應用Cre-LoxP系統構建牛結節性皮膚病病毒缺失TK基因毒株

摘 要： 利用同源重組技術及Cre-LoxP系統平臺，構建牛結節性皮膚病病毒（lumpy skin disease virus， LSDV）缺失TK基因毒株，為研制出安全、高效的LSDV基因工程疫苗提供備選毒株。以TK基因為靶基因，利用Cre-LoxP系統平臺，紅色熒光蛋白（RFP）為篩選標記，采用重疊PCR方法擴增左、右同源臂以及RFP基因表達框并進行融合，將其克隆至pUC19T載體，構建基因缺失轉移載體pUC19T-LSDV-ΔTK-RFP。將轉移載體重組質粒轉染至Vero細胞，并感染LSDV/CHA/FJ/2021毒株，構建LSDV-ΔTK-RFP重組病毒。采取蝕斑法、有限稀釋法純化LSDV-ΔTK-RFP。然后，利用Cre-LoxP系統，在MDBK-Cre細胞中從病毒基因組中切除RFP標簽，采取蝕斑法和有限稀釋法篩選并純化LSDV-ΔTK毒株。利用PCR及測序方法對重組毒株進行鑒定，并測定其一步生長曲線。結果表明成功構建缺失TK基因的重組毒株（LSDV-ΔTK），重組毒株復制力略低于野生毒株。應用Cre-LoxP系統構建的缺失TK基因LSDV毒株，具有良好的遺傳穩定性和復制生長特性，為后續LSDV基因工程疫苗的研制提供了候選毒株，同時拓展了Cre-LoxP系統的應用范圍。

關鍵詞： 牛結節性皮膚病病毒；TK基因；Cre/LoxP系統；重組毒株

中圖分類號： S852.659.1

文獻標志碼：A

文章編號：0366-6964（2024）10-4517-13

收稿日期：2023-11-21

基金項目：國家自然科學基金（32302850）；甘肅省科技計劃資助（22JR5RA035）；甘肅省科技重大專項（22ZD6NA001）；中國農業科學院蘭州獸醫研究所基本科研業務費（1610312021008）

作者簡介：張玉哲（1999-），男，甘肅寧縣人，碩士生，主要從事草食動物病毒病感染致病機制研究，E-mail：1156928206@qq.com

*通信作者：萬學瑞，主要從事病原微生物分子生物學研究，E-mail： wanxr@gsau.edu.cn

Application of the Cre-LoxP System to Construct the Deleted TK Gene of the Lumpy

Skin Disease Virus

ZHANG Yuzhe1， REN Shanhui2， YAO Wei3， GONG Zhenli2， ZHANG Hongqiang1， LIU Minyi

1， YOU Ting1， WANG Xiangwei2， LI Jiyun4， YIN Xiangping2， SUN Yuefeng2， CHEN Haotai2， WAN Xuerui1*

（1.Gansu Agricultural University， Lanzhou 730070，" China;

2.Lanzhou Veterinary Research Institute，

Chinese Academy of Agricultural Sciences， Lanzhou 730046，" China;

3.Animal Husbandry Industry

Development Center， Wanzhou District， Chongqing 400000，" China;

4.Institute of Science and Technical

Information of Qinghai Province， Xining 810003，" China）

Abstract：" A TK-deficient Lumpy skin disease virus （LSDV） strain was constructed by homologous recombination technology and the Cre-LoxP system platform to provide an alternative strain for developing a safe and efficient LSDV genetic engineering vaccine. Using the TK gene as the target gene， using the Cre-LoxP system platform and red fluorescent protein （RFP） as screening marker， the left and right homologous arms and RFP gene expression cassettes were amplified by overlapping PCR and fused， and then cloned into pUC19T vector to construct gene deletion transfer vector pUC19T-LSDVΔTK-RFP. The transfer vector recombinant plasmid was transfected into Vero cells and infected with LSDV/CHA/FJ/2021 strain to construct LSDV-ΔTK-RFP recombinant virus. LSDV-TK-RFP was screened and purified by the plaque method and limited dilution method. Then， using the Cre-LoxP system， RFP tags were cut off from the viral genome in MDBK-Cre cells， and LSDV-TK strains were screened and purified by the plaque method and limited dilution method. PCR and sequencing identified the recombinant strain， and its one-step growth curve was determined. The recombinant strain （LSDV-ΔTK） with deletion of the TK gene was successfully constructed， and the replication ability of the recombinant strain was slightly lower than that of the wild-type strain. The LSDV strain with deletion of the TK gene constructed by the Cre-LoxP system has good genetic stability and replication growth characteristics， so it can be used as an alternative strain for the development of the LSDV genetic engineering vaccine and expands the application range of the Cre-LoxP system.

