摘 要:以黑曲霉C-2為菌種,對蘋果渣進行固態發酵,以纖維素酶、木聚糖酶、果膠酶的活性為測定指標,單因素試驗確定水平,采用L9(34)正交試驗對產復合酶體系的固態培養基質進行優化,同時運用極差分析、方差分析以及不同因素水平間差異顯著性檢驗對結果進行分析,以得到較合理的培養基。優化后培養基組成為果渣∶麩皮=4∶1,2.0%硫酸銨,0.1%磷酸氫二鉀,2.5%尿素。優化后三種酶活力比基礎培養基分別提高了64.19%、17.26%、20.89%。
關鍵詞:蘋果渣;固態發酵;復合酶;培養基;優化
中圖分類號:TS202.3文獻標識號:A文章編號:1001-4942(2010)01-0080-06
Optimization of Solid-state Fermentation Medium for Production
of Complex Enzymes with Apple Pomace
JIANG Xin1, CHEN Wei1*, ZHOU Bo2*
(1.College of Food Science and Engineering, Shandong Agricultural University, Taian 271018, China;2.
College of Life Science, Shandong Agricultural University, Taian 271018, China)
Abstract With the activity of cellulase, xylanase and pectinase as the determination indicators, the optimization of medium composition was investigated in solid-state fermentation of apple pomace by Aspergillus niger C-2. The culture medium was optimized using L9 (34) orthogonal design, range analysis, variance analysis and test of significance between the levels of different factors , so as to get a more reasonable result.As the result, the optimized medium composition was apple pomace∶bran = 4∶1, ammonium sulfate of 2.0%, potassium hydrogen phosphate of 0.1%, urea of 2.5%. Compared with the basic medium, the activity of three enzyme was increased by 64.19%,17.26% and 20.89%, respectively.
Key words Apple pomace; Solid-state fermentation; Complex enzyme; Medium; Optimization
蘋果渣是指蘋果榨汁后的副產物,主要由果皮、果核和殘余果肉組成,約占鮮果質量的25%。我國年產蘋果約2 000×104 t,在加工果汁的過程中所排出的果渣約有100×104 t。由于蘋果渣含有較高水分(約75%~80%)和豐富的營養物質,易被微生物侵染,發霉、腐爛變質,導致環境污染和資源浪費[1,2]。蘋果加工后的大量殘渣含有果膠、纖維素和蛋白質等,可作為飼料、提取膳食纖維、果膠原料的來源、培養食用菌、提取低聚糖、生產酶等等。該領域的商品開發在國內外都尚處于起步階段,如何利用這種食品下腳料是當前的研究及開發熱點[3]。
1 材料與方法
1.1 材料
干蘋果渣:由天津牧光生物有限公司提供,pH 4.6。
菌種:黑曲霉C-2(Aspergillus niger),為山東農業大學菌種保藏中心保藏。
