山葡萄基因VaEXO11及其啟動子的克隆與序列分析

摘要：【目的】探究歐洲葡萄基因VvEXO11在山葡萄中的同源基因VaEXO11的表達及功能，為揭示葡萄抗寒分子通路、培育新的抗寒葡萄品種提供理論依據。【方法】克隆并分析VaEXO11及其啟動子PVaEXO11序列，通過瞬時轉化煙草探究PVaEXO11與低溫脅迫的關系。【結果】從VaEXO11克隆到的cDNA序列全長為957bp，其中ORF為957bp，編碼318個氨基酸。該基因僅由1個外顯子構成，其蛋白含有一個高度保守的Phi_1結構域和一個信號肽，絲氨酸含量豐富，經預測為疏水脂溶性蛋白。對克隆到的PVaEXO11進行順式作用元件預測，分析結果表明，PVaEXO11不僅含有CAAT-box、TATA-box等核心啟動子元件，還具備參與干旱脅迫、晝夜節律調控和創傷響應等功能響應元件。瞬時轉化結果表明，低溫激活PVaEXO11的活性，VaEXO11的相對表達量迅速上升，直接或間接促進細胞內抗氧化酶的產生。【結論】VaEXO11除了參與低溫調控，還可能參與多種逆境相關的調控，從而響應多種生物與非生物脅迫。

關鍵詞：山葡萄；VaEXO11；啟動子；序列分析

中圖分類號：S663.1文獻標志碼：A文章編號：1009-9980（2024）07-1285-12

Cloning and sequence analysis of VaEXO11 and its promoter in Vitis amu-rensis

YIN Xiao，XU Wendi，LI Juan，MADenghui，LIU Chengmin，SHAN Shouming*

（College of Enology and Horticulture，Ningxia University，Yinchuan 750021，Ningxia，China）

