在分泌蛋白酶(如解聚素及金屬蛋白酶和γ-分泌蛋白酶)的作用下裂解入核,結合下游信號蛋白形成轉錄復合物,與轉錄因子RBP-Jκ結合,從而影響靶基因Hes1的表達,致巨噬細胞向M1型極化,誘導IL-1、IL-13、TNF-α炎癥細胞因子浸潤,參與RA炎癥反應[24-25]。另外Choi等[26]研究表明,Notch1信號通路可通過抑制調節性T細胞群的數量,促進TNF-α的產生,從而促進關節炎癥的發展。因此,RA的發生發展及其關節炎癥反應可能與Notch通路及其巨噬細胞極化有關。
本研究中模型組外周血CD86表達量及血清IL-1β、TNF-α水平和關節滑膜組織中Notch1、Jagged1、RBP-Jκ、Hes1蛋白相對表達量均明顯升高,外周血CD206表達量及血清IL-4、IL-10、IL-13水平均明顯降低,說明AA大鼠體內Notch1/Jagged1/RBP-Jκ/Hes1信號通路被異常激活,且該信號通路與巨噬細胞炎癥極化之間存在相關性,巨噬細胞極化促進了巨噬細胞向M1型巨噬細胞的極化,從而引起炎癥細胞因子的大量分泌,促進AA大鼠體內炎癥免疫反應,造成關節、軟骨等的損傷。復方雷公藤組外周血CD86表達量及血清IL-1β、TNF-α水平和關節滑膜組織中Notch1、Jagged1、RBP-Jκ、Hes1蛋白相對表達量均明顯降低,外周血CD206表達量及血清IL-4、IL-10、IL-13水平均明顯升高,且復方雷公藤的作用與Notch1抑制劑的作用不相上下,說明復方雷公藤制劑具有Notch1抑制劑樣作用,可通過抑制Notch1/Jagged1/RBP-Jκ/Hes1信號通路的異常激活,抑制巨噬細胞炎癥極化,減輕炎癥免疫反應損傷。
綜上所述,復方雷公藤制劑能調節Notch1/Jagged1/RBP-Jκ/Hes1信號通路調控巨噬細胞炎癥極化,調節炎癥免疫反應,從而抑制炎癥因子對關節、軟骨等的刺激和破壞。
利益沖突:所有作者均聲明不存在利益沖突。