黃 成,馬陶陶,李 浩,李政通,章勝朋,鄧子煜,李 俊
(1.安徽醫科大學藥學院,安徽天然藥物活性研究省級重點實驗室,國家中醫藥管理局中醫藥三級實驗室“中藥藥理實驗室”,安徽合肥 230032;2.安徽醫科大學第二附屬醫院,安徽合肥 230601)
肝纖維化是肝臟對于各種慢性損傷的修復反應,以細胞外基質(extracellular matrix,ECM)在肝臟內大量沉積為病理特征。瘦素(leptin)是肥胖基因編碼的肽類激素,具有重要的生理作用。研究顯示,瘦素參與肝纖維化的形成,瘦素致纖維化的機制與轉化生長因子-β1(transforming growth factor-β1,TGF-β1)密切相關[1-2]。豹皮樟總黃酮(total flavonoids of Litsea coreana Levl,TFLC)是從藥食同源植物豹皮樟提取的有效部位。前期研究表明,TFLC具有良好的抗炎和免疫調節作用,對酒精性脂肪性肝炎、非酒精性脂肪性肝炎均具有較好的防治作用[3-4],對肝纖維化大鼠具有治療作用[5]。本實驗將在前期研究的基礎上,進一步研究TFLC對CCl4誘導肝纖維化大鼠的預防作用,并深入探討TFLC對瘦素、瘦素受體(leptin receptor,Ob-Rb)及TGF-β1/Smads通路蛋白表達的影響,為TFLC防治肝纖維化提供實驗和理論依據。
1.1 藥品與試劑 豹皮樟總黃酮,由本院天然藥物化學室研制,總黃酮含量>70%;秋水仙堿購于版納藥業有限公司,臨用前均以0.5%羧甲基纖維素鈉溶液配成相應濃度的混懸液。CCl4,分析純,購于汕頭西隴化工廠,臨用前用花生油1∶1稀釋。谷丙轉氨酶(alanine transaminase,ALT)、谷草轉氨酶(aspartate aminotransferase, AST)、 羥 脯 氨 酸(hydroxyproline,Hyp)測定試劑盒購于南京建成生物科技公司。透明質酸(hyaluronic acid,HA)、層粘連蛋白(laminin,LN)、Ⅲ型前膠原氨端肽(procollagenⅢN-terminal peptide,PⅢNP)、Ⅳ型膠原(procollagenase IV,CⅣ)放免試劑盒購于北京北方生物技術研究所。Ⅰ型膠原(collagenⅠ)、TGF-β1、leptin ELISA試劑盒購于上海森雄科技實業有限公司。TRIzol Reagent購于Invitrogen公司。Reverse Transcription System逆轉錄試劑盒與PCR試劑盒購于Fermentas公司。Ob-Rb、TGFβ1Ⅰ型受體(TGFβR1)、Smad3、β-actin引物序列由上海生工生物工程技術服務有限公司合成。小鼠抗Ob-Rb、TGFβR1、Smad3抗體購于美國Santa Cruz公司;辣根過氧化物酶標記二抗購于北京中杉公司;ECL發光試劑盒購于Pierce公司。
1.2 實驗動物 ♂SD大鼠,體質量200~220 g,由安徽醫科大學實驗動物中心提供(動物合格證號:皖醫實動準字第01號)。動物自由進食、飲水,1周后使用。
2.1 動物分組與處理 大鼠正常喂養1周后,隨機分為正常組、模型組、給藥組(低劑量組100 mg· kg-1、中劑量組200 mg·kg-1、高劑量組400 mg· kg-1),每組10只。除正常組外,其余各組每周二、周五皮下注射50%CCl4花生油溶液(1 ml·kg-1),連續12周;正常組皮下注射等量的花生油溶液。給藥組于造模第1周起灌胃給予TFLC,每天1次,直至造模結束;正常組和模型組灌以等量的生理鹽水。第12周末,大鼠禁食12 h,2%戊巴比妥鈉(30 mg· kg-1)麻醉,腹主動脈采血,常規制備血清;留取肝臟組織標本,檢測相關指標。
2.2 血清學指標檢測 大鼠取血后室溫靜置1 h,3 000 r·min-1離心15 min,分離血清。檢測血清中ALT、AST、HA、LN、PⅢNP、CⅣ及Ⅰ型膠原、瘦素、TGF-β1。
2.3 組織學指標檢測 肝組織石蠟切片Masson染色觀察形態學改變,制備肝勻漿,檢測肝組織Hyp含量。