1.2 培養基
菌種活化培養基為:麩皮200 g,玉米芯40 g,加水煮沸30 min,過濾,加入2.0%硫酸銨,0.2%磷酸氫二鉀,補水到1 L。
固態發酵基礎培養基:蘋果渣(烘干)15 g,2.0%硫酸銨,pH自然,發酵周期2 d,10%接種量,固水比=1∶1。
1.3 測定方法
本試驗測定三種酶活性,即纖維素酶、木聚糖酶、果膠酶。方法為DNS法[4]。
酶活單位定義:在40℃、pH值為4.6的條件下,每分鐘從濃度為5 mg/ml的底物溶液中分解釋放1 μmol還原物質所需要的酶量為一個酶活單位U。
1.4 正交試驗設計
通過前期單因素試驗,確定硫酸銨添加量(A),磷酸氫二鉀添加量(B),尿素添加量(C),果渣和麩皮的添加比例(D)4個因素,各取3個水平,以發酵產物的纖維素酶、木聚糖酶、果膠酶3種酶活性大小作為考察指標,進行L9(34)正交試驗,控制發酵時間為48 h。試驗因素與水平見表1。
表1正交試驗因素與水平(%)
水平因素硫酸銨(A)磷酸氫二鉀(B)尿素(C)果渣∶麩皮(D)
11.00.11.51∶1
22.00.22.04∶1
33.00.42.52∶1
1.5 分析方法
運用DPS v7.05軟件進行正交試驗設計和分析,正交試驗方差分析時選用Duncan 新復極差法進行多重比較,用Origin75做圖,用SPSS13.0進行數據處理。
2 結果與分析
2.1 發酵周期的確定
以基礎培養基發酵微生物,每12 h測定發酵產物的纖維素酶、果膠酶、木聚糖酶活性,找到最大酶活產生的時間,即最佳發酵時間。
由圖1可以看出,纖維素酶、木聚糖酶、果膠酶活性在發酵前期48 h內快速增加,48 h達到酶活最大值,此時纖維素酶活為(66.72±0.049)U/g,木聚糖酶活為(363.78±4.085)U/g,果膠酶活為(732.46±2.055)U/g。此后,菌體開始有孢子出現,96 h達到酶活值的第二個高峰,但此時菌體孢子致密,之后酶活值下降。也就是說大部分酶是在菌絲旺盛生長時產生的,因此48 h為該菌株產酶的最佳培養時間。
圖1 三種酶活力隨時間變化規律
2.2 含水量對酶活性的影響
2.2.1 料水比對酶活性的影響 料水比是指果渣麩皮與水的比值。料水比越大,發酵物的粘度越大,物料的通透性越差,發酵溫度較高,對菌體生長影響較大,酶活性會下降。因此選擇適宜的料水比,增加物料通透性是發酵成功與否的關鍵。設計料水比分別為1∶0.5、1∶0.8、1∶1、1∶1.2、1∶1.6,測定不同的料水比對三種酶活力的影響。
從圖2中可以看出,當料水比為1∶0.51∶0.8時,三種酶活相對偏低;當料水比為1∶1.2時,三種酶活達到最大值;當料水比>1∶1.2時,
圖2 三種酶活力隨料水比變化規律
酶活有所下降。說明水分太少會導致菌體脫水,不能進行正常的生長代謝;而水分太多,底物變得黏稠,只有表面接觸到空氣的部分可以生長孢子,而靠近瓶底的深層部分因為接觸不到空氣,而降低了酶的活性。所以料水比確定為1∶1.2。
2.2.2 發酵過程中水分變化的測定 含水量是指物料含水的多少。含水量較高,物料多孔性降低,減少了物料內氣體的體積和氣體交換,難以通風、降溫,增加雜菌污染的危險;含水量低時,物料膨脹程度低,微生物生長受抑制,后期由于微生物生長及水分蒸發造成物料較干,微生物難以生長,產量降低,影響產品質量[5]。在料水比1∶1.2的情況下,不補水,每24 h測定培養基的水分含量。取0、1、2、3、4、5 d的固體發酵培養基1 g,放入烘箱105℃,烘烤24 h,測定水分消耗率,每組3個平行。
由圖3可以看出,在發酵前3天,水分變化相對平穩,以每天3%左右的百分率消耗,3天后水分消耗加劇。所以應適量補充水分,以滿足微生物的正常生長。補水量為每瓶培養基每天補水1 ml。
圖3 發酵過程中水分變化規律
2.2.3 補水與不補水對酶活性的影響 將每瓶培養基發酵2 d,不補水,測定酶活;將培養基發酵2 d,每天補水1 ml/瓶,測定酶活,將兩者對比,看是否需要補水。三種酶活變化分別見圖4。
