摘要:紅曲菌(Monascus)作為一種藥食同源的微生物,在我國具有悠久的應用歷史。近年來,隨著生物技術的不斷進步,紅曲菌固態發酵技術優化取得了顯著成果,為紅曲菌功能性成分的高效生產和應用提供了新思路。文章闡述了紅曲菌固態發酵技術的研究進展,探討了發酵過程的優化及其在食品、醫藥等領域的應用前景。
關鍵詞:紅曲菌;固態發酵;功能性成分;優化;應用前景
中圖分類號:TS201.3文獻標志碼:A文章編號:1000-9973(2025)03-0219-04
Optimization and Application of Solid-State Fermentation
Technology of Monascus
CHEN Yang1, YANG Ya-jing1, SONG Lai-sheng2, HONG Hou-sheng1,3*
(1.College of Biotechnology and Pharmaceutical Engineering, Nanjing Tech University, Nanjing 211816,
China; 2.College of Chemistry and Molecular Engineering, Nanjing Tech University,
Nanjing 211816, China; 3.Nanjing Huike Bioengineering Equipment Co., Ltd.,
Nanjing 210009, China)
Abstract: As a homologous microorganism of medicine and food, Monascus has a long history of application in China. In recent years, with the continuous progress of biotechnology, the optimization of solid-state fermentation technology of Monascus has achieved remarkable achievements, which has provided new ideas for the efficient production and application of Monascus functional components. In this paper, the research progress of solid-state fermentation technology of Monascus is reviewed, and the optimization of fermentation process and its application prospect in food, medicine and other fields are discussed.
Key words: Monascus; solid-state fermentation; functional components; optimization; application prospect
收稿日期:2024-08-24
基金項目:國家高技術研究發展計劃‘863計劃’項目(2012AA021201)
作者簡介:陳陽(2001—),女,碩士研究生,研究方向:工業微生物固態純培養技術。
*通信作者:洪厚勝(1965—),男,教授,博士,研究方向:生物反應工程及生化反應器。
紅曲菌作為我國源遠流長的發酵文化中的瑰寶,長期以來在民間被廣泛應用。它所產生的代謝物富含多種對人體有益的生物活性,具有降低血脂水平、抗自由基損傷、抑制細菌生長等功效[1]。然而,傳統生產紅曲菌的工藝存在諸多不足,如發酵周期過長、容易受到環境污染且整個生產流程復雜,大大影響了其生產效率和最終產品的品質[2]。
