熊琪輝(綜述),甘華俠(審校)
(南昌大學a.研究生院醫學部2009級;b.第一附屬醫院內分泌科,南昌 330006)
糖尿病性腎病(diabetic nephropathy,DN)是糖尿病患者的重要死因,同時又是導致腎功能衰竭的一個重要疾病。早期診斷DN,有利于提高糖尿病患者的生存率、生活質量,減少國家的醫療負擔。目前尚缺乏更優于尿微量白蛋白的檢測指標,以更早的發現潛在的DN人群,早期對其進行干預,改變DN的發展及預后。
硫酸乙酰肝素(heparan sulfate,HS)為廣泛存在于脊椎動物和無脊椎生物組織細胞外基質(extracellular matrixc,ECM)和細胞表面的生物大分子,并且是腎小球基底膜(glomerular basement membrane,GBM)的主要構成成分。乙酰肝素酶(heparanase,HPA)是一種葡萄糖醛酸內切酶,通過特異性降解釋放出多種與HS結合的活性因子[堿性成纖維細胞生長因子(bFGF)、血小板源性生長因子、白介素-2、肝素輔助因子Ⅱ等],參與許多病理和生理過程。正常生理條件下,其基因表達和酶活性受到多種因素調控,否則其過度表達會促進諸多病理過程發生,如:腫瘤浸潤轉移、血管形成、炎癥和自身免疫反應等。
筆者就近年來國內外關于HPA與DN之間相關性的研究進行綜述,以求進一步明確二者之間可能存在的關聯。
M.H??k等[1]于1975年在鼠肝臟組織中發現一種降解HS側鏈的內切糖苷酶,這是首次對于HPA存在的報道。但由于該酶的含量低、性質不穩定,并缺乏一種高效的檢測方法,HPA蛋白的分離純化研究遇到了重重困難。直到90年代后期,澳大利亞C.Freeman等[2]才成功建立了一個能夠快速定量檢測 HPA的方法。隨后I.Vlodavsky等[3-4]的實驗室又分別獨立完成了HPA cDNA的基因克隆,推動了當今對HPA的進一步研究。
HPA基因的單核苷酸全長序列已經明確。該基因定位于4號染色體q21.3上,從起始密碼子到終止密碼子全長為40kb,含有12個外顯子和11個內含子。啟動子位于AUG上游2.3kb處,全長1 758bp,含有可編碼543個氨基酸多肽的開放閱讀框,相對分子質量為61 192,與從血小板中純化的蛋白質分子質量相近。N末端有親水側鏈,17和35區有降解位點,110-170處有親水基團,另外有6個N末端糖基位點。SDS-PAGE分析[5]證實純化的HPA活性酶是由50kU亞基和8kU亞基非共價連接而成的異二聚體;有研究[6]證實,HPA前體酶必須經過蛋白酶解加工過程才可獲得二聚體活性。
HPA為β葡萄糖苷酸內切酶,可以切斷細胞表面和ECM中乙酰硫酸肝素鹽蛋白聚糖(heparan sulfate proteoglycans,HSPGs)上的 HS,產生如下生物學效應:1)HSPGs水解,使ECM和GBM穩定結構破壞、細胞間質屏障功能降低;2)釋放結合在HS上的bFGF,通過促進細胞分裂、趨化、微血管形成、膠原纖維降解等多方面作用,加快創面愈合及促進腫瘤的生長和轉移,恢復凋亡細胞活力;3)釋放結合在乙酰肝素上的尿激酶型纖溶酶原激活物(uPA)和組織纖溶酶原激活物(tPA),溶解基質網狀結構;4)uPA和tPA還可通過活化表皮生長因子(epidermal growth factor,ECF),激活ECM中的蛋白質酶聯反應,使膜的功能降低,屏障功能減退;5)誘發T細胞介導的遲發性超敏反應和自身免疫反應;6)激活酯酶增強脂質代謝。該酶廣泛存在于細胞膜和ECM中,并保持穩定水平,以調節乙酰肝素生成和降解平衡,維持機體組織細胞正常的增殖、分化、黏附和遷移。
HPA的活性作用受神經生長因子(NGF)、乙酰肝素相關蛋白和富含組氨酸蛋白肝素類似物的影響。D.Marchetti等[7]在研究黑素瘤的神經營養調節、侵襲過程的實驗中發現,NGF和神經營養因子23(NT23)能夠提高HPA的活性,因為它們能夠與神經營養因子受體p75NTR結合。然而不能與神經營養因子受體p75NTR結合的NGF突變體和非神經生長因子不能提高黑色素瘤細胞的侵襲力。另外還檢測了在合成的HSPGs存在情況下RL95細胞HPA的活性,證實乙酰肝素鹽相關蛋白和HPA對HS特異性識別有共同的機制,它們依賴HS的活性可能相互調節。
腎小球濾過屏障是腎小球的重要結構,由內皮細胞、GBM、足細胞及其裂孔隔膜三層結構所構成,濾過屏障的完整性在阻止蛋白質漏出中起關鍵作用。HSPGs是一類大分子蛋白聚糖類化合物,由核心蛋白、HS側鏈、葡胺聚糖側鏈共價相連,是GBM的重要組成成分,HS側鏈上硫酸根和羧基對GBM陰離子電荷起重要作用。HS一方面富含豐富的負電荷,可限制帶負電的血漿白蛋白通過,另一方面可與GBM中的膠原和層粘連蛋白相互作用維持GBM分子結構的完整性。
