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大豆根瘤促生劑對費氏中華根瘤菌產結瘤因子影響

2011-04-30 05:44:58王夢亮
山西農業科學 2011年6期
關鍵詞:大豆

王夢亮,張 婧

(山西大學應用化學研究所,山西太原030006)

大豆是我國主要的糧食和油料作物,同時也是重要的飼料作物,但是,近年來我國大豆呈現出產量低、品質差的特點,我國從大豆的凈出口國變成了大豆的凈進口國[1]。山西省耕地面積少、耕地質量差,同時人口眾多,因此,提高大豆的產量和質量迫在眉睫。近年來,山西省對于大豆的研究有了較大的發展,并且發現山西省土壤中99.4%以上的根瘤菌為費氏中華根瘤菌[2]。對此,山西大學應用化學研究所經過幾年的努力,利用植物仿生學原理,研制出了一種大豆根瘤促生劑,經過3 a大面積田間試驗后發現,在底肥中添加大豆根瘤促生劑后,可以使大豆產量提高30%~50%,中期取樣時發現,施加后的大豆植物體根部產生的根瘤明顯多于未施加的,且多為有效瘤。大量的研究也表明,大豆結瘤受很多外在因素的影響[3-4]。

結瘤因子作為豆科植物結瘤過程中的信號分子,在豆科植物結瘤和根瘤菌的專一性方面起著舉足輕重的作用,它是根瘤菌在根系分泌物(主要為類黃酮類物質)的誘導下產生的一種脂寡糖類化合物[5-6]。同一根瘤菌在不同誘導劑的作用下產生的結瘤因子的種類和數量均不同[7]。侯衛國等[7-8]均用高效液相色譜對結瘤因子進行了檢測,所用的檢測器均為紫外檢測器,但此方法比較復雜,因此,本研究中決定以合適的誘導劑對根瘤菌培養液進行誘導后,以紫外分光光度計對結瘤因子進行檢測[9]。

本研究通過大豆根瘤促生劑對費氏中華根瘤菌產結瘤因子的影響,初步確定大豆根瘤促生劑的作用機理,進而使大豆根瘤促生劑可以更好地應用于大豆生產中。

1 材料和方法

1.1 材料

費氏中華根瘤菌,購自中國科學院微生物研究所。晉豆25號,由山西省農業科學院作物科學研究所提供。大豆根瘤促生劑、752型紫外分光光度計,由山西大學應用化學研究所提供。染料木黃酮,購自sigma公司。

培養基(1000mL):葡萄糖15g,K2HPO40.39g,(NH4)2SO41.5 g,KH2PO40.61 g,MgSO40.6 g,豆芽200 g,瓊脂 15~20 g,NaCl0.1 g,pH 值 7.0(液體培養時不加瓊脂)。

1.2 方法

1.2.1 大豆根瘤促生劑對費氏中華根瘤菌生長的影響 向50mL液體培養基中加入費氏中華根瘤菌進行搖床培養,培養2 d后得到種子液。向50mL液體培養基中加入0.5mL種子液和0.05mL大豆根瘤促生劑進行培養,每1 h取樣1次,于600 nm處測定吸光度值。每個樣品取3個重復求平均值,以菌體培養基為對照,分別繪制添加根瘤促生劑和不添加根瘤促生劑菌體的生長曲線。同時采用平板菌落計數法對施用過根瘤促生劑的田間土壤樣品中的根瘤菌進行計數。

1.2.2 費氏中華根瘤菌產結瘤因子檢測波長的確定 (1)結瘤因子的誘導:向培養至對數期的菌液中加入0.1%的染料木黃酮后繼續培養2 d。(2)結瘤因子的提取:將培養液在10 000 r/min下離心30min,取上清液;用1/4體積的正丁醇抽提上清液3次,取正丁醇相;減壓蒸發去有機相,以雙蒸水溶解剩余物;以等體積乙酸乙酯洗滌3次,取水相。(3)結瘤因子檢測波長的確定:將處理過的添加染料木黃酮的培養液(以處理過的不加染料木黃酮培養液為空白對照)進行全波長掃描后,即可得到費氏中華根瘤菌結瘤因子的檢測波長。