Key words： lumpy skin disease virus; TK gene; Cre-LoxP system; recombinant virus

*Corresponding author：" WAN Xuerui， E-mail： wanxr@gsau.edu.cn

牛結節性皮膚病（lumpy skin disease，LSD）也叫牛結節性皮炎、牛疙瘩皮膚病、牛結節疹等，是由屬痘病毒科（Poxvirdae）脊椎動物痘病毒亞科（Chordopoxvirinae）山羊痘病毒屬（Capripoxvirus， CPV）的牛結節性皮膚病病毒（lumpy skin disease virus，LSDV）感染牛后所致的急性、亞急性或慢性傳染病［1-2］。LSD主要臨床癥狀為發熱、口咽部、乳房、生殖器、直腸黏膜等區域出現特征性結節［3］。LSD的發病率為5%～45%，病死率不定，最高可達20%［4］。1929年，非洲贊比亞最早報道了牛結節性皮膚病，隨后該病相繼在不同國家和地區發生。2019年8月，該病首次在我國新疆伊犁被報道，且陸續在福建、江西、安徽、云南、浙江及廣東等14個省、市、自治區均有暴發［5］。LSD疫情現已呈世界性流行，是世界動物衛生組織（World Organisation for Animal Health， WOAH）規定必須通報的傳染病。目前，我國將牛結節性皮膚病由一類動物疫病調整為二類動物疫病［6］。

LSDV是線性雙鏈有囊膜的DNA病毒，呈現典型的“磚型”或“大卵圓型”，病毒基因組大小約為151 kb，高AT含量約73%，由中央編碼區和兩端反向末端重復序列（2.4 kb）組成，編碼156個預測基因［7］。其只有1個血清型，代表毒株為南非Neethling株［8］。由于CaPVs之間的交叉保護，來自綿羊或山羊的分離株可以交叉保護牛免受LSD感染，且LSDV分離株可以不同程度地保護綿羊和山羊免受SPPV和GTPV的感染［9-10］。使用LSD減毒活疫苗接種是控制疾病的一種有效手段，目前，LSD流行國家主要使用GTPV或LSDV弱毒疫苗進行預防，但GTPV、SPPV和LSDV之間的免疫交叉保護力需要進一步評估［9］。

Cre-loxP系統由Cre重組酶和Loxp位點兩部分組成，Cre重組酶來源于P1噬菌體，是λInt酶超基因家族成員之一。其具有DNA內切酶和重組酶活性，單個的重組酶蛋白能特異性識別幾種34 bp的反向重復的LoxP序列并與之結合，單個LoxP序列可與兩個Cre酶結合。當lox序列成對出現時，分別結合在兩個LoxP序列上的兩對Cre蛋白會結合在一起，進而發揮DNA重組功能。在Cre重組酶的作用下可以將設定的DNA片段刪除、倒位、以及定點整合［11］。由于該系統作用方式簡單高效，被廣泛應用在刪除特定基因、外源基因整合、動植物體內外DNA重組等領域，已成為體內外遺傳操作新的有力工具［12］。利用Cre-LoxP重組酶系統這些特點，在構建載體時可以根據需要改造LoxP位點序列，以用于特定的基因突變或修復，增加該系統的應用范圍［13］。通過單基因或多基因缺失從而降低毒力是獲得減毒基因工程疫苗的一種有效方法。LSDV宿主范圍小，對外源基因的耐受性強，是一種更為理想的活病毒載體。LSDV的胸苷激酶基因（thymidine kinase，TK）是復制非必需基因，具有高度保守性，插入外源基因而不影響病毒復制，可以作為構建LSDV基因工程疫苗的外源基因插入位點。本研究利用同源重組技術，將方向相同的兩個LoxP位點和紅色熒光報告基因RFP，定向插入至LSDV/FJ/CHA/2021病毒基因組TK基因處，構建紅色熒光標記毒株（LSDV-LoxP-RFP-LoxP-ΔTK）。然后采用Cre-LoxP重組酶系統，在表達Cre重組環化酶的MDBK-Cre細胞系中精準切除重組病毒基因組中熒光標簽基因，最終構建缺失TK基因的LSDV重組病毒（LSDV-ΔTK毒株），為LSDV基因工程減毒株的研制奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 主要細胞和病毒