Abstract：【Objective】Low temperature is one of the important climatic factors affecting crop yield and quality.It is urgent to study the mechanisms of low temperature at the molecular and genetic levels and to find ways to improve plant cold resistance.According to the previous transcriptome analysis，it was found that six members of the VvEXO family in Muscat were up-regulated under low temperature conditions，among which VvEXO11 was found to be the most significantly up-regulated.The analysis of the expression profile of VvEXO showed that VvEXO11 responded to low temperature stress in grape-vines at early stage，and its role in the response to low temperature stress needed to be further studied.Vitis amurensis has been widely studied in cold resistance breeding.In this study，VvEXO11 and its pro-moter sequence in V.amurensis were cloned and analyzed by bioinformatics methods，and the function of VaEXO11 was preliminarily predicted，thus providing clues for further gene function verification，and revealing the new cold-resistant grape varieties.【Methods】Using V.amurensis as the test material，DNA and total RNA were extracted using DNAsecure novel plant genomic DNA extraction kit and RNAprep Pure polysaccharide and polyphenol plant total RNA extraction kit produced by Tiangen Bio-chemical Technology Co.The total RNA and DNA were extracted according to the product instructions.Using qualified total RNA as template，TransScript one-step gDNA removal and cDNA synthesis kit was used to reverse-transcribe the RNA into cDNA according to the instructions.The cDNA obtained by reverse transcription of V.amurensis RNA and extracted V.amurensis DNA were used as templates，respectively，based on the EXORDIUM sequence fragments obtained by sequencing the V.amurensis transcriptome and combined with the design of primers VaEXO11-F/VaEXO11-R，PVaEXO11-F/PVaEXO11-R for the amplification of ORF and promoter of the target gene.The PCR amplification products were de-tected by 1.2%agarose gel electrophoresis and DNA Marker DL2000.The amplified DNA fragments were recovered and ligated to the cloning vector，and then the connected products were transformed into the receptor state of DH5“Escherichia coli by heat shock method.After antibiotic screening and colo-ny PCR detection，positive clones were selected for sequencing.The promoter sequence of VaEXO11 gene in grape was firstly cloned and then analyzed by the Plant CARE（http：//bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/）to predict promoter cis element.The relationship between promoter PVaEXO11 and low temperature stress was investigated by transient transformation of tobacco.【Results】The cD-NA sequence of VaEXO11 gene cloned from the grapevine was 957 bp，and its open reading frame was 957 bp，encoding 318 amino acids.DNA sequence analysis of VaEXO11 revealed that VaEXO11 consist-ed of only one exon，which had only 6 nucleotides different from VvEXO11.The conserved domain analysis of VaEXO11 protein showed that VaEXO11 protein contained only one conserved domain，Phi_1 domain.VaEXO11 and VvEXO11 protein sequence comparison revealed that there were only 3 amino ac-id differences between them.The basic physical and chemical properties of VaEXO11 protein were ana-lyzed by Protparam.The molecular weight of VAEXO11 protein was 33855.58 Da and the theoretical isoelectric point（pI）was 9.15.In amino acid composition，serine（Ser）content was the highest，reach-ing 12.3%，followed by leucine（Leu）and glycine（Gly），which were 11.3%and 8.8%，respectively.The instability index（Ⅱ）was 31.75，indicating that the protein was stable.The Grand average of hydropath-icity（GRAVY）is-0.082 and the Aliphatic index is 85.03，indicating that it was a hydrophobic fat-solu-ble protein.Analysis of grape genome data showed that EXL11 was present on the 18th chromosome of grape.Grape PVaEXO11 promoter contained multiple action elements.In addition to core promoters like CAAT-box and TATA-box，some functional response elements were also found，including hormone re-sponse elements，action elements involved in drought stress，circadian rhythm regulation and trauma re-sponse elements.Phylogenetic analysis showed that besides V.vinifera and V.riparia，Tripterygium wil-fordii was closely related to VaEXO11.Transient transformation result in tobacco showed that low-tem-peratureactivation of promoter activity induced a rapid increase in the relative expression of VaEXO11，directly or indirectly promoting the production of intracellular antioxidant enzymes，thereby reducing the damage of low-temperature to cells and improving cold resistance.【Conclusion】In this study，VaEXO11 gene was cloned from V.amurensis.The similarity of VaEXO11 sequence with VvEXO11 se-quence in Pinot Noir was 99.37%，and the similarity of protein sequence with VvEXO11 sequence was 98.75%.The protein contained a highly conserved Phi_1 domain and a signal peptide，which was pre-dicted to be a hydrophobic fat-soluble protein.The cis-acting elements was predicted in cloned promot-er sequence，and it was found that the promoter region contained a variety of elements related to stress，indicating that the gene may participate in response to a variety of biological and abiotic stresses.Then，the relationship between VaEXO11 and low temperature was explored，and it was preliminarily speculat-ed that low temperature could activate the promoter activity and induce the relative expression of VaEXO11 to increase rapidly，directly or indirectly promoting the production of antioxidant enzymes in cells，and thereby reducing the damage of low temperature to cells and improving cold resistance.

Keywords：Vitis amurensis;VaEXO11;Promoter;Sequence analysis

EXO（EXORDIUM）是一個能促進植物生長并響應油菜素內酯（BR）誘導的基因，在擬南芥中被首次發現并命名[1]，EXO的過量表達可以使野生型植物的芽和根生長更強[2]?；騿幼油ǔＵJ為是基因結合轉錄因子的位點，位于結構基因5'端上游的DNA序列，能活化RNA聚合酶，使之與模板DNA準確地結合并具有轉錄起始的特異性[3]。啟動子包含兩大區域，一是含有核心啟動子元件（TATA-box）和轉錄起始位點（TSS）的核心區；二是調控元件區，包括應答順式作用元件和增強元件。啟動子上的順式作用元件可以和轉錄因子基因結合，調控下游基因的轉錄。基因發揮功能的第一步是轉錄為mRNA，而啟動子與轉錄因子調控特定基因表達是植物發揮自身調控能力最重要的方式之一[4]。Far-rar等[5]克隆了擬南芥中EXO基因及啟動子，并驗證了二者的活性。EXO是一種細胞外蛋白，蛋白質組學方法確定擬南芥EXO/EXL蛋白家族的成員，如EXO、EXL1、EXL2、EXL3和EXL4蛋白是細胞壁蛋白組的一部分[6-9]。目前還沒有關于EXO/EXL基因家族對低溫脅迫或其他非生物脅迫反應的詳細報道。Wei等[10]分析了桑寄生[Taxillusi chinensis（DC.）Danser]種子在低溫脅迫下的轉錄組，在普遍上調的基因中發現了3個共同上調表達的編碼EX-ORDIUM的基因。在擬南芥中，EXL3在低溫脅迫時上調表達；EXL1和EXO在干旱脅迫時上調表達，EXL6下調表達；此外，EXL5在兩種脅迫下都上調表達，EXL2、EXL4下調表達，表明EXO/EXL基因家族對非生物脅迫有反應，并且還參與了干旱和低溫脅迫共表達網絡的調控[11]。然而，關于該蛋白家族在葡萄中的成員數量，EXO蛋白的功能以及對低溫脅迫反應的表達模式，目前還沒有系統的報道。

