趙曉霞 沈莉 李建民 張愛紅
國外輸血事業發達國家為節約和充分利用血液資源,臨床治療用血小板多以手工匯集制備為主。手工制備血小板又以白膜法機器分離為主,本文對使用Compomaster G4自動血液分離儀,白膜法制備的42例單人份濃縮血小板制品質量進行調查,報告如下。
1.1 儀器 Beckman J-6B型離心機(美國制造)、Beckman counter血細胞計數儀(美國制造)、400 ml四聯采血袋(廣州華南)、Compomaster G4自動血液分離儀(德國費森尤斯制造)。
1.2 方法
1.2.1 血液的初次離心和分離:將四聯袋采集的新鮮(1~3 h內)400 ml全血,以2 515 ×G,14 min,22℃為離心條件,置于離心機中進行重離心;離心后的血袋置于Compomaster G4自動血液分離儀上進行自動分離血漿和白膜;分離畢用止血鉗將紅細胞、血漿及白膜袋上的導管夾住并從儀器上取下聯袋;對聯袋進行熱合封口,余下含白膜和空轉移袋的二聯袋,經靜置1~2 h后進行二次離心。
1.2.2 白膜的二次離心和分離:將靜置后含白膜和空轉移袋的二聯袋,以280×G,10 min,22℃為離心條件,置于離心機中進行輕離心;離心后的二聯袋置于Compomaster G4自動血液分離儀上進行自動分離;分離畢用止血鉗將導管夾住并從儀器上取下二聯袋;熱合下含血小板的袋子即為制備的濃縮血小板。
1.2.3 制備后血小板制品的檢測:按Beckman counter血細胞計數儀說明書提供的方法和配套試劑對血小板制品進行檢測。
2.1 400 ml全血手工制備濃縮血小板的質量標準[1]為:血小板計數(PLT)≥4.0×1010;白細胞(WBC)混入量≤5.0×108;紅細胞污染量(RBC)≤2.0×109。
2.2 42 例單人份白膜法機器制備及12例單人份白膜法手工制備(除分離方法的差異外,余均相同)的濃縮血小板制品質量檢測結果見表1。
表1 濃縮血小板制品質量檢測情況±s

表1 濃縮血小板制品質量檢測情況±s
注:#僅作為參比
方法 血小板計數(1010)白細胞混入量(108)紅細胞污染量(109)紅細胞損失量(g)4.35 ±0.21 0.24 ±0.05 1.05 ±0.03 35 ±2手工分離+白膜法#(n=12) 4.06±0.23 0.43±0.03 1.09 ±0.02 46±3 u值機器分離+白膜法(n=42)4.603 16.38 5.405 11.91 P值 <0.01 <0.01 <0.01 <0.01
Compomaster G4自動血液分離儀的優點是:無論是分離血漿、白膜或血小板等血液成分,分離過程可根據不同客戶的要求,針對不同的離心條件、不同的采血袋、不同的工藝要求等,依客戶自行編制的不同“程序”(程序編制簡單易學,且程序存貯空間大,可滿足不同層次的需要),“程序”主要是讓機器實現客戶要求的一組命令,該命令可對電磁閥的開、關、封口,上、下擠壓板擠壓距離,血液成分流速控制,中置隔板的伸出與縮回,紅外線探測頭探測位置等進行自動控制,靠“程序”自動控制以提高血液成分的分離精度。該儀器中置隔板的設計,在分離白膜時有最大限度收獲白膜和減少紅細胞損失的雙重作用。此外,在軟件方面為客戶提供了功能強大的平臺,可滿足諸如掃碼、存貯、打印等需求。
本實驗用Compomaster G4自動血液分離儀白膜法制備血小板,僅就血小板制品質量而言,無論是機器分離或手工分離白膜法制備的濃縮血小板制品質量均能符合國家標準。但在紅細胞損失量和白細胞混入量上二者有差異,前者好于后者。究其原因,一是手工分離的過程中受操作者手法及熟練程度的影響;二是機器分離過程不受人為因素影響只是執行程序而已,且中置隔板和紅外線探測頭聯合發揮作用可提高分離精度,同時分離程序編輯和調整也起一定作用。在保證血小板質量的前提下,且又盡可能減少濃縮紅細胞的損失上,機器分離白膜較手工分離白膜可減少紅細胞損失達10 g以上。
綜上所述,由于實驗本身數量及范圍有限,不代表該儀器所能實現的最終結果。
1 李捷,沈莉,李建民,等.集量濃縮血小板的制備.河北醫藥,2009,31:614.