Vero、MDBK和MDBK-Cre細胞均由中國農業科學院蘭州獸醫研究所草食動物病毒創新團隊實驗室保存；LSDV/FJ/CHA/2021病毒株由中國農業科學院蘭州獸醫研究所（LVRI）實驗室分離保存（GenBank 登錄號：OP752701）。所有細胞和毒株均支原體檢測陰性。

1.2 主要試劑

Phanta Max Super-Fidelity DNA Polymerase（貨號：P505-d1）購自南京諾唯贊生物科技有限公司；限制性內切酶KpnⅠ和BamHⅠ均購自New England Biolabs有限公司（貨號：R3142S和R0136V）；快速克隆試劑盒購自南京諾唯贊生物科技有限公司（貨號：C112）；質粒小提試劑盒（貨號：DP105-3）、病毒DNA提取試劑盒（貨號：DP315）均購自Tiangen公司；細胞轉染試劑jetPRIME，購自Poly plus公司（貨號：DP105-3）；胎牛血清（FBS）購自上海諾萊生物有限公司（貨號CF602/C04001-500）產品；DMEM培養基購自健順生物科技有限公司產品（貨號：C04001-500）；無鈣鎂PBS緩沖液購自上海逍鵬生物科技有限公司（Viva cell）（貨號：C3593）；支原體檢測試劑盒購自上海翊圣生物有限公司（貨號：40601ES20）。

1.3 主要儀器

PCR儀購于廣州威佳科技有限公司產品；生物安全柜、37 ℃恒溫二氧化碳（5%）培養箱和-80℃超低溫冰箱購于Thermo有限公司；精密恒溫培養箱購于上海一恒科學儀器公司；恒溫搖床購于上海知楚儀器公司；高速低溫離心機購于德國Eppendorf公司；超凈工作臺購于蘇州安泰空氣技術公司；EVOS M5000 Leica倒置熒光顯微鏡購于德國徠卡公司。

1.4 引物的設計

根據相關序列設計引物，詳見表1。

1.5 病毒基因組DNA模板的制備

使用Tiangen病毒DNA提取試劑盒，按照說明書操作提取 LSDV/FJ/CHA/2021毒株的DNA。

1.6 重疊PCR擴增反應

以提取的LSDV/FJ/CHA/2021毒株的DNA為模板，擴增ORF67L和ORF67R。以質粒pcDNA3.1-RFP-LC3為模板，擴增紅色熒光蛋白表達框（RFP）。PCR產物經1%瓊脂糖凝膠電泳檢測將大小正確的目的條帶進行膠回收。之后將膠回收產物同源左臂（ORF67L）、同源右臂（ORF67R）分別同紅色熒光蛋白表達框（RFP）進行第一次融合PCR反應，將獲得的ORF67L+RFP和RFP+ORF67R PCR產物膠回收后進行第二次融合PCR反應，膠回收后測定核酸濃度，置于-20冰箱保存。PCR反應體系：DNA模板2 μL，2×phanta Max Buffer 25 μL，dNTP Mix 1 μL，Phanta Max Super DNA Polymerase 1 μL，10 μmol·L-1上、下游引物各2 μL，ddH2O補至50 μL。反應程序：95 ℃預變性3 min；95 ℃變性15 s，58 ℃退火15 s，72 ℃延伸1 000 bp·min-1，32個循環；72 ℃終延伸5 min。

1.7 轉移載體構建與鑒定

用KpnⅠ和BamHⅠ將pUC19T載體進行雙酶切，質粒雙酶切產物經膠回收試劑盒回收目的條帶。同重疊PCR產物連接（37℃，30 min）。隨后用大腸桿菌DH5α感受態細胞進行轉化，加入無抗2YT培養基1 mL，37℃搖菌1h后離心，棄上清900 μL，吹打混勻沉淀并涂布于2YT固體平板（10 μg·mL-1氨芐霉素）中，于37℃培養過夜，挑取長出的單個菌落，搖菌，經PCR鑒定后通過質粒小提試劑盒提取質粒，送至上海生工生物工程有限公司進行測序，將陽性質粒命名為pUC19T-LSDVΔTK-RFP。

