[摘要]目的:探討溫固化水凝膠作為骨髓基質干細胞的載體修復軟骨缺損的可行性。方法:將培養的骨髓基質干細胞與400g/L濃度的溫化水凝膠混合后移植到兔膝關節軟骨缺損中,分別于術后4、8、12周觀察大體標本及組織學修復結果。結果:實驗組的缺損為透明軟骨修復。而單純材料組和空白對照組則以纖維組織修復。參考Wakitani制定的組織學評分標準,Pluronic F-127組和空白對照組的組織學評分在各個時期無顯著的差異(P>0.05),而實驗組和空白組在各個時期均存在顯著的差異(P<0.05)。結論:Pluronic F-127可作為軟骨組織工程良好的支架材料。
[關鍵詞]溫固化水凝膠;骨髓基質干細胞;組織工程;軟骨缺損
[中圖分類號]R318.5R684[文獻標識碼]A[文章編號]1008-6455(2008)03-04
The experimental study on bone marrow stromal cells loaded temperature dependent hydrogel on repair of full-thickness defects of rabbit articular cartilage
WANG Jin-ming,ZHANG Qing-guo,ZHAGN Jiao
(School of Clinical Medical College Southeast University, Nanjing 210009,Jiangsu,China)
Abstract:ObjectiveTo investigate the feasibility of the temperature dependent hydrogel loading bone marrow stromal cells for repairing articular cartilage defects. Methods Cultured bone marrow stromal cells and 4OOg/Lhydrogelmixture was transplanted to the knee articular cartilage defects in rabbits, after 4, 8 and 12 weeks, Repair of articular cartilage defect was investigated by gross observation and HE stain of histological specimens.Results In the experimental group the defect was repaired by hyaline cartilage. While in the Pluronic F-127 group and control group the defect was repaired by fibrous tissue. Referencing Wakitani developed histological grading scale . Between the Pluronic F-127 group and the control group in the histologic score in each period there was no significant difference (P> 0.05), while between the experimental group and control group in each period there was significant difference (P<0.05).ConclusionPluronic F-127 can be used as good cartilage tissue engineering scaffold.
Key words: temperature dependent hydrogel; BMSCs; tissue engineering; articular cartilage defect
關節軟骨的自我修復能力很弱,是矯形外科一個非常棘手的問題[1]。很多的方法如關節軟骨下骨鉆孔, 骨膜或軟骨膜修補等方法均有待臨床進一步應用驗證[2]。組織工程學的方法對膝關節軟骨損傷有重要的應用前景。骨髓基質細胞(bone marrow stromal cells,BMSCs) 含有形成前體細胞及干細胞, 可體外培養并誘導向軟骨細胞方向分化。而一定濃度的聚氧化乙烯-聚氧化丙烯-聚氧化乙烯(PEO-PPO-PEO)三嵌段共聚物(Pluronic F-127)水溶液具有在低溫下為液態而常溫下為固態的特性,即溫固化水凝膠[3]。本實驗中以BMSCs為種子細胞,可注射性生物材料Pluronic F-127為支架,在低溫下將此混合物注射到兔膝關節全層軟骨缺損處,觀察其修復作用。
1材料和方法
1.1材料:DMEM干粉(低糖型)(GIBCO公司),胰蛋白酶 (SIGMA公司),Percoll細胞分離液(SIGMA公司),Pluronic F-127(SIGMA公司),50ml培養瓶(丹麥NUNC公司),SW-CJ-IF超凈工作臺(蘇州安泰空氣技術有限公司),OLYMPUSCK2光學倒置顯微鏡(日本OLYMPUS公司),GB-B16 CO2細胞培養箱 (美國Heraeus公司)