隨著科技的不斷進步和生物技術的迅速發展,科研人員開始嘗試通過現代科學技術手段對紅曲菌進行改良和優化。他們利用先進的固態發酵技術對紅曲菌的發酵過程進行了一系列優化改造,顯著提升了紅曲菌的生產效率與產品的質量。這些技術不僅使得紅曲菌的生產更加環保、高效,為消費者提供了更優質的健康食品選擇,而且推動了我國發酵產業向現代化、科學化的方向發展。
1紅曲菌固態發酵技術優化
1.1發酵工藝優化
通過對發酵條件如溫度、pH、發酵時間等的優化,可以實現紅曲菌代謝產物的高效生產。例如,變溫發酵技術能夠顯著提高莫納可林K(Monacolin K,MK)的產量,Tsukahara等[3]研究表明先采用最適溫度30 ℃進行恒溫發酵,再將溫度降至20 ℃繼續培養的紅曲菌生產的MK產量遠遠高于一直采用恒溫30 ℃培養的紅曲菌生產的MK產量。pH在紅曲菌發酵生產代謝產物過程中發揮著重要的作用,齊文武等[4]研究發現在發酵液pH為3.6時,MK的產量顯著高于3.4,3.8,4.0 3個不同pH處理的樣品。發酵時間的控制與優化可以間接影響代謝產物的生成,孫秋婉等[5]實驗表明紅曲菌在固態培養第24天時,酸式MK產量達到最大值,隨著發酵時間的延長,固態培養基中的營養基質消耗殆盡,酸式MK產量下降,所以確定紅曲菌固態發酵最佳時間為24 d。
除了上述發酵條件的優化外,還可以通過添加碳源、氮源和無機鹽等提高代謝產物的產量,不同種類的添加物達到的效果不同,選擇最佳添加物可以獲得產量最大值。殷倩倩等[6]在培養紅曲菌時,通過單因素試驗,選擇添加量為7%的甘油和添加量為2%的硝酸鈉分別作為最佳碳源和最佳氮源。高晨等[7]添加濃度為2 g/L的硫酸鋅,紅曲菌所產生的色素和MK產量最高。
1.2高產菌株選育
采用分子生物學手段篩選和誘變出高產代謝產物的紅曲菌株,可以從源頭上提高發酵產品的質量和產量。Huang等[8]采用紫外線照射和乙基甲烷磺酸鹽對紅曲菌株進行突變,發現紅曲菌被紫外線照射2 h后,產生最大產量的MK,可達8 437.6 mg/kg。沙見宇等[9]通過紫外誘變篩選出兩株高產MK突變株M7和M8,固態發酵25 d后MK產量分別為12.42,12.49 mg/g,分別比原始菌株MY-11提高了26%、27%。吳雙雙等[10]以不產桔霉素的叢毛紅曲菌(Monascus pilosus)MS-1為出發菌株, 經紫外誘變、氯化鋰化學誘變和紫外-氯化鋰復合誘變得到紅曲菌突變株,其突變株紅曲色素(MPs)的產量較出發菌株提高了23.36%,MK的產量也有大幅度提高。
除了采用紫外照射誘變或紫外復合誘變外,還可以選擇其他的誘變方法進行菌株的選育。牛國強等[11]研究發現,紅曲菌WM951的孢子懸浮液經過常壓低溫等離子體誘變后,其產橙色素和黃色素的能力較出發菌株分別提高了136%和43%。郎天丹等[12]利用北京正負電子對撞機直線加速器E2束流打靶產生高能混合粒子場,以兩株紫色紅曲菌M1、M2為研究對象,通過初篩、復篩和混合顆粒場照射,使突變株M1-20、M2-4發酵液的MK產量分別增加142.14%和101.27%,5次傳代后,MK產量僅降低4.21%和1.65%,證明突變菌株的遺傳穩定性極強,且發酵液中桔霉素含量與出發菌株相比顯著降低。Li等[13]通過整合高效液相色譜法(HPLC)分析和pksCT、ctnA基因擴增,篩選和鑒定出高產MK的菌株。
運用現代分子生物學技術能夠精確地篩選并對紅曲菌進行誘變處理,該方法不僅能從根本上提升紅曲菌發酵過程中的微生物活性,而且能促使其產生更多的代謝產物,從而顯著提高發酵產品的品質和總量。這種研究策略有望在未來徹底改變食品工業和其他生物制造領域,使之向著更加高效、環保和可持續發展的方向前進。
1.3分子水平的代謝途徑控制