葡萄是世界上栽培范圍廣、經濟效益高的水果之一。葡萄產業的穩定和可持續發展持續受到各種外部環境壓力的挑戰，包括生物和非生物脅迫。其中，低溫成為影響葡萄的生長和發育、果實品質和產量的主要因素。因此，提高葡萄的抗寒性被視為育種計劃的一個重要目標，以防止冬季嚴重的冷害或者凍害。山葡萄（Vitis amurensis）是常見的野生葡萄種類，可以承受-40℃的低溫，已被廣泛用于傳統育種和培育耐寒栽培品種[12]。然而，由于葡萄的生命周期長，釀酒葡萄的遺傳背景復雜，通過傳統的雜交育種來改善葡萄種質面臨挑戰[13]，基因工程在育種過程中提供了另一種可行策略。為此，明確山葡萄抗寒性的冷反應機制，并研究有價值的冷反應基因，在葡萄遺傳改良中具有重要作用。通過對筆者實驗室前期研究結果分析發現，在低溫條件下，玫瑰香葡萄中有6個VvEXO家族成員上調表達，其中VvEXO11上調最為顯著。對VvEXO的表達譜分析發現，VvEXO11在葡萄中能對低溫脅迫做出快速反應，可以進一步研究其在相應低溫脅迫中的作用。山葡萄作為一個抗寒性極強的葡萄種類被廣泛研究，因此克隆山葡萄中VaEXO11基因及其啟動子序列并進行生物信息學分析，對VaEXO11的功能做出初步預測，從而為進一步的基因功能驗證提供線索。

1材料和方法

1.1植物材料

供試材料為中國科學院武漢植物園園藝作物逆境生物學課題組保存的山葡萄組培苗，培養基為1/2 MS培養基+30 g·L-1蔗糖+7 g·L-1瓊脂+0.1 mg·L-1 IAA，光周期為16 h光照/8 h黑暗，光照度為100μmol·m-2·s-2，培養溫度為26℃。

本氏煙草種子保存在4℃冰箱中，使用前將其取出播種至蛭石與泥炭土1∶2（體積比）的花盆中，蓋上薄膜黑暗培養2 h后在16h光照/8 h黑暗的光周期條件下生長，培養溫度為25℃，隨后用于LUC檢測的瞬時轉化。

1.2方法

1.2.1 DNA提取、總RNA提取與cDNA合成以山葡萄為試材，使用天根生化技術有限公司生產的DN-Asecure新型植物基因組DNA提取試劑盒和RNA-prep Pure多糖多酚植物總RNA提取試劑盒分別提取DNA和總RNA，按產品說明書進行操作并稍作改動。以檢測合格的葡萄總RNA為模板，采用全式金生物技術有限公司生產的TransScript一步法gDNA去除及cDNA合成試劑盒并按說明書將RNA反轉錄為cDNA。反轉錄體系為：RNA樣品1μg（根據測得的RNA濃度計算所用RNA體積），oligo（dT）18 1μL，2×TS Reaction Mix 10μL，TransScript RT/RI Enzyme Mix 1μL，gDNA Remover 1μL，RNase-free Water補足到20μL，42℃孵育50 min，85℃加熱5 s使逆轉錄酶失活。提取的DNA和合成的cDNA在-20℃存儲備用。