2.4 RT-PCR分析Ob-Rb、TGF-βR1、Smad3的mRNA水平 按TRIzol試劑盒說明書,提取肝臟組織總RNA,按RT-PCR試劑盒說明書,逆轉錄合成cDNA。引物序列見Tab 1。以β-actin為內參照。PCR反應產物置1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測。凝膠成像系統進行密度掃描,以各擴增產物對β-actin光密度值的比值表示目的基因的相對量。
2.5 Western blot檢測肝組織中 Ob-Rb、TGF-βR1、Smad3蛋白水平 取大鼠肝組織100 mg,加入1 ml RIPA組織裂解液(每ml裂解液中加10 μl PMSF),冰上進行組織勻漿,12 000 r·min-1,4℃,離心10 min,取上清,BCA法測定蛋白濃度。每孔加樣量為20 μg蛋白(濃縮膠電壓80 V,分離膠100 V)。電泳結束后由半干轉儀器將蛋白轉移到PVDF膜上,電壓20 V,時間15 min。膜于室溫下以含50 g ·L-1脫脂奶粉的TBST緩沖液封閉2 h,漂洗后加入一抗(Ob-Rb、TGF-βR1、Smad3),4℃過夜。再分別加入與一抗相匹配的二抗,室溫放置1 h。ECL發光試劑盒顯影,以β-actin為內參,分析條帶吸光值。
2.6 統計分析 采用SPSS 13.0進行單因素方差分析及t檢驗處理,等級資料采用非參數秩和檢驗,結果以±s表示。
3.1 TFLC對 CCl4誘導的肝纖維化大鼠血清ALT、AST、HA、LN、PⅢNP、CⅣ、Ⅰ型膠原及肝組織Hyp的影響 模型組血清ALT、AST水平與正常組比較明顯增加(P<0.01),TFLC(200、400 mg· kg-1)明顯降低模型大鼠血清ALT、AST水平(P<0.05,P<0.01),表明TFLC具有肝臟保護作用(Fig 1a);模型組血清肝纖維化指標HA、LN、PⅢNP、CⅣ、CollagenⅠ及肝組織中Hyp與正常組比較明顯增加(P<0.01),TFLC(200、400 mg·kg-1)明顯降低模型大鼠血清HA、LN、PⅢNP、CⅣ、CollagenⅠ及肝組織Hyp水平(P<0.05,P<0.01),見Fig 1b、c、d、e;以上實驗結果表明,TFLC對肝損傷及肝纖維化大鼠具有預防作用。
3.2 TFLC對CCl4誘導的肝纖維化大鼠病理形態學影響 Masson染色結果顯示,正常組肝組織結構完整,肝細胞排列整齊;模型組肝組織有大量膠原纖維沉積,纖維間隔粗大,形成假小葉;TFLC(200、400 mg·kg-1)明顯減輕纖維沉積,纖維間隔變窄,表明TFLC可明顯降低肝纖維化程度(Fig 2)。

Tab 1 Sequences of the primers used in the PCR measurements
3.3 TFLC對 CCl4誘導的肝纖維化大鼠血清Leptin、TGF-β1的影響 模型組瘦素和TGF-β1含量明顯增加(P<0.01),TFLC(200、400 mg·kg-1)明顯降低模型大鼠血清瘦素和TGF-β1的含量(P< 0.05,P<0.01),見Fig 3a、b。

Fig 1 Effects of total flavonoids of Litsea Coreana level on serum alanine transaminase(ALT),aspartate aminotransferase(AST),hyaluronic acid(HA),laminin,procollagenⅢN-terminal peptide(PⅢNP) and procollagenase IV(CIV),hydroxyproline,Collagen Ι and liver Hyp contents in liver fibrosis rats.Each group consists of 10 rats(ˉx± s)