1.8 同源重組拯救缺失TK基因紅色熒光重組病毒（LSDV-ΔTK-RFP）

待12孔細胞培養板的Vero細胞密度為60%～80%時，轉染質粒pUC19T-LSDVΔTK-RFP，18～20 h后感染野生型LSDV/FJ/CHA/2021毒株（WT-LSDV），感染后8、12、24和36 h觀察細胞病變及紅色熒光情況。待LSDV誘導Vero細胞產生明顯的細胞病理變化（cytopathic effect， CPE）時，將培養上清和細胞吸取至1.5 mL離心管，凍存于-80 ℃冰箱。反復凍融3次，3 000 r·min-1離心10 min。取10 μL接種于12孔細胞培養板，細胞密度為60%～80%時MDBK細胞，6 h后更換為DMEM培養基（含2%甲基纖維素10% FBS），挑取熒光顯微鏡下紅色熒光的基因缺失重組病毒（LSDV-ΔTK/ORF67-RFP），并用于病毒的后續傳代，純化LSDV-ΔTK-RFP。

1.9 缺失TK基因紅色熒光重組病毒（LSDV-ΔTK-RFP）的純化

將同源重組后收集到的病毒液于-80℃反復凍融3次，取100 μL接種于6孔板的MDBK細胞中，觀察細胞病變及熒光情況，3 d后選取病變明顯的孔，吸棄孔內培養基，加入2 mL DMEM培養基（含2%甲基纖維素10% FBS）繼續培養，在熒光顯微鏡下觀察形成蝕斑后，挑取有熒光的蝕斑置于1.5 mL離心管中，保存于-80℃冰箱。將挑取的單個蝕斑病毒按10倍梯度稀釋接種于96孔板的MDBK細胞，觀察病變及熒光情況進行病毒篩選和純化。將純化LSDV-ΔTK-RFP病毒進行連續傳代，觀察病毒基因組中RFP遺傳穩定性。

1.10 缺失TK基因紅色熒光重組病毒（LSDV-ΔTK-RFP）的鑒定

采取PCR法和測序對重組病毒進行鑒定，利用病毒基因組DNA提取試劑盒提取LSDV-ΔTK重組病毒DNA，將其作為模板進行PCR擴增，以Primer1和Primer2為引物，進行兩次PCR鑒定。若用引物Primer1擴增不出單一條帶，而同時Primer2可以擴增出單一條帶，則證明重組病毒純化成功，以LSDV-WT為陽性對照，ddH2O為陰性對照。擴增體系50 μL，體系中各成分含量：模板DNA 1 μL、2×Hieff PCR Master Mix 25 μL、上下游引物各2 μL、ddH2O補足至50 μL。循環參數：94 ℃預變性5 min；94 ℃變性30 s，58 ℃退火30 s，72 ℃延伸60 s，共35個循環；72 ℃終延伸10 min。最后12 ℃保存。根據電泳結果送上海生工生物工程有限公司進行測序，若序列比對正確且測序峰單一無雜峰，則證明重組病毒純化成功。將純化的LSDV-ΔTK進行連續傳代，測定病毒基因組的遺傳穩定性。

1.11 重組病毒LSDV-ΔTK-RFP的遺傳穩定性分析

將重組病毒LSDV-ΔTK-RFP在MDBK細胞上連續傳代，觀察細胞狀態及紅色熒光表達情況，分別取F3、F6、F10代重組病毒測定TCID50。

1.12 利用Cre-Loxp系統刪除LSDV病毒基因組中紅色熒光蛋白標簽

將不同稀釋度的（10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7、10-8、10-9、10-10和10-11）LSDV-ΔTK-RFP感染80%～100%融合度的MDBK-Cre細胞（100 μL·孔-1），8個復孔。感染后24、36和48 h后觀察細胞病變及紅色熒光情況。將有典型LSDV感染病變，但紅色熒光較少的細胞培養板復孔，做以標記。待96孔板的細胞病變較明顯時，將96孔板凍存于-80℃冰箱，反復凍融3次。最后，將培養上清和細胞吸取至1.5 mL離心管，3 000 r·min-1離心10 min。按照上述操作連續在MDBK-Cre細胞中重復傳代，用于去除病毒基因組中紅色熒光蛋白（RFP）標簽。