1.2.2引物合成以中國科學院武漢植物園園藝作

物逆境生物學課題組未發表的山葡萄轉錄組數據庫中得到的VaEXO11序列片段為基礎，結合已公布的黑比諾葡萄基因組注釋信息，運用Primer Premier 5.0軟件設計擴增VaEXO11編碼區全長的引物和編碼區ATG上游2000bp啟動子引物，引物合成與測序均由北京擎科生物科技有限公司（武漢）完成。本文所用到的引物如下：

含有EcoRⅠ同源臂的擴增VaEXO11編碼區的引物：

VaEXO11-F：GACACTAGTGGATCCAAAGA-ATTCATGGCATCTTTCGTTCCTACTCAAT，

VaEXO11-R：TCCCTCGAGAAGCTTTTTGAA-TTCGACCAGAGTAGAACAGGTGGAAGTT。

含有SpeⅠ同源臂的擴增VaEXO11啟動子PVaEXO11的引物：

PVaEXO11-F：CCCGGGGGATCCACTAGTTCATA-TATTAGTCCCACCGATATCC，

PVaEXO11-R：GGCCGCTCTAGAACTAGTGGCA-GTTAGGACTTAAGAGTGCAGT。

1.2.3 PCR擴增與質粒提取分別以山葡萄RNA反轉錄得到的cDNA和提取的山葡萄DNA為模板，根據山葡萄轉錄組測序得到的EXORDIUM序列片段并結合設計引物VaEXO11-F/VaEXO11-R，PVaEXO11-F/PVaEXO11-R進行目的基因ORF和啟動子的擴增。克隆該基因全長用1.2%瓊脂糖凝膠電泳和DNA Marker DL2000檢測PCR擴增產物，將擴增得到的DNA和cDNA片段回收并連接克隆載體，然后利用熱激法將連接產物轉化到DH5α大腸桿菌感受態中，經抗生素篩選和菌落PCR檢測，挑取陽性克隆送往北京擎科生物科技有限公司（武漢）進行測序。將測序正確的菌液接種于10 mL含10μL Spe/Kan（100 mg·L-1）的LB液體培養基中，在37℃、220 r·min-1搖床上振蕩培養12～14 h，利用質粒小提試劑盒提取質粒，操作參考說明書并稍作改動。用1.2%瓊脂糖凝膠電泳檢測質粒質量，將合格的質粒置于-20℃儲存備用。

1.2.4序列生物信息學分析采用SMART 7（https：//smart.embl.de/）和Pfam（http：//pfam-legacy.xfam.org/）確認VaEXO11蛋白的結構域，采用ExPASy-ProtParam（https：//web.expasy.org/protparam/）分析VaEXO11蛋白的物理化學特性。使用基因結構顯示服務器2.0（http：//gsds.gao-lab.org/）分析VaEXO11基因內含子/外顯子結構。采用SignalP-6.0（https：//services.healthtech.dtu.dk/services/SignalP-6.0/）預測信號肽種類。利用NetPhos 3.1 Server（https：//servic-es.healthtech.dtu.dk/services/NetPhos-3.1/）預測VaEXO11蛋白磷酸化位點。通過DNAMAN9進行DNA和氨基酸序列比對分析，利用MEGA11構建系統進化樹。利用BDGP（https：//fruitfly.org/seq_tools/promoter.html）分析核心啟動子。通過網絡分析工具PlantCare（https：//bioinformatics.psb.ugent.be/webt-ools/plantcare/html/）分析VaEXO11起始密碼子上游啟動子序列中的順式作用元件。最后，采用TB-tools 10軟件分析可視化啟動子序列的順式作用元件。

1.2.5 PVaEXO11啟動子瞬時表達分析用凍融法將獲得的重組質粒pGreen 0800-PVaEXO11-LUC和空載pGreen 0800-LUC轉入根癌農桿菌GV3101，并檢測LUC熒光活性，將檢測正確的陽性克隆用于煙草瞬時轉化，瞬時轉化主要參考Sheludko等[14]的方法。將瞬時轉化得到的煙草置于低溫光照培養箱中8℃處理2 h，室溫恢復15 min后進行LUC觀察。以1∶200（體積比）配置熒光素酶鉀鹽溶液3 mL，用毛筆涂在煙草葉片背面，背面朝上，放入多功能成像系統中拍照，選擇化學發光，曝光時間為5min。