Fig 2 Photomicrographs of liver sections stained with Masson's trichrome(×200)
3.4 TFLC對CCl4誘導的模型大鼠Ob-Rb、TGF-βR1、Smad3 mRNA與蛋白表達的影響 與正常組相比,模型組肝組織中Ob-Rb、TGF-βR1、Smad3 mR-NA及蛋白表達均明顯增高(P<0.01),TFLC(200、400 mg·kg-1)可明顯降低上述各項指標 (P<0.05,P<0.01),見Fig 4。表明TFLC預防肝纖維化機制可能與降低Ob-Rb、TGF-βR1、Smad3表達有關。

Fig 3 Effects of total flavonoids of Litsea Coreana level on serum Leptin and TGF-β1 level in liver fibrosis rats.Each group consists of 10 rats(±s)

Fig 4 Effects of total flavonoids of Litsea Coreana level on Ob-Rb,TGF-βR1,Smad3 mRNA and protein level in liver fibrosis rats.mRNA and protein are corrected by β-actin(±s)
肝纖維化以ECM的過度沉積為特征。膠原蛋白、蛋白多糖、非膠原性糖蛋白是構成ECM的3大類物質[6]。HA是構成ECM中蛋白多糖的主要成分,LN為一種重要的糖蛋白,PⅢNP與肝纖維化的程度呈定量的明顯相關關系,CⅣ可反映肝細胞損傷、纖維化程度;Hyp為膠原蛋白特有的氨基酸,在肝組織其含量可反映膠原增生與纖維化程度,Ⅰ型膠原是構成膠原蛋白的重要成分[7-8],以上指標聯合檢測對肝纖維化具有重要診斷價值。本研究中,CCl4誘導肝纖維化大鼠血清HA、LN、PⅢNP、CⅣ、Ⅰ型膠原及肝組織Hyp明顯升高,TFLC(200、400 g ·L-1)可明顯降低血清中升高的HA、LN、PⅢNP、CⅣ、Ⅰ型膠原及肝組織中Hyp水平;病理形態學檢測發現,TFLC(200、400 mg·kg-1)明顯減輕纖維沉積,纖維間隔變窄;以上實驗結果表明,TFLC能夠有效預防CCl4誘導的大鼠肝纖維化。
研究證實:活化的肝星狀細胞(hepatic stellate cell,HSC)是肝纖維化ECM的主要來源細胞。HSC的活化、增殖是肝纖維化的關鍵事件,這一復雜的病分子網絡共同調控的結果,TGF-β1是其必需的調節因子[9]。在TGF-β1細胞內信號傳導通路中,Smad蛋白為關鍵的信號傳導分子。研究顯示:動物肝纖維化往往伴隨血清及組織TGF-β1增加,HSC數量進行性增多,Smad3表達明顯增高。在纖維化形成過程中,瘦素可上調TGF-β1。瘦素具有細胞因子特性,與細胞表面的瘦素受體結合發揮生物學作用[10]。Honda等[11]在研究瘦素缺陷的小鼠(ob/ ob)和天然瘦素受體缺陷大鼠(fa/fa)發現,肝纖維化明顯被抑制,肝臟α1(Ι)前膠原mRNA表達明顯降低,而且肝內TGF-β1和HSC活化也被抑制;如果補充瘦素至生理水平,ob/ob小鼠可出現明顯的肝纖維化,并且肝內TGF-β1水平、α1(Ι)前膠原mRNA水平也明顯提高;Leclercq等[12]的研究也得出同樣的結果。提示瘦素可上調TGF-β1水平增強肝纖維化的形成[13]。本實驗發現,在CCl4誘導的大鼠肝纖維化模型中,外周血瘦素和TGF-β1含量增高;肝組織中Ob-Rb、TGF-βR1、Smad3 mRNA及蛋白表達增強;而TFLC對模型大鼠外周血瘦素、TGF-β1含量及組織中TGF-βR1、Smad3、瘦素受體的表達有明顯的降低作用。以上結果表明,TFLC預防肝纖維化的作用機制可能與下調瘦素及其受體,抑制TGF-β1/Smad通路有關。
[1] 李 浩,李 俊,黃 成,等.瘦素及轉化生長因子-β1與四氯化碳誘導大鼠肝纖維化模型逆轉恢復的相關性研究[J].中國藥理學通報,2011,27(4):473-7.
