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銳孔法制備原花青素微膠囊工藝研究

2012-03-20 03:33:34丁保淼袁武華
食品與機械 2012年6期
關鍵詞:影響

丁保淼 袁武華

(長江大學生命科學學院,湖北 荊州 434025)

(College of Life Science,Yangtze University,Jingzhou,Hubei 434025,China)

原花青素是自然界一類廣泛存在于植物中的水溶性天然色素,屬多酚化合物[1,2]。它是一種資源豐富、天然安全、無毒食用色素,而且還有很高的營養和藥理作用[3]。近年的研究[4,5]表明,原花青素具有抗氧化、清除自由基、抑制腫瘤、抗輻射以及美容等多種生理功能。因而,在食品、化妝品、醫藥等領域原花青素均有著巨大的應用潛力。然而原花青素對pH 值、溫度、光照、氧化劑和金屬離子等十分敏感[6],易于被氧化和破壞,這大大限制了它的使用。為保持原花青素的諸多優點,有必要采取措施,將原花青素保護起來[7],增加它的穩定性,以保持和提高它的生理功能。

微膠囊是一種以聚合物為壁殼,將固體、液體或氣體物質包埋、封存在內的囊泡[8]。微膠囊的壁材形成的膜可以將內外環境隔開,能夠大大地增加芯材對外界環境如光、熱、氧氣、pH 等的穩定性,延長芯材的釋放時間,增加芯材的有效性[9]。近年來,已被廣泛地應用于藥品、食品、印染等領域[10-13]。

微膠囊制備方法有多種;其中,銳孔法微膠囊制備技術因其設備簡單、投資少、低溫條件下操作,且能制得粒徑均一的微膠囊而受到重視。其原理是壁材液通過銳孔滴入凝固液,凝固形成微膠囊。本試驗擬采用銳孔法,以海藻酸鈉為壁材,CaCl2為凝固劑制備原花青素微膠囊,優化原花青素微膠囊的制備工藝,得到最佳制備工藝條件,為其工業化生產和實際應用提供一定的理論指導。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

葡萄籽原花青素:天津尖峰天然產物有限公司;

海藻酸鈉(≥98.0%)、檸檬酸(≥99.0%)、磷酸氫二鈉(≥99.0%)、CaCl2(≥96.0%)、無水乙醇(≥99.7%)、正丁醇(≥99.5%)、鹽酸(36.0%~38.0%)等:均為分析純,國藥集團化學試劑有限公司。

1.2 試驗儀器

紫外可見分光光度計:UV-1100,上海美譜達儀器有限公司;

數顯恒溫水浴鍋:HH-2,常州諾基儀器有限公司;

恒溫磁力攪拌器:85-2,江蘇省金壇市環宇科學儀器廠;

真空干燥箱:SDZF-6020,南通金石實驗儀器有限公司;

水循環真空泵:SHB-3,武漢常儀實業有限公司;

視頻變焦顯微鏡:DZ3型,日本Union公司;

抽濾設備:本實驗室自制;

注射器:1,10mL,武漢基因美生物科技有限公司。

1.3 試驗方法

1.3.1 原花青素微膠囊的制備 采用銳孔法[14]。

1.3.2 原花青素的含量測定 采用正丁醇-鹽酸法[15]。取1.0mL適當濃度樣品溶液,置于25 mL 比色管中,再加入正丁醇-濃鹽酸(V/V =95/5)試劑10.0mL,搖勻成均一體系。打開塞子放入97 ℃恒溫水浴中,3 min后塞緊塞子,加熱40 min 后,打開塞子于自來水中冷卻5 min,在550nm處測吸光度,計算原花青素含量。

1.3.3 原花青素微膠囊包埋率的測定 測定原花青素微膠囊制備時抽濾出的濾液中原花青素含量Aout。按式(1)計算原花青素微膠囊的包埋率(entrapment efficiency)。

式中:

EE—— 原花青素微膠囊的包埋率,%;

Aout—— 濾液中原花青素的含量,g;

Atotal—— 微膠囊化時所用的原花青素的總含量,g。

1.3.4 原花青素微膠囊制備單因素試驗 分別設不同水平,分析海藻酸鈉質量濃度、CaCl2質量濃度、芯壁比、針頭孔徑、針頭高度5個單因素對微膠囊化效果的影響。按1.3.1中的方法,制備原花青素微膠囊,以包埋率、成型效果、成球難易等為評價指標,在固定其它4個因素的條件下,依次考察各因素不同水平對原花青素微膠囊制備效果的影響。

1.3.5 原花青素微膠囊制備正交試驗 在單因素試驗基礎上,采用L16(45)正交試驗,設計3因素4水平試驗,通過正交試驗及極差分析來確定番茄紅素微膠囊的最佳工藝條件。

1.4 原花青素微膠囊的形態表征

選擇高倍物鏡(放大倍數為200~1 000倍),使用透射光源,將適量的原花青素微膠囊懸浮液滴于載玻片上,蓋上蓋玻片,放在視頻變焦顯微鏡(VZM)的載物臺上進行觀察,并打開計算機中的Pinnacle Studio 8.0圖像采集軟件。調整視頻變焦顯微鏡的放大倍數和焦距,至樣品圖像清晰,保存圖像。