1.13 重組病毒LSDV-ΔTK的遺傳穩定性分析

將純化的LSDV-ΔTK病毒在MDBK細胞中連續培養觀察，待出現明顯病變時，將病毒液凍存一次，并接種于下一代MDBK細胞中，連續培養10代，觀察細胞與病變狀態。并提取每代病毒DNA利用引物Primer3進行PCR鑒定。

1.14 重組病毒一步生長曲線測定

將病毒（WT-LSDV、LSDV-ΔTK-RFP、LSDV-ΔTK）10倍梯度稀釋從10-1稀釋到10-10，接種于長滿單層MDBK細胞的96孔板中，分別于24、48、72和96 h后觀察細胞病變情況。按照Reed-Muench 法計算結果，并測定其TCID50繪制病毒生長曲線。

1.15 生物安全聲明

LSDV感染細胞的相關試驗均在中國農業科學院蘭州獸醫研究所完成，整個試驗過程，嚴格按照中國農業科學院蘭州獸醫研究所的3級生物安全實驗室的操作指南進行。

2 結 果

2.1 左同源臂、右同源臂和紅色熒光蛋白表達框基因片段擴增

依據缺失TK基因LSDV毒株構建示意圖（圖1），以LSDV/FJ/CHA/2021毒株的病毒DNA及pcDNA3.1-RFP-LC3陽性質粒作為模板，利用表1中引物，擴增同源重組左、右臂片段及紅色熒光蛋白表達框。同源重組左臂和右臂基因片段的擴增大小均與預期的1 000和1 100 bp相符，以及紅色熒光蛋白表達框的目的基因片段擴增大小與預期的807 bp相符（圖2）。

2.2 重疊PCR方法構建轉移載體（transfer vector）

將左、右同源臂和紅色熒光蛋白表達框基因進行膠回收，進行兩次融合PCR反應。如圖3A，分別融合ORF67L+RPF和RFP+ORF67R，片段大小與預期結果相符。隨后，進行重疊PCR反應，片段大小2 907 bp與預期結果相符（圖3B）。將左、右同源臂和紅色熒光蛋白表達框三段重疊PCR產物同"" pUC19T雙酶切載體相連接，連接產物轉化至感受態細胞，涂布于2YT固體平板后，于37℃過夜培養，進行菌液PCR鑒定。如圖3C，將陽性菌液（#3、#4和#5）提取質粒，送至上海生工生物工程有限公司進行測序，將測序正確的陽性質粒命名為pUC19T-LSDV-ΔTK-RFP。

2.3 缺失TK基因紅色熒光標記的重組病毒（LSDV-ΔTK-RFP）拯救與純化

將構建成功的質粒pUC19T-LSDV-ΔTK-RFP轉染至Vero細胞，18-24 h后感染野生型LSDV毒株（WT-LSDV），感染18 h后，在熒光顯微鏡下觀察紅色熒光情況，判定轉移載體是否與病毒基因組發生重組。隨后，通過熒光顯微鏡觀察到紅色熒光是否于LSDV感染病變相互重合，在MDBK細胞中經過蝕斑純化、細胞亞克隆和挑取單細胞后，純化紅色熒光重組LSDV病毒（LSDV-ΔTK-RFP）。提取重組病毒DNA作為模板，用Primer1和Primer2進行PCR擴增，如圖4A和4B所示，Primer1（如圖4A中1～8號，11～14號）不能擴增出約316 bp的單一條帶，Primer2可以擴增出約439 bp的單一條帶（如圖4B中1～15號），說明重組毒株純化成功。同時，如圖4C，參照陽性對照組（LSDV組），#9、#10和#15號克隆，出現兩條條帶，說明非單一克隆。如圖4所示，可以初步證明選取的1～7號，11～14號病毒純化成功。為進一步證明其是否純和，選取1號和2號的PCR擴增產物，送至上海生工生物工程有限公司進行測序，測序結果與預期一致，無堿基缺失或突變，測序峰較單一（圖4D），表明已成功獲得LSDV-ΔTK-RFP重組毒株。隨后，如圖5所示，觀察到典型的LSDV感染產生的病變與紅色熒光100%重合，進一步驗證該紅色熒光標記的缺失TK基因LSDV重組病毒構建成功。