運用基因組學和蛋白組學方法分析代謝產物的代謝途徑,通過基因改造或添加特定物質調控代謝途徑,可以進一步提高代謝產物的產量。Zhang等[14]在原始培養基中加入谷氨酸后,過表達菌株的MK產量可以進一步提高,其原因是添加谷氨酸后,MOKC和MOKG的表達顯著增加。MOKC基因控制MK合成途徑中P450單加氧酶的表達,增加其表達可增加莫納可林J(Monacolin J,MJ)等中間產物的用量,進而提高MK的產量。MOKG 基因控制MK合成途徑中HMG-COA還原酶的表達。HMG-COA還原酶是一種限制性內切酶,其上調可以促進產物的產生,最終提高MK的產量。Zhang等[15]通過過表達4個基因(MOKC、MOKD、MOKE 和 MOKI)來改善紅曲菌中MK的產生。另外,Yin等[16]還研究了20種游離氨基酸對基因轉錄的影響,發現組氨酸和蛋氨酸可以調節MPS的生物合成。Huang等[17]也表明,微粒處理顯著上調了參與MPS生物合成的關鍵基因的表達,即PKSPT、PKSCT、MPPB、MPFASA2、MPFASB2和MPPKS5,在Gong等[18]的研究中,處理基因(MPPKS5、MPFASA2、MPPA~MPPG、MPP7、MPPR1 和 MPPR2)的上調可以增加相對酶活性,從而增強了MPS的生物合成。此外,MPPC、MPP7 和 MPPG 的上調促進了紅曲菌中橙色素向黃色素和紅色素轉化。
在現代生物學研究中,基因組學和蛋白組學的結合使用已經成為一種革命性的工具。通過該方法,科學家們能夠深入解析生物體內代謝產物的復雜網絡,這些途徑涉及一系列精細的化學反應和酶的作用過程。借助這種先進的技術手段,研究者們可以對代謝路徑進行精確的設計和改造,甚至添加新的物質來調節這些路徑的效率。通過這樣的努力,不僅可以提高目標代謝產物的產量,而且能夠優化其質量,使之更符合人類或工業應用的需求。該方法為生命科學領域帶來了前所未有的控制力和靈活性,推動了從基礎研究向實際應用轉化的步伐。
2紅曲菌固態發酵的應用
2.1功能性紅曲及應用
1979年,Endo等[19]從紅曲霉中發現了一種能抑制膽固醇合成的化合物MK。正常狀態下,MK呈白色針狀晶體,在多種有機溶劑中極易溶解。1980年,Alberts等[20]從土曲霉中分離出一種與MK類似的化合物洛伐他汀(lovastatin),后續研究也證實了MK與洛伐他汀為同一化合物。MK的降膽固醇機制:MK與羥甲基戊二酸單酰輔酶A(HMG-CoA)具有高度相似性,可競爭結合調控膽固醇合成的關鍵酶HMG-CoA還原酶,減少體內膽固醇的合成[21];此外,它還能促進低密度脂蛋白(LDL)受體的合成,加速膽固醇的分解,達到降低膽固醇的目的[22]。
功能性紅曲是指洛伐他汀含量在0.4%以上的紅曲,利用固態發酵技術生產的功能性紅曲富含MK等活性成分,已開發成多種降血脂藥物,洛伐他汀是目前歐美國家高血脂的首選用藥[23]。Cicero等[24]從紅曲米的代謝產物中提取MK,制作降血脂藥物,并且探討了紅曲米的安全性。Liasi等[25]通過臨床試驗研究了不同劑量的MK對血液中膽固醇水平的影響。Bruno等[26]研究發現,紅曲補充劑含量在4~48 mg/kg范圍內能顯著降低血脂異常人群的甘油三酯、總膽固醇和低密度脂蛋白(LDL)含量,并能提高高密度脂蛋白(HDL)的濃度。
此外,功能性紅曲產品也可用于其他領域。例如,高凱等[27]以松遼黑豬為試驗材料,通過添加紅曲菌合生元,觀察其對松遼黑豬血清蛋白、血清轉氨酶、血脂指標及MSTN和Myo D基因表達量的影響,探討其與紅曲菌的作用機制。研究發現,紅曲菌合生元對松遼黑豬體內的膽固醇及改善其瘦肉率的作用均有顯著影響。李泳寧等[28]以288只32周齡海蘭褐蛋雞為材料,通過添加0.5%和1.0%的紅曲霉,研究其對蛋雞的生長發育和雞蛋品質的影響,結果表明實驗組與對照組相比,不僅蛋黃中的膽固醇含量下降,而且提高了蛋的品質。