2結果與分析

2.1 VaEXO11和PVaEXO11序列的獲得

分別以山葡萄RNA反轉錄得到的cDNA和提取的山葡萄DNA為模板，根據山葡萄轉錄組測序得到的EXORDIUM序列片段并結合設計引物VaEXO11-F/VaEXO11-R，PVaEXO11-F/PVaEXO11-R進行目的基因ORF和啟動子的擴增，得到該基因全長和啟動子（圖1）。經測序分析，PCR擴增得到的目的基因的序列長度為957 bp，利用DNAMAN9進行序列比對，發現該基因與Phytozome上葡萄基因組中編號為VvEXO11的基因序列相似度高達99.37%（圖2），蛋白相似度達98.75%（圖3）。啟動子長度為1938 bp，與VvEXO11啟動子序列相似度達65.02%（圖4），與預測結果基本一致，故將山葡萄中擴增得到的目的基因命名為VaEXO11，其啟動子為PVaEXO11。

2.2 VaEXO11基因序列特征分析

該基因的cDNA序列全長為957 bp，開放閱讀框為957 bp，編碼318個氨基酸。對VaEXO11的DNA序列分析發現，VaEXO11僅由1個外顯子（ex-on）構成，與VvEXO11序列比對發現，二者僅有6個核苷酸差異（圖2）。對VaEXO11蛋白進行保守結構域分析表明，該蛋白僅含有一個保守結構域，即Phi_1結構域（Phosphate-induced protein 1 domain），同時，該蛋白前25個氨基酸形成一個信號肽Sec/SPI，是一種由Sec轉座運輸并由信號肽酶Ⅰ（Lep）裂解的“標準”分泌性信號肽（圖5），裂解點位于A25～A26之間（圖6-A）。通過NetPhos 3.1 Server預測該蛋白共71個磷酸化位點（圖6-B），其中陽性結果36個，包括絲氨酸（Serine）25個，蘇氨酸（Threonine）9個和酪氨酸（Tyrosine）2個。VaEXO11與VvEXO11蛋白序列比對發現，二者僅有3個氨基酸差異（圖3）。用Protparam對VaEXO11蛋白的基本理化性質分析，結果顯示，該蛋白的分子質量為33 855.58 Da，理論等電點（pI）為9.15；在氨基酸組成上，絲氨酸（Ser）含量最高，達12.3%，其次為亮氨酸（Leu）和甘氨酸（Gly），分別為11.3%和8.8%；不穩定系數（in-stability index，Ⅱ）為31.75，表明該蛋白穩定性較好；平均疏水性系數（grand average of hydropathicity，GRAVY）為-0.082，脂溶指數（aliphatic index）為85.03，表明其為疏水性脂溶蛋白。另外，對葡萄基因組數據分析顯示，EXL11存在于葡萄第18條染色體上。

2.3 VaEXO11系統發育分析

為了探究山葡萄中VaEXO11蛋白與其他物種的EXO蛋白的關系，用VaEXO11蛋白在NCBI進行blastn，選擇不同物種中相似度最高的序列，共篩選到27個EXO11蛋白序列。對已克隆的VaEXO11與27個其他物種的EXO11基因的氨基酸序列進行多序列比對分析，并構建系統發育樹。通過氨基酸序列比對發現（圖7），包括VaEXO11在內的28個EXO11氨基酸長度相近，序列相似度達77.99%，均含有相似的結構域，序列較為保守，尤其是N端FAYIWVGNSETQCFGQCAWPFHQFIYGFQ比例極高。從系統發育分析來看（圖8），與VaEXO11關系較近的除了釀酒葡萄（V.vinifera）和河岸葡萄（V.ri-paria）外，還有雷公藤（Tripterygium wilfordii）。

2.4低溫處理下VaEXO11的表達分析

轉錄組的結果表明，VvEXO11能被低溫誘導表達，為了進一步研究其詳細的表達模式，筆者利用熒光定量PCR對山葡萄中VaEXO11在低溫處理24 h內的表達模式進行分析（圖9）。山葡萄VaEXO11基因在4℃低溫下不同冷處理時間點的定量RT-PCR分析表明，冷處理早期（0～2 h），該基因的表達量就發生明顯的變化，并且在2h達到最高值，約為0h的4250倍，說明VaEXO11基因能夠快速響應冷脅迫。RNA-Seq與qRT-PCR獲得的基因表達模式高度一致，表明本研究中VaEXO11基因可能在山葡萄的低溫響應中發揮作用。

