產赤蘚糖醇菌株的篩選與鑒定

劉 鵬，王澤南*，蘇 婭，李 瑩，張秋子，吳紅引

(合肥工業大學生物與食品工程學院，安徽 合肥 230009)

產赤蘚糖醇菌株的篩選與鑒定

劉 鵬，王澤南*，蘇 婭，李 瑩，張秋子，吳紅引

(合肥工業大學生物與食品工程學院，安徽 合肥 230009)

利用含有300g/L葡萄糖的高滲培養基從蜂蜜、花粉、土壤等樣品中篩選耐高滲酵母菌，經薄層層析和高效液相色譜分析得到兩株產赤蘚糖醇且不產甘油的酵母菌，通過高碘酸氧化法篩選出其中赤蘚糖醇產量較高的一株菌株E54。菌株E54在含葡萄糖200g/L、酵母膏5g/L的發酵培養基中發酵90h，赤蘚糖醇產量為41.1g/L，轉化率為22.8%。通過形態觀察、生理生化實驗、5.8S rDNA序列分析并構建系統進化樹，初步鑒定E54為Moniliella acetoabutans(叢梗孢酵母)。

赤蘚糖醇；篩選；鑒定；叢梗孢屬；系統進化樹

Abstract：Osmophilic yeasts were isolated from honey, pollen and soil by using the medium containing 30% glucose. Two strains producing erythritol but not producing glycerol were identified by thin layer chromatography (TLC) and high performance liquid chromatography (HPLC). Strain E54 with high ability to produce erythritol was selected by periodic acid oxidation method.The productivity and conversion rate of erythritol were 41.1 g/L and 22.8% after fermentation for 90 h using strain E54 in the medium containing 20% glucose and 0.5% yeast extract. This strain was identified asMoniliella acetoabutansthrough the analyses of morphological, physiological and biochemical characteristics, 5.8S rDNA sequence and the established phylogenetic tree.

Key words：erythritol；screening；identification；Moniliella；phylogenetic tree

赤蘚糖醇是一種新型甜味劑，它有著熱量值很低、耐受量高、非致齲齒特性[1]、抗氧化活性[2]等優良特性。因此，赤蘚糖醇越來越受到人們的關注，其生產能力和市場規模正日益擴大。

赤蘚糖醇在工業上主要由微生物發酵而得，國外在產赤蘚糖醇菌株的選育方面研究較早[1]。1957年Spencer等[3]發現一些耐高滲酵母可以產甘油、赤蘚糖醇和阿拉伯糖醇。1964年Hajny等[4]篩選到一株產赤蘚糖醇Torulopsis屬酵母。1989年Ishizuka等[5]篩選到菌株Aureoasidiumsp. SN-115。其后篩選到的產赤蘚糖醇的菌株有Trichosporon屬[6]、Candida屬[7]、Moniliella屬[8]等。我國對赤蘚糖醇的研究起步較晚，公開報道的有南京化工大學的徐虹等[9]篩選到一株耐高滲酵母T-9，江南大學的范光先等[10]篩選出一株球擬酵母OS-194，江蘇微生物研究所的吳燕等[11]篩選到一株圓酵母B845，山東農業大學的葉嫻等[12]篩選出一株球擬酵母K-23。目前日本、韓國等國對赤蘚糖醇的開發利用較多，用于商業的主要是日本Aureobasidiumsp.變異株和韓國的Candida magnoliae[13]。國內篩選的菌株大都還停留在實驗室研究階段，產量較低，因此篩選出赤蘚糖醇高產菌株顯得極為必要。本研究從花粉、蜂蜜、土壤等樣品中篩選赤蘚糖醇高產株，并對其進行鑒定，為后續的菌種改良以及赤蘚糖醇工業化生產提供科學依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

土壤、蜂蜜和花粉采集于合肥周邊果園和蜂場。

葡萄糖、赤蘚糖醇、聯苯胺、高碘酸鈉、變色酸、丙酮、氯化亞錫等均為分析純；瓊脂粉、酵母膏等為生化試劑。

1.2 儀器與設備

SW-CJ-1F超凈工作臺 蘇州凈化設備有限公司；722E型可見分光光度計 上海光譜儀器有限公司；液相色譜工作站 美國Waters公司；JSM-6700F掃描電子顯微鏡 日本電子公司。

