放線菌秸稈降解液對西瓜連作土壤生態結構的影響

中圖分類號：S651 文獻標志碼：A 文章編號：1673-2871（2025）08-101-10

Effects of Trichoderma straw degradation solution on soil ecological structure of watermelon continuous cropping

JIA Yunhe'，WANG Xiqing'，YAN Wen'，FU Yongkai’，YOU Haibo'，WANG Lidong'，LIU Xiaofei2， LIU Chao'

（1.HorticultuchHelojndemyfltualieesHabin，elongnarbil University，Harbin5oo28，Heilongjiang，China）

Abstract：To explore the soil improvement methods for continuous watermeloncropping，the soil forcontinuous Watermeloncroppingwastreatedwithactinomycetesstrawdegradationsolution.Four treatments，namelyCK，straw（J），actinomycetes（F），and straw+actinomycetes（JF），weresetup.The effects ofdiferenttreatments onsoil chemicalproperties，enzymeactivities，microbialcontent，andthe growthanddevelopmentof watermelonseedlings were determinedand analyzed.High-throughput sequencing wasconductedondiferent treated soils tostudy the changes in their microbial community structure.Theresults showed that compared with CK，the pH，organic mater content，REDOX enzyme（urease，nvertase，catalase）activityndbacterialcountof thesoil treatedwithJFweresignificantlyincreased，whilehefungal countwassignificantlydecreased.ComparedwithCK，treatmentsJ，FandJFsignificantlyenhancedtherichessof soil microbialcommunities，andthediferentiationoffungalandbacterialcommunities inthefourtreatmentswasrelatively obvious.Compared with theCK，JandFtreatments，theJFtreatment significantly increased the strong seedling indexof watermelonsedlings.ItisspeculatedthatCladosporium，Trichoderma，Bacillusandactinomycetesworktogetherto improvethe soil ecological structureof watermelon continuous croppng.Theresearch resultsprovide theoretical basis and practical support forsoil improvement in continuous watermelon cropping and the healthyand sustainable development of the watermelon industry.

Keywords：Watermelon; Actinomycetes; Straw; Continuous cropping;Soil

西瓜是世界范圍內廣泛種植的經濟作物，2021年中國西瓜產量達6101.4萬t，占全世界的 60% 以上，種植面積常年保持在140萬 hm² 左右，占全球種植面積的 46%^[1] 。近年來，我國設施西瓜面積逐年增加，重茬種植不可避免，連作障礙成為制約我國西瓜產業可持續發展的重要因素。

連作改變土壤理化性質，土壤團粒結構遭到破壞，板結嚴重，通氣透水性降低。西瓜對特定養分的持續吸收導致鉀、鈣等元素匱乏；土壤酸化加劇，磷素固定作用增強，有效養分含量下降。Pervaiz等研究發現，連作5a（年）以上的西瓜田，土壤有機質含量下降 12% ，有效磷含量降低 20% 以上。連作打破土壤微生物群落平衡，有益微生物數量銳減，有害微生物大量繁殖。放線菌、枯草芽孢桿菌等促生有益菌在連作土壤中豐度顯著降低，而鐮刀菌、鏈格孢菌等病原微生物富集。Gu等通過高通量測序發現，連作西瓜土壤中真菌病原菌相對豐度增加 35% ，細菌群落多樣性下降 22% ，微生物生態功能趨向單一化。西瓜根系分泌及殘體分解產生的酚酸類、黃酮類等自毒物質，會抑制連作植株生長。Wang等4研究發現，連作土壤分離的自毒物質對西瓜幼苗根系生長抑制率在 30% 以上；連作導致西瓜產量與品質明顯下降。調查發現，連作3a以上的西瓜田，枯萎病發病率達 40% ，嚴重地塊甚至絕收，防治成本增加 30% 以上，連作導致病害發生率顯著提高。

秸稈可以改善土壤理化性質，調節土壤微生物群落結構，抑制土傳病害，增加土壤有機質含量，促進團粒結構形成，提高土壤保水保肥能力，緩解土壤板結與酸化，從而緩解連作障礙。放線菌是土壤中重要的生防微生物，能分泌抗生素、酶類等活性物質，從而抑制病原菌生長和繁殖。部分放線菌還可通過競爭營養和空間，抑制病原菌定殖。Dong等從西瓜根際土壤中篩選出鏈霉菌屬菌株，其產生的伊枯草菌素對西瓜枯萎病病菌抑制率達 78% .顯著降低病害發生率。放線菌能產生吲哚乙酸、赤霉素等植物激素，促進西瓜根系生長。放線菌還可增強植株對養分的吸收能力，提高肥料利用率[9-10]。胡琴琴研究發現，接種放線菌的西瓜幼苗，根長增加 25% ，根系活力提升 30% ，植株生物量顯著增加。