由圖4可以看出,發酵第1天補水處理的三種酶活性均有所降低,第2、3天補水后三種酶活性都增加。這可能是因為發酵第1天,培養基本身水分適宜,補水后,水分含量過高,造成培養基透氣性差,菌體生長不良,產酶效果不好。發酵的后兩天,由于菌體生長、產熱消耗了一部分水分,水分含量偏低;補水后三種酶活性均有小幅度的增長,說明補水后水分含量適宜菌體生長,產酶效果良好。所以應從發酵第2天開始,每天補水1ml/瓶,對酶活有一定的提高作用。
圖4 補水與不補水三種酶活隨發酵時間變化
2.3 三種酶活性正交試驗結果
2.3.1 正交試驗纖維素酶活結果 由表2的R值分析可知,A>C>D>B,對固態發酵培養基產纖維素酶活影響最大的因素是硫酸銨添加量,其次是尿素添加量,再次是果渣和麩皮的比例,磷酸氫二鉀添加量影響最小。
表2正交試驗纖維素酶活結果
試驗號硫酸銨(A)磷酸氫二鉀(B)尿素(C)果渣∶麩皮(D)纖維素酶活性(U/g)
1111129.58 32.32
2122232.90 33.68
3133334.39 35.23
4212332.9 35.36
5223131.64 34.50
6231231.73 33.91
7313230.46 33.20
8321328.32 28.65
9332126.30 27.36
K1198.10193.82184.50181.70
K2200.04189.69188.50195.87
K3174.29188.91199.42194.85
K1平均33.0232.3030.7530.28
K2平均33.3431.6131.4232.65
K3平均29.0531.4933.2432.48
R4.290.812.492.37
運用DPS v7.05軟件進行方差分析,選用Duncan 新復極差法作多重比較。由方差分析表3可以看出,硫酸銨添加量、尿素添加量和果渣麩皮比例對纖維素酶活的影響極顯著;而磷酸氫二鉀添加量對纖維素酶活影響不顯著。
表3 正交設計纖維素酶活方差分析表
(隨機區組模型)
變異來源平方和自由度均方F值顯著性
區組14.1867114.1867
第1列68.5105234.255267.4281**
第2列2.320721.16042.2841不顯著
第3列19.880729.940419.5666**
第4列20.8195210.409820.4906**
誤差4.064280.5080
總和129.7824
由表4可以看出,處理因子A的水平2與水平1差異不顯著,但均與水平3差異顯著,即硫酸銨添加量選擇水平2和水平1對纖維素酶活都有利,為了得到最大活性,選擇水平2,即硫酸銨2.0%。處理因子B的3個水平之間差異不顯著,按照最經濟的原則,選擇水平1,即磷酸氫二鉀0.1%。處理因子C的水平3與水平2、1之間差異顯著,后兩者之間差異不顯著,為得到最大活性,選擇水平3,即尿素2.5%。處理因子D的水平2、3差異不顯著,均與水平1差異顯著。本試驗的原料果渣廉價易得,且為主要利用物,故選擇水平2,即果渣∶麩皮=4∶1。
表4不同因素水平間差異顯著性檢驗結果
硫酸銨(A)水平均值5%顯著水平磷酸氫二鉀(B)水平均值5%顯著水平尿素(C)水平均值5%顯著水平果渣∶麩皮(D)水平均值5%顯著水平
233.3383a132.3033a333.2367a232.6450a
133.0167a231.6150a231.4167b332.4750a
329.0483b331.4850a130.7500b130.2833b
綜上分析得:纖維素酶活最好的試驗組合為A2B1C3D2,即最優培養基組成為硫酸銨2.0%,磷酸氫二鉀0.1%,尿素2.5%,果渣∶麩皮=4∶1。
2.3.2 正交試驗木聚糖酶活結果 由表5的R值分析可知,A>C>D>B,對固態發酵培養基產木聚糖酶活影響最大的因素是硫酸銨添加量,其次是尿素添加量,再次是果渣和麩皮的比例,磷酸氫二鉀添加量影響最小。
表5正交試驗木聚糖酶活結果
試驗號硫酸銨(A)磷酸氫二鉀(B)尿素(C)果渣∶麩皮(D)木聚糖酶活性(U/g)
11111321.03 332.4