2.2在食品工業中的應用
MPs作為天然食品著色劑,在食品行業,尤其是肉制品領域得到廣泛應用。羅章等[29]以藏香豬為試材,采用不同添加量的MPs對藏香豬肉的儲藏保鮮效果進行研究。研究發現,在貯存期間,MPs能明顯提高肉糜膠體的持水性、顏色和質地,并且發現紅曲霉處理能明顯抑制肉糜中羰基、揮發性鹽基氮(TVB-N)、硫代巴比妥酸反應物(TBARS)等活性物質的形成,還能抑制肉糜中脂類、蛋白類的氧化,且其效果尤為明顯。于慧慧等[30]在新鮮冷鮮肉中加入不同濃度的MPs,并檢測其在0~9 d貯藏期間各項理化指標,結果表明,MPs對豬肉具有顯著的保鮮效果。
在生產腌肉時,往往會向肉品中加入亞硝酸鈉,以提高肉品的色澤,延長肉品的保質期[31]。但是,攝入太多亞硝酸鈉會對身體產生傷害,而亞硝酸根的殘留物也會形成一種對人類具有致癌效應的致癌物[32]。然而,MPs是一種安全、無毒的天然食物色素,它可以代替亞硝酸鈉對肉制品進行染色。王也等[33]研究表明,在肉制品中加入一定量的MPs,其含量僅為肉品質量的0.001%時,就可以在色澤和質地上與亞硝酸鹽相媲美。王柏琴等[34]研究了以MPs替代亞硝酸鹽對發酵香腸著色的影響,結果表明,含0.16% MPs的香腸顏色接近含0.015%亞硝酸鹽的香腸,盡管MPs的使用量大于亞硝酸鹽,但其安全性更高。
另外,MPs在其他領域也有廣泛應用。例如,李劍等[35]以軟歐包為研究對象,通過單因素實驗與正交實驗研究了MPs對面包產品的風味、色澤、質地、風味物質、抑菌效果等的影響。結果顯示,MPs是一種具有強著色和抑菌功能的微生物染色劑。傅金泉[36]以MPs為原料制成的紅曲腐乳具有口感細膩、柔軟、適中和醬香味濃等特點,被廣大消費者所喜愛。
2.3在釀酒工業中的應用
紅曲菌在白酒、黃酒等傳統釀造工業中發揮著重要作用,并且正不斷通過釀造的優化提高酒品的質量和生產效率。在傳統白酒中,酯類以己酸乙酯為主,它對酒的品質有很大的影響,目前應用較多的紅曲菌等微生物能催化己酸和乙醇發生酯化反應,產生己酸乙酯,從而達到提高白酒品質的目的。張超[37]從斜面培養、放大培養兩個角度對紅曲菌的生產工藝進行了闡述。試驗證明,加入或應用紅曲菌能明顯改善傳統白酒的品質。鐘明葉等[38]通過實驗探索了金屬離子對紅曲發酵過程中糖化和酯化活性的影響,實驗以糯米作為基礎原料,利用氣相色譜技術對黃酒中的風味化合物進行深入分析。結果顯示,當在紅曲中添加金屬離子時,所得黃酒的酯類化合物含量明顯超過未添加紅曲的對照組以及未添加金屬離子的紅曲發酵組。此外,在對照組中未檢測到酮類化合物的存在,而在紅曲發酵的黃酒中卻有微量的酮類化合物被檢測出來。宋云剛等[39]為了豐富黃酒的種類,以傳統釀造理論為基礎,采用單因素試驗與正交試驗相結合的方法對香菇紅曲黃酒的釀造技術進行了研究。試驗發現,香菇發酵液添加量為12%、酒曲添加量為3.5%(根霉菌∶米曲霉∶紅曲霉為1∶1∶1)和酵母添加量為0.12%時黃酒的質量最好。
3結論
紅曲菌的固態發酵技術正以前所未有的速度推動著紅曲產品的多元化發展,這一技術不僅拓寬了紅曲產品應用的范圍和深度,而且為其在醫藥、食品、釀酒等領域中的應用提供了更廣闊的前景。隨著科研人員對發酵工藝的不斷深入研究和對菌株改良技術的持續探索,有望實現更高產量的紅曲菌代謝產物。此外,通過對代謝途徑的調控與優化,能夠進一步提高這些代謝產物的品質和功能性,從而滿足市場對高質量產品的需求。未來隨著這些研究的不斷深化,紅曲菌及其代謝產物將在多個領域發揮更大的作用,并為人類健康和社會進步作出更大貢獻。
參考文獻:
[1]蔣沅岐,董玉潔,周福軍,等.紅曲的化學成分、藥理作用及臨床應用研究進展[J].中草藥,2021,52(23):7379-7388.