前人有過采用秸稈或放線菌（單一方法）緩解連作障礙的研究，但二者結合使用對西瓜連作土壤生態結構的影響還未見報道。鑒于此，筆者采用放線菌秸稈降解液處理西瓜連作土壤（復合方法），測定分析其對土壤化學性質、微生物含量及酶活性的影響，并對不同處理土壤進行高通量測序，研究其微生物群落結構變化，以期為西瓜連作土壤改良及西瓜產業健康可持續發展提供理論依據和實踐支持。

1材料與方法

1.1材料

供試土壤為黑龍江省農業科學院園藝分院連作20a的西瓜重茬土壤，2024年9月，采用五點取樣法從 333.5m² 的大棚中取旋耕后土壤表層下 5～ 20cm 的土壤 2kg 裝入口徑 20cm. 高 20cm 的花盆中。放線菌為哈爾濱商業大學提供的復合特殊菌株，可產生纖維素酶和果膠酶，組分DPA-3-18、GS-30體積比為1：1。

1.2 試驗設計

土樣測定試驗設2個處理，每個處理3次重復。將 200mL 清水倒入盛有 2kg 王壤的花盆中，混拌均勻，作為對照（CK）；JF（秸稈 + 放線菌）處理將200mL 放線菌秸稈降解液（含有 5mL 放線菌和5g 粉碎后直徑 0.5cm 滅菌干秸稈）倒入盛有 2kg 王壤的花盆中，混拌均勻；覆蓋地膜保濕。將6個花盆置于室溫下，1個月后測土樣。

高通量測序試驗設4個處理，每個處理3次重復；CK和JF處理同土樣測定試驗；J（秸稈）處理將5g 粉碎后直徑 0.5cm 滅菌干秸稈與水配制成 200mL 溶液倒入盛有 2kg 土壤的花盆中，混拌均勻，F（放線菌）處理將 5mL 放線菌溶于水中配制成 200mL 溶液倒入盛有 2kg 土壤的花盆中，混拌均勻。將12個花盆置于室溫下，1個月后測土樣。剩余土壤用于后續西瓜育苗試驗。

1.3土樣測定

將土樣送至青島德檢檢測技術服務有限公司檢測。pH和有機質含量采用 NY/T1121.2-2006 方法檢測[]，電導率采用LY/T 1251-1999 方法檢測[1]，堿解氮含量采用LY/T1228-2015方法檢測[4，速效磷含量采用NY/T1121.7-2014方法檢測[5]，速效鉀含量采用 NY/T889-2004 方法檢測[，細菌總數、真菌總數、尖孢鐮刀菌含量、放線菌含量采用GB 4789.2-2022 方法檢測；轉化酶活性、堿性磷酸酶活性、脲酶活性采用比色法檢測，過氧化氫酶活性采用滴定法檢測[18]。

1.4DNA提取和高通量測序

使用E.Z.N.A. Soil DNA Kit（Omega Bio-tek，

Inc.，USA）試劑盒提取土壤樣本的基因組DNA，以質檢合格的DNA為模板進行PCR擴增，使用通用引物338F（5'-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG- 3^′ ）和806R（ 5_-^′ GGACTACHVGGGTWTCTAAT- 3^′ ）擴增細菌16SrRNA的V3-V4區。在上游引物和下游引物的5'末端各添加8bp的barcode序列，以區分不同的樣本，最后合成帶有barcode序列的通用引物在 ABI 9700 PCR 儀（Applied Biosystems， Inc.，USA）上擴增。真菌ITS基因的ITS1區域擴增上游引物序列為1737F： 5% CTTGGTCATTTAGAG-GAAGTAA- ?3^′ ，下游引物序列為2043R： 5^′. -GCTGC-GTTCTTCATCGATGC- 3^′ 。PCR擴增體系： 95^°C 預變性 5min;95^°C45s，55^°C45s，72^°C45min ，共28個循環； 72^°C 延伸 結束反應。對PCR反應產物進行檢測、回收和純化，檢測合格的樣品送至森藍生物科技有限公司采用IlluminaMiseq/Nextseq2ooo/Novaseq 6000 （Illumina， Inc.，USA）平臺測序，測序策略為PE250/PE300。