一般認為,HPA是哺乳動物中唯一可以選擇性降解HS側鏈的糖苷內切酶,在脾臟、淋巴結等免疫組織中均可檢測到,而在其他正常組織中,如腎臟、心臟等不表達或低表達。M.J.van den Hoven等[8]報道,HPA在人腎小球毛細血管內皮細胞表達極少,其中在皮質髓質的小管上皮細胞的表達相對較高。同時V.Levidiotis等[9]近來也報道HPA在正常大鼠腎臟的腎小球不表達,在小管上皮細胞呈低表達。但是病理狀態下腎臟HPA的表達增高(主要是腎小球HPA的表達增加),從側面證明了機體內正常水平HPA含量對于維持腎小球正常生理功能的重要性。
HPA通過裂解HS側鏈,破壞HSPGs完整性可導致GBM選擇通透性改變及腎小球上皮細胞和內皮細胞錨連位點的喪失。此外,HPA不僅能夠降解HS側鏈,還使與HS結合的一系列生長因子釋放出來,產生相應的繼發反應可能參與了在各種蛋白尿性腎小球疾病(糖尿病性腎病[10-11]、動物模型的膜性腎病[12]、藥物所致腎病[9,13]、抗基底膜抗體疾病[14]、兒童激素敏感性腎病綜合征[15]、局灶節段性腎小球硬化性腎病、IgA腎病、微小病變性腎病[16]、淀粉樣變性病[17])的病理生理過程。
但存在爭議的是,最近有一部分研究顯示HPA可能與腎小球性蛋白尿的發生發展并不存在明確的關聯。T.J.Wijnhoven等[18]研究表明,不論伴有或不伴有蛋白尿的成年人和兒童腎臟病患者的腎臟HS主鏈表達沒有異常。J.van den Bom等[19]研究表明,尿白蛋白排泄率增加可能與腎小球HS的表達和結構的改變沒有明確的關聯。更有研究[20]提出新的觀點,認為HS保持GBM處于一個“開放狀態”,促進蛋白通過腎小球毛細血管壁。研究人員給小鼠靜脈應用神經氨酸苷酶(可水解GBM神經氨酸)后導致小鼠產生白蛋白尿,再加用肝素酶Ⅲ后,電鏡下發現HS消失,同時尿中蛋白減少。
我國DN是導致終末期腎病的第二位原因。DN導致蛋白尿形成的機制有:腎小球內毛細血管跨膜壓力過高;腎小球濾過屏障功能障礙,包括濾孔改變和電荷改變;腎小球上皮細胞代謝障礙等。近年來,人們對DN分子發病機制的認識不斷深入,血流動力學紊亂/內皮細胞受損固然是DN蛋白尿的始發因素,但內皮細胞之間的窗孔較大,在正常情況下即能讓白蛋白自由通過,GBM則成為真正防止蛋白質漏出的第一道屏障。
近年來有許多的證據表明,HPA參與了DN的發生發展。J.B.Maxhimer等[11]研究表明,在DN的病理狀態下,可能由于內環境中高水平葡萄糖含量的影響可誘導HPA的表達增加和基底膜上HS的表達減少。在體外高糖環境中培養腎臟上皮細胞發現HPA mRNA的表達上調,HPA抑制劑能夠保護細胞表面HS的表達。又有進一步的研究[10,21]觀察到,在臨床蛋白尿和微量白蛋白尿的糖尿病患者中HPA的活性是增加的,相對正常人的尿液中未能檢測到HPA的活性。唐琳等[22]進行的研究表明,DN患者腎組織中HPA表達升高,并且與尿蛋白量呈正相關,提示HPA可能參與了DN蛋白尿的發生。
有研究[23]測定證實糖尿病患者血液、尿液中HPA的水平是增高的。DN患者比不并存糖尿病并發癥者血液、尿液中HPA水平增高更加明顯,DH患者中的血HPA水平的增高,會進一步導致整個機體中HPA水平的升高,從而影響到其他的器官、組織和細胞。而接受腎移植后的DN患者尿液中HPA的水平降低,說明了HPA可能主要來源于糖尿病相關的腎功能衰竭。事實上,免疫組織化學研究分析表明,HPA表達于腎小管上皮細胞,在正常腎臟的腎小球中不表達;但是在DN的腎小球和腎小管上皮細胞其表達上調[11]。值得注意的是,在糖尿病腎移植患者,除了糖尿病相關的藥物,還需要應用的免疫抑制藥物可能會影響乙酰肝素酶的分泌。
DN是糖尿病的重要并發癥,是一種蛋白尿性腎小球疾病,HPA可通過水解腎小球GBM的重要組成成分HSPGs,導致GBM電荷屏障破壞而在蛋白尿的發生、發展中起到一定作用。多項研究證明,DN患者機體中HPA水平的變化參與了DN的病理生理過程。能否通過檢測HPA早期診斷DN,及通過抑制HPA的表達是否有助于防治DN的發生發展有待于進一步的研究。
[1] H??k M,Wasteson A,Oldberg A.A heparan sulfate-degrading endoglycosidase from rat liver tissue[J].Biochem Biophys Res Commun,1975,67(4):1422-1428.