[2]殷倩倩,左勇.紅曲發酵工藝及相關生物活性物質研究[J].糧食與油脂,2023,36(9):32-35.
[3]TSUKAHARA M, SHINZATO N, TAMAKI Y, et al. Red yeast rice fermentation by selected Monascus sp.with deep-red color, lovastatin production but no citrinin, and effect of temperature-shift cultivation on lovastatin production[J].New Biotechnology,2009,25(2):476-482.
[4]齊文武,陳曉云,鄭世茂,等.高產洛伐他汀的功能性紅曲固態發酵營養液最佳pH值的研究[J].中國食物與營養,2017,23(4):34-37.
[5]孫秋婉,洪厚勝.功能性紅曲固態發酵工藝優化[J].中國釀造,2024,43(1):237-243.
[6]殷倩倩,左勇.高產色素低產桔青霉素紅曲霉菌篩選及發酵工藝優化研究[J].中國調味品,2024,49(2):62-68,78.
[7]高晨,葛曉麗,李松,等.紅曲霉發酵苦蕎產莫納可林K及可溶性黃酮類物質過程控制[J].食品與發酵工業,2025,51(3):120-128.
[8]HUANG C F, SHEN S M, CHEN W T, et al. The effects of mutation and temperature variation on Monacolin K production by Monascus sp. and relative statistical parameter analysis of Monacolin K production[J].Phytochemistry Letters,2019,32(1):143-150.
[9]沙見宇,裴歡,劉曦,等.高產Monacolin K紅曲霉的誘變選育及其與釀酒酵母共酵培養[J].中國釀造,2023,42(2):189-192.
[10]吳雙雙,劉文龍,鄧雪菲,等.紫外-化學誘變篩選高產莫納可林K或色素的紅曲菌株[J].中國釀造,2018,37(11):116-121.
[11]牛國強,黃艷,張薄博,等.常壓室溫等離子誘變選育高產橙、黃色素紅曲菌研究[J].核農學報,2016,30(4):654-661.
[12]郎天丹,梁健,王成濤,等.利用高能混合粒子場誘變選育高產Monacolin K、低產桔霉素的紅曲霉菌株[J].食品工業科技,2016,37(2):165-169.
[13]LI Z Q, LIU Y, LI Y, et al.Screening and identification of Monascus strains with high-yield Monacolin K and undetectable citrinin by integration of HPLC analysis and pksCT and ctnA genes amplification[J].Journal of Applied Microbiology,2020,129(5):1410-1418.
[14]ZHANG C, CHAI S Y, HAO S, et al. Effects of glutamic acid on the production of Monacolin K in four high-yield Monacolin K strains in Monascus[J].Applied Microbiology and Biotechnology,2019,103(13):5301-5310.
[15]ZHANG C, LIANG J, ZHANG A A, et al. Overexpression of Monacolin K biosynthesis genes in the Monascus purpureus azaphilone polyketide pathway[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2019,67(9):2563-2569.
[16]YIN S, ZHU Y Y, ZHANG B, et al.Diverse effects of amino acids on Monascus pigments biosynthesis in Monascus purpureus[J].Frontiers in Microbiology,2022,13:951266.