[1] Li H,Li J,Huang C,et al.Correlative research between leptin and TGF-β1 and the recovery on CCI4induced hepatic fibrosis in rats[J].Chin Pharmacol Bull,2011,27(4):473-7.
[2] 曹 琦,李 俊.瘦素在肝臟疾病中的作用和分子機制[J].中國藥理學通報,2004,20(9):972-6.
[2] Cao Q,Li J.Role of leptin in the pathogenesis of liver disease and molecular m echanism of leptin's effects[J].Chin Pharmacol Bull,2004,20(9):972-6.
[3] Wang J Q,Li J,Zou Y H,et al.Preventive effects of total flavonoids of Litsea coreana leve on hepatic steatosis in rats fed with high fat diet[J].J Ethnopharmacol,2009,121(1):54-60.
[4] 王媛媛,李 俊,曹 琦,等.豹皮樟總黃酮對大鼠酒精性脂肪性肝炎的防治作用及部分機制[J].安徽醫科大學學報,2007,42(2):179-82.
[4] Wang Y Y,Li J,Cao Q,et al.The protective and therapeutic efects of total flavonoids of Litsea coreana level on alcoholic steatohepatitis and its mechamsms[J].Acta Univ Med Anhui,2007,42 (2):179-82.
[5] 朱鵬里,李 俊,張 磊,等.豹皮樟總黃酮抗肝纖維化作用及對肝組織中TGF-β1、CTGF mRNA表達的影響[J].安徽醫科大學學報,2009,44(2):232-6.
[5] Zhu P L,Li J,Zhang L,et al.Effect of total falvonoids of Litsea coreana level on hepatic fibrosis and expression of TGF-β1,CTGF mRNA in liver[J].Acta Univ Med Anhui,2009,44(2):232-6.
[6] 黃 艷,黃 成,李 俊.肝纖維化病程中Kupffer細胞分泌的細胞因子對肝星狀細胞活化增殖、凋亡的調控[J].中國藥理學通報,2010,26(1):9-13.
[6] Huang Y,Huang C,LI J.Effect of cytokines secreted from Kupffer cell on HSC proliferation,apoptosis in hepatic fibrosis process[J].Chin Pharmacol Bull,2010,26(1):9-13.
[7] 崔東來,姚希賢.肝纖維化的血清學檢測[J].世界華人消化雜志,2000,8(6):683-4.
[7] Cui D L,Yao X X.Serodiagnosis of liver fibrosis[J].World Chin J Digestol,2000,8(6):683-4.
[8] Plebani M,Burlina A.Biochemical markers of hepatic fibrosis[J].Clin Biochem,1991,24(3):219-39.
[9] Tang L X,He R H,Yang G,et al.Asiatic acid inhibits liver fibrosis by blocking TGF-beta/Smad signaling in vivo and in vitro[J].PLoS One,2012,7(2):e31350.
[10]Leclercq I A,Farrell G C,Schriemer R,et al.Leptin is essential for the hepatic fibrogenic response to chronic liver injury[J].J Hepatol,2002,37(2):206-13.
[11]Honda H,Ikejima K,Hirose M,et al.Leptin is required for fibrogenic responses induced by thioaceta mide in the murine liver[J].Hepatology,2002,36(1):12-21.
[12]Leclercq I A,Field J,Farrell G C.Leptin-specific mechanisms for impaired liver regeneration in ob/ob mice after toxic injury[J].Gastroenterology,2003,124(5):1451-64.
[13]Bertolani C,Marra F.Role of adipocytokines in hepatic fibrosis[J].Curr Pharm Des,2010,16(17):1929-40.