1.3 方法

1.3.1 培養基和培養方法

富集培養基：葡萄糖300g/L、酵母膏5g/L；平板和斜面培養基：葡萄糖200g/L、酵母膏5g/L、瓊脂30g/L；發酵培養基：葡萄糖200g/L、酵母膏5g/L[8]。

富集培養：在裝液量為20%、30℃、180r/min的條件下搖床培養3d；平板培養：在恒溫培養箱中30℃培養2d；斜面培養：在恒溫培養箱中30℃培養2d后冰箱保藏；搖瓶發酵：在裝液量為10%、30℃、180r/min的條件下搖床培養90h[14]。

1.3.2 產赤蘚糖醇菌株的初篩

將樣品稀釋后富集培養，用高滲平板篩選出耐高滲酵母。將篩選出來的耐高滲酵母搖瓶培養48h，用薄層層析法[15]初步鑒定發酵液中是否含有赤蘚糖醇，再通過高效液相色譜做進一步的確定。

薄層層析展開劑為正丁醇-乙酸-水，體積比4:1:1；顯色液A(0.1%高碘酸鈉溶液)；顯色液B(2.8g聯苯胺溶于80mL 95%乙醇，70mL蒸餾水，30mL丙酮，1.5mL鹽酸，靜置12h備用)。

高效液相色譜法：色譜柱為Cosmosil Sugar-D糖柱(4.6mm×250mm，5μm)；洗脫劑為乙腈、水(體積比80:20)；流速1.0mL/min；柱溫30℃；Waters 515泵；檢測器為Waters 2420檢測器(ELSD，蒸發光檢測器)；增益值(gain) 100；氣壓25psi；漂移管溫度(tube temp)55℃；噴霧器級別60%。

1.3.3 產赤蘚糖醇菌株的復篩

發酵液中赤蘚糖醇含量的測定方法為高碘酸氧化法，殘糖的測定方法為3,5-二硝基水楊酸法。復篩以赤蘚糖醇含量和轉化率為依據，篩選出發酵性能較優菌株。

高碘酸氧化法：參見文獻[16]。3,5-二硝基水楊酸法：參見文獻[17]。

1.3.4 菌株鑒定

細胞形態觀察：將試管斜面中的菌落制成菌懸液，經過清洗、固定、脫水、干燥、鍍金后，用掃描電鏡觀察[18]。菌落形態的觀察：參見文獻[14]。生理生化實驗：參見文獻[19]。5.8S rDNA序列測定：交由上海生物工程有限公司測定。系統進化樹的分析：軟件MEGA4.1。

2 結果與分析

2.1 產赤蘚糖醇菌株的初篩

2.1.1 發酵液薄層層析結果

赤蘚糖醇的Rf值約為0.25，展開斑點為白色，甘油Rf值約為0.35，展開斑點為黃色，兩者分離效果和重現性都很好。從樣品中篩選出4株產赤蘚糖醇菌株E21、E28、E51和E54，其薄層層析結果見表1。

表1 薄層層析結果Table 1 Results of thin layer chromatographic separation of fermentation broths of four selected strains

由于菌株E51和E54在層析板上的赤蘚糖醇斑點較大且沒有甘油斑點，說明其赤蘚糖醇含量較高，且沒有副產物甘油。因此選擇菌株E51和E54通過高效液相色譜做進一步的確定。

2.1.2 發酵液高效液相圖譜

將菌株E51和E54的48h發酵液稀釋后通過高效液相色譜做進一步的判定，其高效液相色譜圖見圖1。

圖1 高效液相色譜結果Fig.1 HPLC profiles of erythritol and glycerol standards and fermentation broths of strains E51 and E54

由圖1a和b可以看出赤蘚糖醇的保留時間約為6.8min，甘油的保留時間約為5.5min。由圖1c和d可知菌株E51和E54的發酵液中含有赤蘚糖醇，不含甘油。其與薄層層析所得結果一致。因此，選擇菌株E51和E54做進一步的篩選。