1.2.3 大豆根瘤促生劑對費氏中華根瘤菌產結瘤因子的影響 根系研磨物的制備:大豆水培5 d后選取數顆,剪下根部,加10mL無菌水和少量石英砂在研缽中進行研磨,研磨均勻后用濾紙進行過濾,得到的濾液用0.22μm濾膜過濾后冷藏備用。

分別向培養至對數期的菌液中加入0.1%大豆根瘤促生劑、0.1%的根研磨液、0.1%大豆根瘤促生劑+0.1%的根研磨液,于1.2.2確定的檢測波長處進行比對。

1.2.4 大豆根瘤促生劑作用下費氏中華根瘤菌產結瘤因子培養條件的優化

1.2.4.1 培養基對費氏中華根瘤菌產結瘤因子的影響 分別以市售綠豆芽、黃豆芽及實驗室培養的黃豆芽配制培養基,在培養至對數期時分別向3種不同的培養基中加入0.1%的根研磨液后再培養2 d,誘導處理后于1.2.2確定的檢測波長處進行比對,結瘤因子的誘導方法同1.2.2。

1.2.4.2 誘導劑對費氏中華根瘤菌產結瘤因子的影響 將菌液培養至對數期時分別加入0.1%全豆芽研磨液+0.1%大豆根瘤促生劑、0.1%全豆芽研磨液、0.1%大豆根瘤促生劑、0.1%根研磨液,繼續培養2 d,進行誘導處理后,于1.2.2確定的檢測波長處進行比對。

1.2.4.3 誘導劑用量對費氏中華根瘤菌產結瘤因子的影響 分別向培養至對數期的菌液中加入 0.1%,0.5%,1.0%,1.5%,2.0%由 1.2.4.2確定的誘導劑培養2 d,誘導處理后于確定的波長處進行比對。

1.2.4.4 溫度對費氏中華根瘤菌產結瘤因子的影響 將培養至對數期的費氏中華根瘤菌置于10,15,20,25,30,35,40,45,50 ℃下培養,2 d 后處理,于1.2.2確定的檢測波長處進行比對。

2 結果與分析

2.1 大豆根瘤促生劑對費氏中華根瘤菌生長的影響

2.1.1 實驗室條件下大豆根瘤促生劑對費氏中華根瘤菌生長的影響 通過添加大豆根瘤促生劑和未添加過的取樣后繪制出的菌體生長曲線(圖1)可以看出,添加大豆根瘤促生劑后,費氏中華根瘤菌的對數期提前,穩定期持續時間延長,且在相同的培養時間內,添加大豆根瘤促生劑的培養液中的菌體濃度明顯高于對照組。

2.1.2 大豆根瘤促生劑對土壤中費氏中華根瘤菌生長的影響 從表1可以看出,添加過不同用量大豆根瘤促生劑的土壤中費氏中華根瘤菌的數量明顯高于對照組,且大豆根瘤促生劑的用量越大,費氏中華根瘤菌的數量越多。

表1 大豆根瘤促生劑對土壤中費氏中華根瘤菌生長的影響

2.2 費氏中華根瘤菌產結瘤因子檢測波長確定

將添加過染料木黃酮的費氏中華根瘤菌菌液處理后(以未添加過任何誘導劑的菌液(進行相同的誘導處理)為空白對照)進行全波長掃描,得出費氏中華根瘤菌產生的結瘤因子在218 nm處具有吸收峰,即費氏中華根瘤菌產生的結瘤因子的檢測波長為218 nm。

2.3 大豆根瘤促生劑對費氏中華根瘤菌產結瘤因子的影響

由圖2可知,未添加任何誘導劑的菌液中結瘤因子的OD218為0.018,加入0.1%大豆根瘤促生劑的菌液中結瘤因子的OD218為0.479,加入0.1%根研磨液的菌液中結瘤因子的OD218為0.510。同時,添加0.1%大豆根瘤促生劑和0.1%根研磨液的菌液中產生的結瘤因子的OD218為0.798。可以得出,大豆根瘤促生劑可以誘導費氏中華根瘤菌產生結瘤因子,且大豆根瘤促生劑與根系研磨液對費氏中華根瘤菌產結瘤因子具有相同的作用效果。