1.5不同處理土壤對西瓜幼苗生長發育的影響

選用西瓜品種為龍盛佳美（高品質中抗西瓜枯萎病），2024年11月21日播種于黑龍江省農業科學院園藝分院西瓜試驗溫室，每個花盆播種12粒種子，常規管理。播種后第8～25天，每間隔4d統計出芽情況，計算出苗率。播種后第41天，西瓜幼苗長至適宜定植（2葉1心）時，每個重復隨機選取西瓜苗樣本3株，用直尺測定株高；用游標卡尺測定莖粗；去除幼苗根部基質，用蒸餾水沖洗干凈，吸干表面水分， 105^°C 下殺青 15min 后，在 75^°C 下烘干至恒質量，稱干質量。出苗率 1%=1 規定發芽測定天數內正常發芽的種子數/供試種子數） ×100 ；根冠比 地下部干質量/地上部干質量；壯苗指數 莖粗/株高 x 全株干質量。

1.6 數據處理

下機數據根據barcode序列拆分為不同樣本。使用Pear（v0.9.6）軟件對測序數據進行過濾、拼接。使用Vsearch去除嵌合體，采用uparse算法對優質序列進行OTU聚類，序列相似性閾值為97% 。基于OTU及其豐度結果，使用QIME（v1.8.0）軟件計算 α 多樣指數和 β 多樣性距離矩陣，并使用R（v3.6.0）軟件繪圖。使用Phython（v2.7）軟件進行LEfSe分析。

采用WPS軟件整理數據和制圖，使用鄧肯法（Duncan）進行差異顯著性檢驗。

2 結果與分析

2.1放線菌秸稈降解液對西瓜連作土壤化學性質、酶活性及微生物含量的影響

2.1.1放線菌秸稈降解液對西瓜連作土壤化學性質的影響由表1可知，與CK（清水處理）相比，JF（秸稈 + 放線菌）處理西瓜連作土壤的pH顯著提高2.91% ，有機質含量顯著提高 3.36% ，電導率顯著降低 12.31% ，堿解氮含量提高 4.94% ，速效磷含量顯著降低 10.29% ，速效鉀含量降低 2.89% 。

表1不同處理土壤化學性質差異

注：同列不同小寫字母表示在0.05水平差異顯著。下同。

Note：Differentlowercase letters inthe samecolumn indicatesignificantdifferenceatO.O5level.Thesame below.

2.1.2放線菌秸稈降解液對西瓜連作土壤酶活性的影響由表2可知，與CK相比，JF處理西瓜連作土壤的脲酶活性顯著提高 127.27% ，堿性磷酸酶活性顯著降低 16.41% ，轉化酶活性顯著提高7.02% ，過氧化氫酶活性顯著提高 20.33% 0

表2不同處理土壤酶活性差異

2.1.3放線菌秸稈降解液對西瓜連作土壤微生物含量的影響由表3可知，與CK相比，JF處理西瓜連作土壤的細菌總數顯著提高 14.29% ，真菌總數顯著降低 24.68% ，細菌/真菌顯著提高 52.21% ，放線菌含量顯著提高 89.47% ，尖孢鐮刀菌含量顯著降低80.00% 。

表3不同處理土壤微生物群落差異

Table3Differences of soil microbial communities under different treatments

2.2放線菌秸稈降解液對西瓜連作土壤微生物菌群結構的影響

2.2.1 OTU數量的變化 如圖1-A所示，CK、J處理、F處理和JF處理的特有細菌OTU數量分別為426、448、255、359個，四者共有數量為2717個，占4個處理OTU總數的 15.87% 。由圖1-B可知，CK、J處理、F處理和JF處理的特有真菌OTU數量分別為75、68、49、60個，4個處理共有真菌OTU數量為281個，占OTU總數的 14.60% 。

圖1不同處理的土壤細菌OTU和真菌OTU水平的韋恩圖

Fig.1Venn diagram of OTUlevel of soil bacterial and fungal under different treatments