2.4 重組病毒LSDV-ΔTK-RFP的遺傳穩定性分析

將純化鑒定成功的LSDV-ΔTK-RFP重組病毒在MDBK細胞中連續傳代，觀察細胞病變情況及紅色熒光表達情況，分別測定F3、F6和F10代重組病毒的TCID50，如圖6結果顯示：經連續傳代紅色熒光仍能穩定表達，F3、F6和F10代重組病毒的TCID50分別為104.7、105.2和105.38。

2.5 利用Cre-Loxp系統刪除LSDV病毒基因組中紅色熒光蛋白標簽

基于重組病毒（LSDV-LoxP-RFP-LoxP-ΔTK）（圖1）基因組中含有同向LoxP位點的紅色熒光標記，利用MDBK-Cre細胞中Cre重組酶對重組病毒基因組LoxP位點進行切割。如圖6，發現LSDV-LoxP-RFP-LoxP-ΔTK感染MDBK-Cre細胞后，細胞周圍出現了無紅色熒光的典型細胞病變（CPE）。

隨著感染時間的延長，無熒光CPE逐漸增多，紅色熒光標記CPE逐漸減少，表明Cre重組酶呈現較高的催化重組活性，能夠有效地識別并切割LSDV-LoxP-RFP-LoxP位點中的RFP標簽，使其熒光淬滅（圖7，白色箭頭所指）。

LSDV-LoxP-RFP-LoxP-ΔTK在MDBK-Cre細胞中連續傳3代，96孔板中亞克隆2次后，獲得了無熒光標記的LSDV-ΔTK病毒（圖7，右列）。為了驗證Cre環化重組酶的無痕切除RFP效果，將LSDV-ΔTK病毒接種至6孔板進行擴大培養，隨后提取病毒DNA，PCR進行鑒定。如圖8A、B，用Primer1和Primer2為特異性引物進行擴增，Primer1不能擴增（1～6號）出約316 bp的單一條帶，Primer2可以擴增出約439 bp的單一條帶（LSDV-RFP），說明紅色熒光蛋白標簽刪除完全。同時，為進一步證明RFP標簽是否已被無痕從病毒基因組中切除，選取1號（#1）和2號（#2）的PCR擴增產物，送至上海生工生物工程有限公司進行測序，測序結果與預期一致，無堿基缺失或突變，測序峰較單一（圖8D），表明已成功獲得LSDV-ΔTK重組毒株。上述結果表明：通過MDBK-Cre細胞系反向提供的Cre環化重組酶，已切除重組病毒基因組中紅色熒光標簽，純化獲得TK基因缺失的LSDV重組病毒。

2.6 重組病毒LSDV-ΔTK的遺傳穩定性分析

將上步純化鑒定成功的LSDV-ΔTK重組病毒在MDBK細胞中連續傳代，觀察細胞狀態及病變情況。分別提取F3、F6和F9代LSDV-ΔTK提取病毒DNA用引物Primer3進行PCR鑒定。如圖9和10，結果顯示該重組病毒能夠穩定遺傳。

2.7 重組病毒一步生長曲線測定

根據細胞病變記錄結果，按照Reed-Muench法計算出重組病毒LSDV-WT、LSDV-ΔTK-RFP和LSDV-ΔTK的病毒滴度為106.31TCID50·0.1 mL-1、105.38TCID50·0.1 mL-1和105.25TCID50·0.1 mL-1。分別以相同病毒劑量感染MDBK細胞，在24、48、72和96 h時收取細胞培養上清測定TCID50，利用Graph pad Prism 6.01軟件繪制病毒的一步生長曲線。如圖11，本研究中構建的缺失TK基因的重組毒株（LSDVΔTK-RFP和LSDV-ΔTK）具有良好的生長特性，其復制力略低于野生毒株（LSDV-WT）。三個毒株均在在72 hpi時達到復制最高峰。

3 討 論

LSD自2019年傳入我國后，對我國養牛業造成巨大經濟損失，針對這種疫病暫無特效藥，疫苗接種是控制此病傳播的唯一經濟可行的方法。目前國際上大多數使用的是基于LSDV、SPPV或GTPV的減毒活疫苗，傳統減毒活疫苗通常會產生副作用，其安全性問題至今仍未解決，這一點也限制了其在生產中的進一步應用［10］。有效的基因缺失標記疫苗是區分疫苗免疫和野毒株感染的重要手段［14］。因此，有必要在其基礎上開發出一種特異性針對LSDV的安全、有效的基因工程缺失疫苗。