2.5啟動子PVaEXO11序列分析

以山葡萄轉錄組數據庫中的VaEXO11基因上游一段-2000 bp序列為模板設計引物，以提取的山葡萄DNA為模板擴增VaEXO11的啟動子PVaEXO11，得到一段長1938 bp的DNA序列，與VvEXO11起始密碼子上游-2000 bp啟動子比對（圖4）發現，二者相似度達65.02%。核心啟動子分析表明（圖10），其位于-1833～1883 bp之間，轉錄起始位點在-1873 bp處，進一步證明克隆的VaEXO11基因cDNA序列的5'端是完整的。

通過Plant CARE（http：//bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/）預測啟動子順式作用元件，結果表明，VaEXO11的啟動子PVaEXO11含有激素響應元件如P-box（赤霉素元件）、TGACG-motif（茉莉酸甲酯元件）、TCA（水楊酸元件）、ERE（乙烯元件）、AAGAA-motif（脫落酸元件），脅迫響應元件如MYB（MYB響應元件）、MYC（MYC響應元件）、W-box（WRKY轉錄因子結合位點）、STRE（脅迫響應元件）、WUN-motif（創傷響應元件）等，另外還有參與晝夜節律調控順式調節元件和無氧誘導所必需的順式調節元件，相關預測結果如表1所示。

2.6啟動子瞬時表達分析

為了探究啟動子是否響應低溫脅迫，將構建好的pGreen 0800-PVaEXO11-LUC重組載體和pGreen0800-LUC空載進行農桿菌（GV3101）轉化，將空載和包含重組載體的農桿菌液注射本氏煙草葉片，用Dual-LUC報告系統評估轉錄活性。研究結果如圖11所示，4℃處理后pGreen 0800Ⅱ-PVaEXO11活性大于空載，說明低溫能激活VaEXO11啟動子活性。

3討論

利用生物信息學手段對克隆到的基因序列與不同物種中的已知基因進行比對分析，可以對新基因的功能做出初步預測，通過系統進化樹推測其進化過程，從而為進一步的基因功能驗證提供線索。張宇等[15]克隆了雙紅F3'H基因并進行生物信息學分析，發現該基因與雙豐中的F3'H基因序列相似性達到99.67%。Farrar等[5]克隆了擬南芥中長度為945bp的EXO基因，編碼314個氨基酸，生物信息學分析發現該蛋白的N端存在一個信號肽，與煙草中的PHI-1蛋白在氨基酸水平上有76%的同源性。將桉樹中EgPHI-1氨基酸序列和其他43個同源氨基酸序列進行比對，表明這些序列高度保守，EgPHI-1與水稻（Oryza sativa）的AAM08535有64%的相似性，與釀酒葡萄（V.vinifera）的CAO61694有75%的相似性[16]。筆者從山葡萄中克隆到VaEXO11基因，僅由1個外顯子（exon）構成，與黑比諾中的VvEXO11序列相似度達99.37%，蛋白序列相似度達98.75%，其蛋白含有一個高度保守的Phi-1結構域和一個信號肽，絲氨酸含量豐富，經預測其為疏水脂溶性蛋白。與其他27個物種的EXO11蛋白序列比對分析，發現氨基酸長度相近，序列相似度達77.99%，均含有相似的結構域，序列較為保守。系統發育分析表明，與VaEXO11關系較近的除了釀酒葡萄和河岸葡萄外，還有雷公藤。