2.2.2 a 多樣性變化根據ACE指數、Chao1指數、Shannon指數和Simpson指數分析了4個處理土壤細菌和真菌的多樣性（表4）。與CK相比，J、JF處理的細菌ACE指數和Chao1指數及真菌ACE指數和Chao1指數顯著升高，F處理的真菌ACE指數顯著升高。其他細菌和真菌多樣性指數均不存在顯著差異，表明放線菌秸稈降解液可以提高土壤細菌和真菌群落豐富度。

2.2.3 β 多樣性變化通過非度量多維尺度（NMDS）分析了4個處理間土壤微生物群落的差異（圖2）。J處理的土壤細菌群落分布在第4象限，F處理的土壤細菌群落分布在第1、2象限，JF處理的土壤細菌群落分布在第3象限，CK的土壤細菌群落則主要分布在第1、2象限， β 多樣性應力值Stress λ=0.065 ， _r=0.392 p=0.027 ，說明4個處理的細菌群落區分度較為明顯，4個處理間細菌菌群存在顯著差異。

對于真菌群落來說，多樣性應力值Stress {= 0.029，r=0.5679，p=0.003 ，說明4個處理的真菌群落結構存在極顯著差異。上述結果說明，JF處理對土壤微生物菌群的定向選擇和培育作用較為明顯。2.2.4對細菌群落組成的影響4個處理土壤樣品中細菌群落相對豐度較高的前10個菌屬相同（圖3），其中Bacillus為芽孢桿菌，相對豐度較高，平均豐度為8.37% ；其后依次為熱微菌目Thermomicrobiales未分類科（Norank_f_JG30-KF-CM45）、芽單胞菌目未分類科（Norank_f_Gemmatimonadaceae）、嗜酸菌綱未分類目（Norank_o_Vicinamibacterales）、鞘氨醇單胞菌屬（Sphingomonas）、鏈霉菌屬（Streptomyces）、未分類（Norank_f_AKYG1722）、嗜酸菌目未分類科（Norank_f_Vicinamibacteraceae）、馬杜拉放線菌屬（Marmoricola）和蓋氏菌綱未分類目（Norank_o_Gaiellales）。與CK相比，J、F、JF處理的Bacillus屬和嗜酸菌目未分類科（Norank_f_Vic-inamibacteraceae）的相對豐度顯著增加 （plt;0.05） ，增幅分別為 46.15% ！ 22.78% 、 35.90% 和 38.21% 、58.54%.28.46% ；馬杜拉放線菌屬（Marmoricola）相對豐度降低，但差異不顯著。由此可見，J、F、JF處理會對土壤細菌群落構成造成屬水平的顯著差異。2.2.5對真菌群落組成的影響4個處理土壤中優勢真菌屬也基本相同（圖4），其中毛殼菌科未分類屬（Unclassified_f_Chaetomiaceae， 14.86% ）和毛殼菌科Stolonocarpus屬（ 12.77% 相對豐度較高，占總序列的 27.63% ;然后依次為金孢菌屬（Chrysospori-um）、鉤果菌屬（Uncinocarpus）、曲霉菌屬（Aspergil-lus）、頂孢霉屬（Acremonium）、被孢霉屬（Mortierel-la）、短梗蠕孢屬（Trichocladium）、火絲菌科未定屬（Pyronemataceae_gen_Incertae_sedis）、枝孢菌屬（Cladosporium）等。與CK相比，J、F、JF處理顯著增加了毛殼菌科未分類屬（Unclassified_f_Chaeto-miaceae）、頂孢霉屬（Acremonium）和枝孢菌屬（Cladosporium）的相對豐度，其中毛殼菌科未分類屬增幅最大，分別為 587.83%.67.55%.145.64% ；顯著降低了鉤果菌屬（Uncinocarpus）的相對豐度，降幅分別為 97.01%.90.36%.88.31% 。由此可以看出，J、F、JF處理會對土壤真菌群落組成造成屬水平的顯著差異。

表4不同處理土壤微生物 α 多樣性指數

Table4Soilmicrobialαdiversityindexunderdifferenttreatments

注：同列不同小寫字母表示同一項目的不同處理在0.05水平差異顯著。Note：Diferentallsineuidesantdifresmogdrnttamntsofatlevel.