[2] Freeman C,Parish C R.A rapid quantitative assay for the detection of mammalian heparanase activity[J].Biochem J,1997,32:229-237.
[3] Vlodavsky I,Friedmann Y,Elkin M,et al.Mammalian heparanasc:gene cloning,expression and function in tumor progression and metastasis[J].Nat Med,1999,5(7):793-802.
[4] Hulet M D,Freeman C,Hamdori B J,et al.Cloning of mammalian heparanase,an important enzyme in tumor invasion and metastasis[J].Nat Med,1999,5(7):803-809.
[5] Toyoshima M,Nakajima M.Human heparanase[J].J Biol Chem,1999,274(34):2413-2416.
[6] Levy Adam F,Miao H Q,Heinrikson R L,et al.Heterodimer formation is essential for heparanase enzymatic activity[J].Biochem Biophys Res Commun,2003,308(4):885-891.
[7] Marchetti D,Reiland J,Erwin B,et al,Inhibition of heparanase activity and heparanase-induced angiogenesis by suramin analogues[J].Int J Cancer,2003,104(2):167-174.
[8] van den Hoven M J,Rops A L,Bakker M A,et al.Increased expression of heparanase in overt diabetic nephropathy[J].Kidney Int,2006,70(12):2100-2108.
[9] Levidiotis V,Kanellis J,lerino F L,et al.Increased expression of heparanase in puromycin aminonucleoside nephrosis[J].Kidney Int,2001,60(4):1287-1296.
[10] Katz A,Van Dijk D J,Aingorn H,et al.Involvement of human heparanase in the pathogenesis of diabetic nephropathy[J].Isr Med Assoc J,2002,4(11):996-1002.
[11] Maxhimer J B,Somenek M,Rao G,et al.Heparanase-1gene expression and regulation by high glucose in renal epithelial cells:apotential role in the pathogenesis of proteinuria in diabetic patients[J].Diabetes,2005,54(7):2172-2178.
[12] Levidiotis V,Freeman C,Tikellis C,et al.Heparanase is involved in the pathogenesis of proteinuria as a result of glomerulonephritis[J].J Am Soc Nephrol,2004,15(1):68-78.
[13] Kramer A,van den Hoven M J,Rops A L,et al.Induction of glomerular heparanase expression in rats with adriamycinnephropathy is regulated by reactive oxygen species and therenin-angiotensin system[J].J Am Soc Nephrol,2006,17(9):2513-2520.
[14] Levidiotis V,Freeman C,Tikellis C,et al.Heparanase inhibition reduces proteinuria in a model of accelerated antiglomerular basement membrane antibody disease[J].Nephrology,2005,10(2):167-173.
[15] Holt R C,Webb N J,Ralph S,et al.Heparanase activity is dysregulated in children with steroid-sensitive nephrotic syndrome[J].Kidney Int,2005,67(1):122-129.
[16] van den Hoven M J,Rops A L,Vlodavsky I,et al.Heparanase in glomerular diseases[J].Kidney Int,2007,72(5):543-548.
[17] Li J P,Galvis M L,Gong F,et al.In vivo fragmentation of heparan sulfate by heparanase over expression renders mice resistant to amyloid protein a amyloidosis[J].Proc Natl Acad Sci USA,2005,102(18):6473-6477.
[18] Wijnhoven T J,Geelen J M,Bakker M,et al.Adult and paediatfic patients with minimal change nephrotic syndrome show no major alterations in glomerular expression of sulphated heparan sulphate domains[J].Nephrology Dialysis Transplantation,2007,22(10):2886-2893.
[19] van den Bom J,Pisa B,Bakker M A,et al.No change in glomerular heparan sulfate structure in early human and experimental diabetic nephropathy[J].J Biol Chem,2006,281(40):29606-29613.
[20] Wijnhoven T J,Lensen J F,Wisanans R G,et al.In vivo degradation of heparan sulfates in the glomerular basement membrane does not result in proteinuria[J].J Am Soc Nephrol,2007,18(1):823-832.
[21] Shafat I,Zcharia E,Nisman B,et al.An ELISA method for the detection and quantification of human heparanase[J].Biochem Biophys Res Commun,2006,341(4):958-963.
[22] 唐琳,劉章鎖,竇艷娜,等.乙酰肝素酶在糖尿病腎病患者腎組織的表達及臨床意義[J].中華腎臟病雜志,2008,24(11):845-846.
[23] Shafat I,Ilan N,Zoabi S,et al.Heparanase levels are elevated in the urine and plasma of type 2diabetes patients and associate with blood glucose levels[J].PLoS One,2011,6(2):e17312.