21222534.35 542.24
31333471.32 473.29
42123536.39 578.43
52231645.06 652.37
62312504.14 502.78
73132441.43 431.54
83213131.28 132.42
93321306.16 307.26
K12674.632641.221924.052564.28
K23419.172637.722804.832956.48
K31750.092564.953115.012323.13
K1平均445.77440.20320.68427.38
K2平均569.86439.62467.47492.75
K3平均291.68427.49519.17387.19
R278.1812.71198.49105.56
由方差分析(表6)可以看出,硫酸銨添加量、尿素添加量、果渣麩皮比例對木聚糖酶活的影響極顯著;磷酸氫二鉀對木聚糖酶活影響不顯著。
表6 正交設計木聚糖酶活方差分析表
(隨機區組模型)
變異來源平方和自由度均方F值顯著性
區組210.60361210.6036
第1列233052.33722116526.16861098.5445**
第2列618.04642309.02322.9133不顯著
第3列127242.8201263621.4101599.7876**
第4列34061.4658217030.7329160.5564**
誤差848.58588106.0732
總和396033.8590
由表7可以看出,處理因子A的3個水平間差異顯著,選擇水平2為最佳,即硫酸銨2.0%。處理因子B的3個水平差異不顯著,從經濟的角度考慮,選擇水平1,即磷酸氫二鉀0.1%。處理因子C的3個水平間差異顯著,選擇水平3最佳,即尿素2.5%。處理因子D的3個水平差異顯著,選擇水平2,即果渣∶麩皮=4∶1。
綜合上述分析可知,木聚糖酶活最好的試驗組合為A2B1C3D2,即最優培養基組成為硫酸銨2.0%,磷酸氫二鉀0.1%,尿素2.5%,果渣∶麩皮=4∶1。
表7不同因素水平間差異顯著性檢驗結果
硫酸銨(A)水平均值5%顯著水平磷酸氫二鉀(B)水平均值5%顯著水平尿 素(C)水平均值5%顯著水平果渣∶麩皮(D)水平均值5%顯著水平
2569.8617a1440.2033a3519.1683a2492.7467a
1445.7717b2439.6200a2467.4717b1427.3800b
3291.6817c3427.4917a1320.6750c3387.1883c
2.3.3 正交試驗果膠酶活結果 由表8的 R值可知,D>A>B>C,對固態發酵培養基產果膠酶活影響最大的因素是果渣和麩皮的比例,其次是硫酸銨添加量,再次是磷酸氫二鉀添加量,而尿素添加量影響最小。
表8正交試驗果膠酶活結果
試驗號硫酸銨(A)磷酸氫二鉀(B)尿素(C)果渣∶麩皮(D)果膠酶活性(U/g)
11111580.63 577.32
21222806.34 798.67
31333776.45 767.67
42123808.67 853.23
52231587.75 577.68
62312820.78 832.89
73132702.26 696.56
83213699.66 690.23
93321450.24 463.24
K14307.084218.674201.513236.86
K24481.004160.334180.394657.50
K33702.194111.274108.374595.91
K1平均717.8467703.1117700.2517539.4767
K2平均746.8333693.3883696.7317776.2500
K3平均617.0317685.2117684.7283765.9850
R129.801717.900015.5233236.7733
由方差分析(表9)可以看出,硫酸銨添加量、果渣麩皮比例對果膠酶活影響都極顯著,尿素添加量、磷酸氫二鉀添加量對果膠酶活影響不顯著。
表9 正交設計果膠酶活方差分析