圖2土壤細菌和真菌菌群的NMDS分析

Fig.2NMDSanalysisof soil bacterialcommunitiesand fungal communities

圖3不同處理的土壤細菌屬水平群落組成

Fig.3Bacteria communitycomposition at genus level under different treatments

2.3放線菌秸稈降解液處理連作土壤對西瓜幼苗生長發育影響

由表5和圖5可知，與CK相比，JF處理土壤對西瓜幼苗的出苗率、根冠比、壯苗指數有顯著的促進作用。JF處理土壤培育的西瓜幼苗出苗率顯著高于CK、J處理和F處理；J處理出苗率高于F處理，但差異不顯著；J處理和F處理的出苗率顯著高于CK。JF處理和F處理土壤培育的西瓜幼苗根冠比顯著高于CK及J處理；JF處理的根冠比高于F處理，但差異不顯著。JF處理土壤培育西瓜幼苗的壯苗指數顯著高于CK、J處理和F處理；J處理壯苗指數高于F處理，但差異不顯著；J處理和F處理的壯苗指數顯著高于CK。

3 討論與結論

研究表明，秸稈生物反應堆能顯著提高連作土壤的有機質含量[]，秸稈生物炭對黃壤的改良效果顯著，能夠增加土壤pH，提高有機質和氮磷鉀含量[20]。本試驗結果表明，使用放線菌秸稈降解液處理西瓜連作土壤，能顯著提高土壤pH及有機質含量，與前人的研究結果相符。但土壤電導率及速效磷和速效鉀含量有所降低，可能是因為放線菌和其他土壤微生物在分解秸稈時，會消耗土壤中的磷和鉀來支持其生長和代謝，這種微生物活動可能導致土壤中可溶性磷和鉀含量的暫時降低；也可能是秸稈分解過程中產生的有機物質可以與土壤中的磷和鉀暫時形成不易溶解的復合物，從而降低土壤中磷和鉀的有效性；磷和鉀含量降低會導致土壤中可溶性鹽含量降低，因此導致土壤電導率降低。

圖4不同處理的土壤真菌屬水平群落組成

表5不同處理土壤對西瓜幼苗生長發育的影響

Table 5 Effects of different treatments on seedling growth and development of watermelon

圖5不同處理土壤對西瓜幼苗生長發育的影響

Fig.5Effects of different soil treatments on growth and development of watermelon seedlings

研究表明，連作西瓜會導致土壤酶活性的變化，如脲酶活性呈下降趨勢，蔗糖酶活性呈上升趨勢等[21。本試驗結果表明，使用放線菌秸稈降解液處理西瓜連作土壤，顯著提高了土壤中脲酶、轉化酶及過氧化氫酶活性，但顯著降低了堿性磷酸酶活性。土壤中的酶主要來源于微生物，土壤中微生物菌群的變化是酶活性變化的主要原因[22]。脲酶的作用是催化尿素分解，微生物群落多樣性增加使脲酶活性提高，進而提高了土壤中氮素含量。而堿性磷酸酶的作用是催化有機磷化合物的分解，從而提高土壤中磷素的有效性[23]，而本試驗證明了磷酸酶活性的下降導致了土壤磷含量的降低。本試驗中和對照相比，轉化酶活性顯著提高，是因為微生物數量增加，需要利用更多的碳源，所以分泌了更多的轉化酶催化多糖物質的水解。過氧化氫酶在土壤中參與氧化還原反應，分解有害的過氧化物，可以間接緩解連作障礙，本試驗中過氧化氫酶活性顯著提高，也是微生物群落多樣性增加的緣故。

研究表明，施用放線菌制劑能顯著增加西瓜根際土壤中有益微生物的數量，如細菌和木霉菌，同時有效抑制尖孢鐮刀菌數量，減弱連作障礙的根際微生態效應[24-25]。特別是在發病高峰期，創造一個不利于病原菌生存的土壤環境，從而間接減少病害的發生[2。研究表明，施用放線菌制劑能有效抑制西瓜枯萎病的病原菌尖孢鐮刀菌（Fusariumoxyspo-rum）的生長，通過競爭、重寄生作用及產生抗生物質等方式，阻止或減緩病原菌的生長和擴展，從而減少病害的發生[27-28]。放線菌秸稈降解物的施用可以顯著增加土壤團聚體的數量和大小，以及多糖含量，這有助于改善土壤結構和增加微生物多樣性[29]。本試驗結果表明，使用放線菌秸稈降解液處理西瓜連作土壤，能顯著增加土壤中細菌總數和放線菌含量，顯著降低土壤中真菌總數和尖孢鐮刀菌含量，顯著提高細菌真菌比，從而改善西瓜連坐土壤的微生物群落環境，驗證了前人的研究結果。