[17]HUANG Z F, HU T T, LIU H Q, et al.Biosynthesis and polyketide oxidation of Monascus red pigments in an integrated fermentation system with microparticles and surfactants[J].Food Chemistry,2022,394(12):133545.
[18]GONG P F, SHI R Y, TANG J L, et al. Effect of exogenous and endogenous ectoine on Monascus development, metabolism, and pigment stability[J].Foods,2023,12(17):3217.
[19]ENDO A, MONACOLIN K. A new hypocholesterolemic agent produced by a Monascus species[J].The Journal of Antibiotics,1979,32(8):852-854.
[20]ALBERTS A W, CHEN J, KURON G, et al. Mevinolin: a highly potent competitive inhibitor of hydroxymethylglutaryl-coenzyme A reductase and a cholesterol-lowering agent[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,1980,77(7):3957-3961.
[21]于卓然,洪厚勝.功能性紅曲Monacolin K產量控制策略的研究進展[J].食品與發酵工業,2019,45(3):288-292.
[22]孫偉,劉愛英,梁宗琦.紅曲中莫納可林K(Monacolin K)的研究進展[J].西南農業學報,2003(3):112-116.
[23]涂志英,邵偉.國內外紅曲的應用現狀及發展趨勢[J].中國釀造,2008(7):7-9.
[24]CICERO A F G, FOGACCI F, BANACH M. Red yeast rice for hypercholesterolemia[J].Methodist Debakey Cardiovascular Journal,2019,15(3):192-199.
[25]LIASI E, KANTILAFTI M, HADJIMBEI E, et al. Monacolin K supplementation in patients with hypercholesterolemia:a systematic review of clinical trials[J].Semergen,2024,50(4):102156.
[26]BRUNO A, PANDOLFO G, CRUCITTI M, et al. Red yeast rice (RYR) supplementation in patients treated with second-generation antipsychotics[J].Complementary Therapies in Medicine,2018,37:167.
[27]高凱,張敏,張宗偉,等.紅曲霉合生元對松遼黑豬血清指標及背最長肌中MSTN、MyoD基因mRNA相對表達量影響[J].延邊大學農學學報,2018,40(4):43-50.
[28]李泳寧,朱宏陽,吳焜,等.一種富含紅曲色素微生物發酵飼料在蛋雞養殖中的應用[J].糧食與飼料工業,2015(2):52-54.
[29]羅章,陳琴,劉振東,等.紅曲色素改善藏香豬肉糜貯藏品質的機理研究[J].高原農業,2023,7(4):345-358.
[30]于慧慧,李迎秋,朱明宇,等.紅曲米粉應用于豬冷鮮肉的保鮮效果[J].肉類工業,2012(7):31-34.
[31]孫婷,王峰.紅曲色素在食品中的應用[J].農產品加工,2019(18):70-72.
[32]李星,鐘正澤,張曉春,等.3種天然紅色素在肉制品中的應用[J].農產品加工(學刊),2014(3):72-74,78.
[33]王也,胡長利,崔建云.紅曲紅色素替代亞硝酸鈉作為臘肉中著色劑的研究[J].中國國家農產品加工信息,2006(2):26-30.
[34]王柏琴,楊潔彬,劉克.紅曲色素在發酵香腸中代替亞硝酸鹽發色的應用[J].食品與發酵工業,1995(3):60-61.
[35]李劍,高向陽,楊昭,等.紅曲米粉在軟歐包的著色研究[J].中國食品添加劑,2023,34(4):182-196.
[36]傅金泉.紅曲腐乳生產新技術[J].農村新技術,1997(1):39-40.
[37]張超.試論紅曲霉在傳統白酒中的生產與應用[J].釀酒,2021,48(2):127-129.
[38]鐘明葉,劉學彬,王久明,等.紅曲對黃酒揮發性風味物質的影響[J].釀酒科技,2020(3):105-111.
[39]宋云剛,何佳,鄭苗,等.香菇紅曲黃酒生產工藝的研究[J].釀酒科技,2017(6):80-85.