啟動子包含兩大區域，一是含有核心啟動子元件（TATA-box）和轉錄起始位點（TSS）的核心區；二是調控元件區，包括應答順式作用元件和增強元件，調控元件的種類和數量直接影響基因的表達模式和表達強度[17]。張宇等[15]克隆了雙紅F3'H基因上游1051 bp啟動子序列并預測啟動子可能存在的順式作用元件，分析發現，F3'H基因啟動子除含有典型的TATA-box、CAAT-box和參與光反應的順式作用元件GT1-motif、TCCC-motif、Box4外，還有參與缺氧特異性誘導性的增強子元件（GC-motif），以及與分生組織表達有關的順式作用調控元件（CAT-box）、參與水楊酸反應的順式作用元件（TCA-ele-ment）和傷口反應元件（WUN-motif）等。薛竟一等[18]克隆了釀酒葡萄VvMT2上游783 bp啟動子序列，順式作用元件預測分析表明，序列中有TATA-box、CAAT-box、ARE、GAG-motif、Box-4等12個可能的啟動子上游調控元件，推測將參與響應脅迫與激素等過程。據報道，AtEXL1的啟動子區域也存在受光照、晝夜節律周期和厭氧條件調控的順式元件，同時發現其在低輻照度、長期黑暗和缺氧條件下表達量升高[19]。將本試驗克隆到的啟動子序列進行順式作用元件預測，發現葡萄PVaEXO11啟動子含有多個作用元件，除了CAAT-box、TATA-box等核心啟動子外，還有一些功能響應元件，包括激素類響應元件、參與干旱脅迫的作用元件、參與晝夜節律調控的元件和創傷響應元件等。葡萄VaEXO11基因的啟動子含有多種順式作用元件，推測VaEXO11基因參與葡萄復雜的調控網絡，與葡萄生長發育及逆境響應等多種生命活動有密切聯系。

植物在遭受低溫脅迫時會產生各種生理和分子變化，包括影響某些蛋白質、代謝物和植物激素水平的轉錄、翻譯和代謝變化[20]。Zheng等[21]和Degen-kolbe等[22]分析山葡萄在低溫脅迫下轉錄組數據，發現有1000多個轉錄本的表達量在低溫脅迫下上調，同時還發現膜脂質成分的動態變化，而膜的穩定性是低溫脅迫條件下細胞生存的必要條件。以前的研究已經注意到EXO對植物細胞的重要性[2，5]。EXO基因家族的成員已被證明在擬南芥中執行其他功能，擬南芥中的EXO定位于細胞壁并介導細胞擴張，而exo突變體的葉片大小、根長和生物量減少，外生葉尺寸減小是由于表皮細胞和薄壁細胞的擴張減少[1]。有研究表明，擬南芥在合成培養基中的低糖供應條件，土壤中的有限光照、延長黑暗期以及缺氧條件下，其正常生長離不開EXL1，該基因促進擬南芥在上述生長條件下對新陳代謝和生長進行全面的適應[23]。然而EXO基因家族在低溫脅迫下的研究還未見報道。

通過對筆者實驗室前期研究結果分析，發現在低溫條件下，玫瑰香葡萄中有6個VvEXO家族成員上調表達，其中VvEXO11上調最為顯著。山葡萄是耐寒性極強的葡萄種類，通過研究VvEXO11在山葡萄中的同源基因VaEXO11的表達及功能，以期為揭示葡萄抗寒分子通路、培育新的抗寒葡萄品種提供理論依據。經測序分析，筆者發現了一個有趣的現象，即PCR擴增得到的目的基因的序列長度為957bp，利用DNAMAN9進行序列比對，發現該基因與Phy-tozome上葡萄基因組中編號為VvEXO11的基因序列相似度高達99.37%，蛋白相似度達98.75%；但是克隆得到的啟動子PVaEXO11長度為1938 bp，與啟動子PVvEXO11序列相似度只有65.02%。分析發現，克隆得到的啟動子序列靠近起始密碼子ATG的500bp啟動子序列相似性達93.3%，其余部分差異較大，可能是葡萄種間進化的差異所造成的[24]。通過LUC驗證了低溫能激活VaEXO11的啟動子PVaEXO11的活性，因此推測，低溫通過激活VaEXO11上游啟動子的活性來提高VaEXO11的表達量，從而提高葡萄的耐寒性。

4結論

筆者初步推測低溫能夠激活啟動子活性從而誘導VaEXO11的相對表達量迅速上升，直接或間接促進細胞內抗氧化酶的產生，減輕低溫對細胞的傷害，提高葡萄抗寒性。研究還發現PVaEXO11含有多種與逆境脅迫相關的元件，說明該基因可能參與多種逆境脅迫的調控。

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