芽孢桿菌屬（Bacillus）的細菌種類繁多、抗逆性強、繁殖快、代謝產物豐富、生防機制寬泛，常被用作生防菌[30-31]。曾鯨津等[32]研究表明，貝萊斯芽孢桿菌（Bacillusvelezensis）MSo6可能通過分泌幾丁質酶和纖維素酶，溶解尖孢鐮刀菌的細胞壁和菌絲，使其失去侵染能力，進而抑制病原菌的生長。在本研究中，與對照相比，處理土壤的芽孢桿菌屬Bacil-lus含量顯著增加，JF處理土壤的尖孢鐮刀菌含量顯著降低，推測JF處理土壤通過增加芽孢桿菌含量抑制了尖孢鐮刀菌的生長。芽孢桿菌同時兼具平衡土壤酸堿度[33]、提高土壤氧化還原酶活性[34等功能，在本試驗中都得到了驗證。JG30-KF-CM452屬能夠降解化學殺蟲劑和除草劑[3]，Gaiella和Strep-tomyces屬于放線菌門，在土壤中具有促進植物殘體降解和抑制病原菌傳播的作用，連作后相對豐度的提升與土壤生態健康水平的提升密切相關[36-37]。薩如拉等3研究顯示，秸稈還田后增加了有益細菌Gaiella屬相對豐度，Gaiella屬被證明為抑制番茄枯萎病的關鍵微生物類群[39]。鏈霉菌屬具備良好的木質纖維素降解能力[40]，可產生活性代謝產物拮抗部分病原菌，具有明顯的抑制效果[41]。

4個處理土壤中，毛殼菌科未分類屬（unclassi-fied_f_Chaetomiaceae）和毛殼菌科Stolonocarpus屬相對豐度較高，占總序列的 27.63% 。毛殼菌可以通過產生抗菌等活性物質對土壤中的有害病原菌產生拮抗作用；還可以提高植物對土壤氮的利用效率，促進光合作用，調節植物激素的合成和代謝，進而促進植物生長；使植物產生誘導型系統抗性（in-ducedsystemicresistance，ISR）；也通過生態位、營養物質競爭作用及重寄生等方式對植物起到生防作用[42]。研究表明，球毛殼菌小麥秸稈發酵產物可以抑制辣椒疫霉菌[；毛殼菌幾丁質酶液能抑制立枯絲核菌和煙草赤星病菌的菌絲生長；球毛殼菌ND35顯著提高了苦瓜幼苗的相對含水量、可溶性蛋白質含量和抗氧化酶活性，顯著降低了脯氨酸和丙二醛含量，提高苦瓜幼苗抗旱性；球毛殼ND35菌株的菌絲在黃瓜品種津研4號根部從表皮細胞之間的縫隙侵入，在表皮細胞和外皮層細胞中定殖，可與植物建立共生關系，并顯著提高了黃瓜產量[。在本研究中，與CK相比，J、F、JF處理土壤的毛殼菌豐度顯著增加，尖孢鐮刀菌含量減少，幼苗壯苗指數增加，說明毛殼菌對西瓜連作土壤起到了拮抗有害病原菌、促進植物生長的作用。頂孢霉4]和枝孢菌都曾被用于生防菌。在本研究中，與

CK相比，除J處理外（顯著降低），F處理和JF處理土壤的頂孢霉豐度均無顯著變化，推測J處理中頂孢霉豐度的變化是由微生物之間的拮抗互作導致的。研究表明，綠頭枝孢菌LS1可以防治香蕉枯萎病[48]。在本研究中，與CK相比，J、F、JF處理的枝孢菌屬豐度顯著升高，尖孢鐮刀菌含量下降，可能是枝孢菌、毛殼菌等真菌及芽孢桿菌、放線菌等細菌共同作用的結果。

綜上所述，與CK相比，JF處理土壤的pH、有機質含量、氧化還原酶（脲酶、轉化酶、過氧化氫酶）活性和細菌數量顯著提高；真菌數量顯著降低；J、F、JF處理顯著提升了土壤微生物群落豐富度，4個處理的真菌、細菌群落區分度較為明顯；與CK、J處理、F處理相比，JF處理顯著提高了西瓜幼苗的壯苗指數，推測枝孢菌、毛殼菌及芽孢桿菌、放線菌等共同作用改良了西瓜連作土壤的生態結構。

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