LSDV毒力受其基因及編碼蛋白共同影響，可以采用缺失病毒毒力相關基因、破壞與宿主范圍相關的基因、或在病毒基因組中插入可激發宿主自身免疫反應的調節基因等手段，使該病毒的毒力減弱，但不會嚴重影響其自身的增殖。研究表明與痘病毒毒力相關的蛋白主要包括三類：囊膜蛋白、與核苷酸代謝相關的蛋白以及非必需衣殼蛋白。痘病毒TK基因編碼的胸苷激酶能催化脫氧胸苷或嘧啶的磷酸化反應，參與核苷酸的補救合成途徑以維持并促進病毒復制［15］。TK基因是痘病毒復制非必需基因和毒力相關基因，缺失或者缺陷TK基因不影響痘病毒的生長性能和免疫原性，但可以使病毒毒力下降［16］。因此，缺失TK基因是目前構建重組痘病毒基因缺失疫苗的首選對象。本研究中，LSDV/FJ/CHA/2021株作為親本病毒，以TK基因作為靶基因，將兩個同向的LoxP位點添加在病毒基因組中，構建了RFP標記TK基因缺失的轉移載體（pUC19T-LSDV-LoxP-ΔTK/ORF67-LoxP-RFP），將痘病毒早晚啟動子（pmH5）控制下的增強型紅色熒光蛋白表達框，插入到LSDV/FJ/CHA/2021株基因組中，通過細胞亞克隆和挑取單細胞，成功構建了表達RFP的LSDV毒株（LSDV-LoxP-ΔTK-LoxP-RFP），為后續LSD基因缺失疫苗的研制提供候選毒株，為研究新型基因工程弱毒疫苗奠定基礎。

Cre-LoxP系統是一種位點特異性重組系統，在重組痘病毒方面運用廣泛，高月花等［17］首先構建出了帶有loxP位點和GFP的AIV H5/GFP株，之后通過Cre酶處理后，得到了不帶GFP的AIV H5 株重組病毒。鄭其升等［18］以大腸桿菌黃嘌呤-鳥嘌呤磷酸核糖轉移酶（Eco gpt） 為篩選標記，構建重組轉移載體pLRgpt-ORF5/ORF6。pLRgpt-ORF5/ORF6轉染至BHK-21細胞，感染MVA毒株，通過藥物選擇性培養基（MXHAT）在24孔板上進行連續篩選純化，得到重組病毒 rMVAgpt-GP5/M。將rMVAgpt-GP5/M感染BHK-Cre，成功獲得了刪除篩選標記的重組病毒rMVA-GP5/M。Cre蛋白是一種位點特異性DNA重組酶，可催化DNA分子中特定位點之間的DNA重組［19］。該系統的作用方式：i）如果兩個LoxP位點位于一條DNA鏈上，但方向相反，Cre重組酶能導致兩個LoxP位點間的序列翻轉；ii）如果兩個LoxP位點位于一條DNA鏈上，并且方向相同，Cre重組酶能有效切除兩個LoxP位點間的序列；（Ⅲ）如果兩個LoxP位點分別位于兩條不同的DNA鏈或染色體上，Cre酶能介導兩條DNA鏈的交換或染色體易位。這個系統的優點是操作非常簡單，不需要額外的因素進行重組。應用Cre-LoxP系統可在基因水平上通過Cre重組酶識別序列兩端的LoxP位點，介導2個LoxP位點間的DNA序列發生特異性敲除或重組，從而實現目的基因的敲除［11］。本研究中，為了后續LSDV基因工程疫苗的研制，基于基因組中含有同向LoxP位點的紅色熒光標記，利用MDBK-Cre細胞系外源提供的Cre重組環化酶，將RFP標簽蛋白從重組病毒基因組中進行了無痕刪除，構建了TK基因缺失無熒光標記的LSDV-ΔTK毒株，拓展了Cre-LoxP系統的應用范圍，為后續LSDV基因缺失疫苗的研制提供候選毒株，為研究新型基因工程弱毒疫苗奠定基礎。

4 結 論

應用Cre-LoxP系統構建的牛結節性皮膚病病毒LSDV毒株的TK基因缺失株，具有良好的遺傳穩定性和復制生長特性，為后續LSDV基因工程疫苗的研制提供了候選毒株。

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（編輯 白永平）