1.2 方法
1.2.1 溫固化水凝膠的制備:將Pluronic F-127 以1g分裝在青霉素安瓿瓶中密封好,CO60照射滅菌。于超凈臺中在每小瓶材料中加入2.5mlPBS。密封后置于4℃冰箱。
1.2.2 BMSCs的獲取和培養:成年灰兔,體重2.0~2.5kg,分別在全麻、無菌下暴露雙側髂骨, 16號骨穿針抽取雙側髂骨骨髓總量約4.0ml,加入等量PBS稀釋,混勻,以1∶4比例加入淋巴細胞分離液,2 000r/min離心30min,取中間白色云霧狀細胞層,PBS液洗滌,加入含胎牛血清的DMEM標準培養液,以1×105/ml細胞密度接種于50ml培養瓶,37℃下5%CO2、100%濕度孵箱孵育,3天后首次換液,其后根據細胞生長情況及培養液顏色確定換液時間。待細胞長滿瓶底70%~80%時傳代,逐日使用倒置顯微鏡觀察細胞生長及形態特征。當原代細胞培養7~9天時細胞融合為單層,占瓶底80%以上,0.25%胰蛋白酶消化傳代,培養至第三代備用。
1.2.3 BMSCs與Pluronic F-127復合物的制備:取生長良好的第三代BMSCs四瓶消化,1500r/min離心5 min,得細胞沉淀,以1ml 培養液重懸細胞, 進行細胞計數。細胞數約為1×107[4]。在5ml離心管中加入Pluronic F-127溶液 0.5ml,細胞懸液0.5ml。密封于離心管,置于4℃冰箱。
1.2.4 動物實驗:健康灰兔27只,體重2.5~3.5kg ,雌雄不限,編號后隨機分成A、B、C三組,每組九只,雙膝均用于實驗。用3 %戊巴比妥鈉(1mg/kg) 靜脈麻醉,仰臥位固定,剪毛、常規消毒鋪巾,取髕骨內側切口,依次切開各層,髕骨向外側脫位, 屈曲膝關節, 充分暴露股骨關節軟骨面, 用直徑4mm鉆頭于股骨關節面中心造成深度約3mm的全厚關節軟骨缺損。A組:(18膝)缺損處注入細胞、材料及生長因子三者的復合物。B組:(18膝)缺損處單純注入400g/L Pluronic F-127凝膠。C組:(18膝)缺損處不做任何處理,為空白對照。髕骨復位,逐層縫合。同條件分籠飼養,自由活動。
1.2.5 結果檢測:分別于術后4、8、12周空氣栓塞處死動物,取材,行大體及組織學觀察:①大體觀察:膝關節活動情況,關節滑膜有無充血水腫,關節囊有無增厚粘連及關節面缺損修復的平整度及光澤度;②組織學檢測:取材后10%福爾馬林固定48h,5%硝酸脫鈣液脫鈣24h,沖洗、系列酒精脫水、石蠟包埋、5μm切片、HE 染色光鏡觀察
1.2.6 統計學分析:參考Wakitani制定的組織學評分標準[5](表1),所有實驗結果計量資料以x±s表示,采用SPSS11.5軟件進行統計分析,α值取0.05。
2結果
2.1 功能評價:術后3天內,兔膝關節活動受限,活動較少。隨后運動逐漸增加,屈曲姿態和跳躍動作逐漸正常,1周內恢復正常。
2.2 大體形態觀察:膝關節無紅腫,關節囊無明顯增生肥厚,無攣縮、粘連;關節液清亮。
2.2.1 A組:術后4周,填充物與周圍正常軟骨分界清楚,大部分呈淡紅色半透明,缺損填充物周邊部見部分呈乳白色;填充物表面平整光滑,與周圍正常軟骨連接良好,高度基本一樣或略微凹陷;觸之微韌,與周圍正常軟骨能分離。術后8周,填充物與周圍軟骨分界不明顯,呈乳白色,與正常軟骨顏色接近,表面光滑,與周圍軟骨連接好,高度與周圍軟骨基本一致;觸之質韌,與周圍正常軟骨不能分離。術后12周,填充物與周圍正常軟骨分界模糊,呈乳白色,填充物表面平整光滑,與周圍軟骨連接好,高度與周圍軟骨基本一致;觸之質韌,與周圍正常軟骨基本一致,與周圍正常軟骨不能分離(圖1)。

2.2.2 B組:術后4周,填充物與周圍正常軟骨分界清楚,大部分呈半透明狀,周邊部見部分呈白色,填充物表面平整光滑,與周圍正常軟骨連接良好,高度基本一樣或略微凹陷;觸之微韌,與周圍正常軟骨能分離。術后8周,填充物與周圍軟骨分界不明顯,呈白色,表面略粗糙,與周圍軟骨連接好,高度略微低于周圍正常軟骨;觸之質韌,與周圍正常軟骨不能分離。術后12周,填充物與周圍正常軟骨分界不清楚,呈白色,填充物表面凹陷不平,與周圍軟骨連接好,高度略低于周圍正常軟骨;觸之質硬,與周圍正常軟骨不能分離(圖2)。
2.2.3 C組:術后4周,缺損區由白色組織填充,可見血凝塊甚者部分缺損區骨質裸露無組織覆蓋,表面粗糙,與周圍正常軟骨連接不佳,高度低于周圍正常軟骨;觸之軟,與周圍正常軟骨能分離。術后8周,缺損區由白色組織填充,周邊可見部分裸露骨質無組織覆蓋,表面粗糙不平,高度低于周圍軟骨,觸之質韌,與周圍正常軟骨不能分離。術后12周,缺損區由白色組織填充,周邊可見部分裸露骨質無組織覆蓋,表面粗糙不平,高度低于周圍軟骨,觸之硬,與周圍正常軟骨不能分離(圖3)。
2.3組織學觀察
2.3.1 A組:術后4周,缺損填充區可見增殖的軟骨細胞,細胞排列不規則,成簇生長,細胞形態較少,基質較少,表面可見部分纖維樣組織,可見不連續的軟骨下骨(圖4)。術后8周,缺損填充區可見軟骨細胞增多,基質較多,細胞周圍可見典型的陷窩樣結構,軟骨下骨連續性好(圖5)。術后12周,缺損填充區形態與周圍正常軟骨相似,細胞形態、排列,基質量接近周圍正常軟骨(圖6)。
2.3.2 B組:術后4周,缺損填充區主要被纖維樣組織覆蓋,可散在見軟骨細胞,軟骨下骨生成較少。術后8,12周,缺損填充區同樣主要為纖維樣組織覆蓋,軟骨下骨逐漸增厚與正常接近(圖7)。