(隨機區組模型)
變異來源平方和自由度均方F值顯著性
區組33.9213133.9213
第1列55704.7275227852.3637171.1953**
第2列963.62222481.81112.9615不顯著
第3列794.88862397.44432.4429不顯著
第4列214946.01332107473.0067660.5857**
誤差1301.54818162.6935
總和273744.7210
由表10可知,處理因子A的3個水平之間差異顯著,水平2最好;處理因子B的水平1最好;處理因子C的水平間差異不顯著,從經濟方面考慮,低添加量最好,選擇水平1;處理因子D的水平2、3間差異不顯著,均顯著高于水平1,選擇水平2。
綜合上述分析,果膠酶活最好的試驗組合為A2B1C1D2,即最優培養基組成為硫酸銨2.0%,磷酸氫二鉀0.1%,尿素1.5%,果渣∶麩皮=4∶1。
表10不同因素水平間差異顯著性檢驗結果
硫酸銨(A)水平均值5%顯著水平磷酸氫二鉀(B)水平均值5%顯著水平尿 素(C)水平均值5%顯著水平果渣∶麩皮(D)水平均值5%顯著水平
2746.8333a1703.1117a1700.2517a2776.2500a
1717.8467b2693.3883ab2696.7317a3765.9850a
3617.0317c3685.2117b3684.7283a1539.4767b2.3.4 正交試驗結果的分析 對上述正交試驗結果進行綜合分析,結果表明,纖維素酶活最好的試驗組合為A2B1C3D2,木聚糖酶活為A2B1C3D2,果膠酶活為A2B1C1D2,可以看出,三種酶活對培養基的硫酸銨、磷酸氫二鉀、果渣麩皮比例要求一致,分別為2.0%、0.1%和4∶1;而在尿素的添加量上存在差異,纖維素酶和木聚糖酶的最適添加量為2.5%,而果膠酶要求1.5%。
試驗的目的是得出三種酶活都較高的最適培養基,所以對尿素的添加量需要統一。對三個方差分析表進行綜合分析,尿素添加量對纖維素酶活和木聚糖酶活的影響極顯著,而對果膠酶活影響不顯著。從這點上看,尿素添加量最終選定為2.5%。
固態發酵產復合酶本身是一個混合體系,所以應選擇三種酶活性均較高的優化組合。本試驗得到蘋果渣固態發酵產復合酶優化后培養基配方:硫酸銨2.0%,磷酸氫二鉀0.1%,尿素2.5%,果渣∶麩皮=4∶1。
2.4 補充試驗
將蘋果渣按照基礎培養基和優化后培養基配方進行發酵,48 h后比較三種酶活的大小。基礎培養基:纖維素酶活(U/g)為66.72±0.049,木聚糖酶活363.78±4.085,果膠酶活732.46±2.055;優化后培養基:纖維素酶活為109.55±0.124,木聚糖酶活426.56±2.130,果膠酶活885.50±3.015。采用優化后培養基,三種酶活分別較基礎培養基提高了64.19%、17.26%、20.89%。
3 結論
3.1 最佳發酵周期的確定:以基礎培養基發酵微生物,每12 h測定發酵產物的纖維素酶、果膠酶、木聚糖酶活性,探索最大酶活產生的時間,得到最佳發酵時間為48 h。
3.2 最佳料水比確定為1∶1.2。發酵過程中水分的變化測定發現,在發酵前3天,水分變化相對平穩,以每天3%左右的百分率消耗,此后水分消耗加大,應每天補水1 ml/瓶。補水與不補水的對比試驗表明,補水后三種酶活均有小幅度增大,但發酵第1天例外,因為發酵初期培養基水分含量高,此時補水會造成通氧效果差,影響菌體生長。發酵中由于產熱,消耗水分,所以從發酵第2天起,每天補水1 ml/瓶,對酶活有一定的提高作用。
3.3 通過正交試驗,同時運用極差分析、方差分析以及不同因素水平間差異顯著性檢驗對結果進行分析,確定優化后培養基配方為:硫酸銨2.0%,磷酸氫二鉀0.1%,尿素2.5%,果渣∶麩皮=4∶1。優化后的三種酶活比基礎培養基分別提高了64.19%、17.26%和20.89%。
致謝:承蒙山東農業大學植物保護學院于金鳳教授幫助分析數據,謹致謝意。
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