2.2 產赤蘚糖醇菌株的復篩

將菌株E51和E54搖瓶發酵90h后測定發酵液中赤蘚糖醇和殘糖含量，取平均值，測定結果見表2。

表2 菌株E51和E54發酵結果(n=3)Table 2 Comparative fermentation results obtained using strains E51 and E54 (n=3)

從表2可以看出，菌株E54發酵性能穩定，發酵90h后赤蘚糖醇含量達到41.1g/L，轉化率達到了22.8%，均比E51要高。國內篩選的原始菌株中產量較高的K-23[12]發酵144h后赤蘚糖醇產量為46.8g/L，轉化率為23.4%，E54與之相比發酵時間相對較短的情況下，產量處于較高水平。因此選擇菌株E54作為赤蘚糖醇的生產菌株。

2.3 菌株鑒定

2.3.1 E54細胞形態和菌落形態

圖2a顯示E54細胞為不規則球形、橢圓形，直徑約為4～5μm，出芽生殖，呈串狀排列，較老細胞表面散布著一些凸出物。圖2b顯示E54菌落形態較干，白色不透明，不光滑，表面有皺褶，邊緣不規整。根據文獻[8]和[19]，通過觀察發現菌株E54的細胞和菌落形態與Moniliella屬、Trichosporon屬、以及Candida屬較為接近。

圖2 菌株E54的細胞形態和菌落形態Fig.2 Morphology and colony of strain E54

2.3.2 生理生化實驗

表3 菌株E54的生理生化特性實驗結果與比較Table 3 Comparisons of physiological and biochemical properties of strain E54,Moniliella,TrichosporonandCandida

如表3所示，菌株E54的一些關鍵生理生化實驗結果與Moniliella屬一致，而與Trichosporon屬有明顯的不同，與Candida屬無法判斷。

2.3.3 5.8S rDNA序列分析及構建系統發育樹

圖3 菌株E54的系統發育樹Fig.3 Phylogenetic tree of strain E54

克隆所得的E54的5.8S rDNA序列全長為440bp，將結果在GenBank中進行同源系列搜索。根據同源序列搜索結果，下載相似性較高的酵母菌菌種的相關序列進行分析。采用Neighbor-Joining法進行分子系統學分析，構建系統發育樹(圖3)。結果表明，篩選菌株E54和Moniliella acetoabutans(EU252153.1)的遺傳距離最近，且核苷酸序列同源性達到了98%，因此可以認為E54屬于Moniliella acetoabutans(叢梗孢酵母)。

3 結 論

經高滲培養基的篩選及薄層層析和高效液相色譜的分析，從花粉中篩選到產赤蘚糖醇不產甘油的菌株E51和E54。由高碘酸氧化法復篩得到高產株E54。菌株E54在含葡萄糖200g/L、酵母膏5g/L的發酵培養基中培養90h后，赤蘚糖醇產量達到41.1g/L，轉化率為22.8%。其在發酵時間相對較短的情況下赤蘚糖醇的產量處于較高的水平，是一株較好的生產菌株。

細胞形態、菌落形態觀察和生理生化實驗結果顯示菌株E54與Moniliella屬酵母菌一致，5.8S rDNA序列分析及系統發育樹顯示，菌株E 54和Moniliella acetoabutans(EU252153.1)最為接近，因此可以初步鑒定E54屬于Moniliella acetoabutans(叢梗孢酵母)。

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Screening and Identification of Erythritol-producing Strains

LIU Peng，WANG Ze-nan*，SU Ya，LI Ying，ZHANG Qiu-zi，WU Hong-yin
(School of Biotechnology and Food Engineering, Hefei University of Technology, Hefei 230009, China)

Q93.331

A

1002-6630(2010)21-0308-04

2010-07-19

安徽省教育廳重點項目(Kj2010A276)

劉鵬(1987—)，男，碩士研究生，研究方向為生物資源綜合利用。E-mail：liupeng2244@gmail.com

*通信作者：王澤南(1947—)，男，教授，本科，研究方向為農產品加工與貯藏。E-mail：wznan@ah163.com