2.4 在大豆根瘤促生劑作用下,費氏中華根瘤菌產結瘤因子培養條件的優化

2.4.1 不同培養基對費氏中華根瘤菌產結瘤因子的影響 從圖3可以看出,市售綠豆芽配制的培養基產生的結瘤因子的OD218為0.325,市售黃豆芽配制的培養基產生的結瘤因子的OD218為0.413,實驗室培養的黃豆芽配制的培養基產生的結瘤因子的OD218為0.525。這可能是因為:(1)綠豆中含有抑菌成分;(2)市售黃豆芽中大部分是添加過尿素的,在制作培養基的過程中并不能完全清除沾染在豆芽上的尿素,而尿素對根瘤菌的生長可能有一定的影響。

2.4.2 不同誘導劑對費氏中華根瘤菌產結瘤因子的影響 從表2可以看出,以不同誘導劑誘導產生的結瘤因子的量不同,從多到少依次為:0.1%全豆芽研磨液+0.1%大豆根瘤促生劑、0.1%全豆芽研磨液、0.1%根研磨液、0.1%大豆根瘤促生劑。由于全豆芽研磨液中含有的類黃酮類物質多于豆芽根研磨液,所以全豆芽研磨液可以誘導產生更多的結瘤因子。

表2 誘導劑對費氏中華根瘤菌產結瘤因子的影響

2.4.3 誘導劑用量對費氏中華根瘤菌產結瘤因子的影響 從圖4可以看出,雖然隨著誘導劑用量的增加,費氏中華根瘤菌產生的結瘤因子的量也在增加,但是,從1.0%開始,結瘤因子量的漲幅變小,從經濟和實用的角度考慮,選用1.0%的誘導劑比較合理。而造成這一情況的原因是在相同的培養環境中可以存在的根瘤菌數是動態平衡的,所以可以利用的誘導劑用量是一定的,過多的誘導劑反而會造成浪費。

2.4.4 溫度對費氏中華根瘤菌產結瘤因子的影響 由圖5可知,隨著溫度的升高,費氏中華根瘤菌產生的結瘤因子的濃度逐漸增加;但30℃以后,隨著溫度的升高,結瘤因子的濃度逐漸減小。這可能是因為,結瘤因子的產生與酶的作用有關,隨著溫度的升高,酶的活性逐漸提高;但過高的溫度可能會使酶失活,從而導致根瘤菌產生的結瘤因子的量減少。同時,30℃時菌體活力較高,也可能會促進根瘤菌產生和分泌結瘤因子。

3 結論

本研究得出,大豆根瘤促生劑不僅可以促進費氏中華根瘤菌的生長,而且可以在一定程度上誘導費氏中華根瘤菌產生結瘤因子;作為大豆結瘤中的關鍵因子,結瘤因子量的增加對大豆結瘤具有促進作用。當然,由于一些因素的影響,本試驗只進行了很小一部分的研究,還不能完全確定該根瘤促生劑的作用機理。添加大豆根瘤促生劑后對費氏中華根瘤菌產生的結瘤因子的結構是否有影響、根瘤促生劑能否對其他豆科植物或非豆科植物的結瘤及固氮具有影響等均是以后研究的重點。為使大豆根瘤促生劑更好地應用于農業生產,還需要進行更深入和徹底的研究。

[1] 瞿商,趙德馨.中國大豆進出口形勢的逆轉與糧食安全——百年間中國大豆國際貿易地位的逆轉及其歷史啟示 [J].貴州財經學院學報,2011(2):43-48.

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[3] 史清亮,馬玉珍,賀躍武,等.山西土著花生根瘤菌的數量分布及其共生結瘤固氮特性 [J].山西農業科學,1999,27(2):49-51.

[4] 王樹起,韓曉增,喬云發,等.施氮對大豆根瘤生長和結瘤固氮的影響[J].華北農學報,2009,24(2):176-179.

[5] 王逸群,趙仁貴,王玉蘭,等.豆科植物結瘤及其結瘤的分子基礎[J].吉林農業科學,2001,26(5):20-25.

[6] 張林維.根瘤菌脂殼寡糖結瘤因子研究概況[J].微生物學通報,1999,26(6):440-442.

[7] 侯衛國.慢生根瘤菌結瘤因子的研究[D].南京:南京師范大學,2007.

[8] 王安兆.結瘤因子誘導紫花苜蓿根毛變形過程中鈣與微絲作用的初步研究[D].北京:中國農業大學,2004.

[9] 楊國平,朱軍,徐蘇蕓,等.根瘤菌結瘤因子的微量生物檢測法[J].微生物學通報,1996,23(1):56-57.

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