2.3.3 C組:修復各個時期,缺損區均為纖維組織覆蓋,無軟骨細胞。軟骨下骨逐漸增厚(圖8)。
2.4統計分析結果:A、B、C三組在4、8、12周時所采集的數據,以x±s表示(表2),采用SPSS11.5軟件進行統計分析,對數據顯著性檢驗采用兩樣本均數比較的t檢驗。P<0.05為差異顯著。實驗組(A組)和空白對照組相比在各個時期均有顯著性差異(P<0.05 ),單純材料組(B組)和空白對照組相比在各個時期無顯著性差異(P>0.05)。

3討論
成熟的關節軟骨損傷后其自我修復的能力十分有限,一般認為直徑小于3mm的缺損可得到部分或全部的修復,而直徑大于4mm的缺損一般不能以透明軟骨形式修復[6]。本實驗設計了約直徑4mm、深3mm的關節軟骨缺損模型。
軟骨細胞培養擴增修復軟骨缺損多有報道,但細胞獲取及擴增均較困難[7],且軟骨細胞修復軟骨下骨效果不佳。BMSCs 能夠根據微環境信號的指令分別分化為成骨細胞和軟骨細胞, 適合于伴有軟骨下骨損傷的軟骨缺損修復。由于關節腔內的乏氧環境和關節液中各種細胞因子的作用, 促使骨髓BMSCs 向軟骨細胞分化形成軟骨組織。而缺損底部鄰近髓腔, 較高的氧分壓促使骨髓BMSCs 向成骨細胞轉化形成骨小梁。軟骨和骨小梁的形成有利于修復組織與鄰近正常組織的結合。這樣, 軟骨層及軟骨下層的骨缺損都能修復而形成正常的關節結構[8]。
本實驗所應用的聚氧化乙烯-聚氧化丙烯-聚氧化乙烯(PEO-PPO-PEO) 三嵌段共聚物具有良好的生物相容性和良好的生物降解性[9-10]。它最大的特點是濃度大于100g/L的水溶液都有一個凝膠化溫度, 當溫度低于凝膠化溫度時, 粘度很低,為粘性流體, 溫度超過凝膠化溫度時, 粘度急劇增高, 變為凝膠。400g/L時凝膠化溫度約為4℃。因此我們可在低溫下將此材料和細胞混合后注射至缺損區,操作上有了極大的便利。本實驗結果示聚氧化乙烯-聚氧化丙烯-聚氧化乙烯(PEO-PPO-PEO) 三嵌段共聚物與骨髓基質干細胞(BMSCs)復合物能以透明軟骨方式修復關節軟骨缺損,而單純材料組和空白對照組則以纖維樣組織修復缺損,不能以透明軟骨方式修復。
因此溫固化水凝膠聚氧化乙烯-聚氧化丙烯-聚氧化乙烯(PEO-PPO-PEO) 在軟骨組織工程中將有良好的應用前景。
[參考文獻]
[1]O'Driscoll SW. The healing and regeneration of articular cartilage[J].J Bone Joint Surg (Am), 1998,80(12): 1795.
[2]Minas T , Frcs M , Nehrer S. Current concepts in the treat-ment of articular cartilage defects [J]. Orthopedics, 1997, 20: 525-538.
[3]Faulkner DM, Sutton ST, Hesford JD, et al. A new stable pluronic F68 gel carrier for antibiotics in contaminated wound treatment[J]. Am J Emerg Med,1997,15(3)∶20.
[4]夏萬饒.組織工程化組織形成的最佳細胞濃度和最佳形成時間的實驗研究[J].中華修復重建外科雜志,1999,13(4):244-248.
[5]Wakitani S , Goto T , Pineda SJ ,et al. Mesenchymal cell-based repair of large ,full - thickness defects of articular carticular cartilage[J]. J Bone Joint Surg (Am),1994,76:579-592.
[6]Yang Y,Lu MA.Joint cartilage defect research progress that repair[J].Guangxi Yixue (Guangxi Med J) 2002,24(12):2027-2031
[7]Brittberg M, Tallheden T, Sjogren JE, et al. Autologous chondrocytes used for articular cartilage repair [J]. Clin Ortho and Rel Res, 2001, 391: 337-348.
[8]李 強, 孫正義, 王栓科, 等. 骨髓間充質干細胞復合脫鈣骨基質修復兔膝關節全層軟骨缺損的實驗[J]. 第四軍醫大學學報, 2004,25(15):1375-1378.
[9]李石保,楊維東,唐立輝,等.溫固化水凝膠的制備和應用[J]. 第四軍醫大學學報,2001,22(4):306-308.
[10]張艷, 柴崗, 劉偉, 等.組織工程軟骨構建的臨床初步研究[J]. 中國美容醫學, 2005,14(5):530-531.
[收稿日期]2007-12-15[修回日期]2008-03-10
編輯/張惠娟
注:“本文中所涉及到的圖表、注解、公式等內容請以PDF格式閱讀原文。”