2 結果與分析

2.1 單因素結果

2.1.1 海藻酸鹽濃度對原花青素微膠囊化的影響 海藻酸鈉作為壁材不僅影響微膠囊的包埋率,還影響微膠囊的機械強度、成球難易及微膠囊的形狀。在CaCl2質量濃度為1%、芯材濃度為2%、針頭孔徑為0.7mm、針頭高度為5cm 條件下,海藻酸鈉濃度對原花青素微膠囊的影響見表1。

由表1可知,隨著海藻酸鈉濃度的升高,微囊成型越來越難;濃度升高到一定程度時,微膠囊成型效果變差;微膠囊的包埋率也呈先升后降趨勢。當海藻酸銨濃度為3%時,微膠囊的包埋率最高,成型也很好。這可能是因為海藻酸鈉溶液具有很大粘性,且在低濃度時,其黏度隨濃度的增加而增大[16],因而也越不容易通過注射器成型,影響了包埋率。高濃度的海藻酸鈉遇到凝固液CaCl2會更快地凝固,于是微膠囊顯得硬質[14]。

表1 海藻酸鈉濃度對原花青素微膠囊化效果的影響Table 1 Effect of sodium alginate concentration on proanthocyanidins microcapsules

2.1.2 CaCl2濃度對原花青素微膠囊化的影響 在微膠囊制備過程中,CaCl2溶液作為凝固浴,其濃度直接影響著微膠囊壁的形成速度和質量。在海藻酸鈉質量濃度為3%、芯材濃度為2%、針頭孔徑為0.7mm、針頭高度為5cm 條件下,CaCl2濃度對原花青素微膠囊的影響見表2。

表2 CaCl2濃度對原花青素微膠囊化效果的影響Table 2 Effect of cacium chloride concentration on proanthocyanidins microcapsules

由表2 可知,微膠囊成型的效果很大程度上取決于CaCl2溶液的濃度。CaCl2濃度過低,微膠囊成型效果不好,微膠囊干燥后變形現象嚴重;隨著CaCl2溶液濃度的提高,微膠囊迅速固化、成型;當CaCl2溶液濃度過高時,制得的原花青素微膠囊表面形成了致密的海藻酸鈣層,不利于微膠囊的干燥[17]。CaCl2濃度在1.0%和2.5%時包埋率變化很小,之后隨著CaCl2濃度的增加,包埋率又逐漸下降。故確定CaCl2的最佳濃度為2.5%。

2.1.3 芯壁比對原花青素微膠囊化的影響 微膠囊化過程中,若芯壁比過小,則壁材含量過多,微膠囊化產率偏低;若芯壁比過大,則壁材含量過少,無法將芯材完全包埋,致使原花青素的微膠囊化產率和效率都降低。在海藻酸鈉質量濃度為3%、CaCl2濃度為2.5%、針頭孔徑為0.7 mm、針頭高度為5cm 條件下,芯壁比對原花青素微膠囊包埋效果的影響見表3。

表3 芯壁比對微膠囊化效果的影響Table 3 Effect of core-to-wall ratio on proanthocyanidins microcapsules

由表3可知,當芯壁比為1∶1 時,微膠囊成型效果不好,且質地松軟;當芯壁比大于1∶2.5時,包埋率趨于下降,這可能是由于壁材含量過高,濃度過大,不利于壁材的固化,導致芯材不能有效地被包埋在微膠囊內。故確定芯壁比的最佳比例為1∶2.5。

2.1.4 針頭孔徑對原花青素微膠囊化的影響 針頭孔徑直接影響著擠出液滴的體積。在海藻酸鈉質量濃度為3%、CaCl2質量濃度為2.5%、芯壁比為1∶2.5、針頭高度為5cm條件下,針頭孔徑對原花青素微膠囊化影響見表4。

表4 針頭孔徑對微膠囊化效果的影響Table 4 Effect of needle size on proanthocyanidins microcapsules

由表4可知,微囊粒度隨著注射器針頭孔徑變小而越來越小,因此微囊總的表面積變大,從而使得微囊能夠包覆更多的原花青素,所以微膠囊的包埋率隨之增大。當針頭孔徑小于0.45mm 時,由于海藻酸鈉溶液具有一定的黏度,因此溶液推出困難,不利于造粒的進行,且此時對制備的微膠囊形態影響不大。因此,選擇0.45mm 為最優針頭孔徑。

2.1.5 針頭下滴高度對原花青素微膠囊化的影響 針頭下滴高度影響著擠出液滴與凝固浴的接觸形式,最終會影響微膠囊的成型效果。在海藻酸鈉質量濃度為3%、CaCl2質量濃度為2.5%、芯壁比為1∶2.5、針頭孔徑為0.45mm 條件下,針頭下滴高度對原花青素微膠囊化效果的影響見表5。

表5 下滴高度對微膠囊化效果的影響Table 5 Effect of drop height on proanthocyanidins microcapsules

由表5可知,下滴高度過低時,液滴與凝固浴CaCl2溶液太接近,微球不易分散,影響包封率;下滴高度過高時,液滴下降過程形態發生變化,微球會變得扁平,包封率會下降。綜合包埋率和微囊形態兩方面,選擇8cm 為最優下滴高度。

2.2 正交試驗結果分析

根據單因素試驗結果,確定針頭孔徑為0.45 mm,針頭高度為8cm,采用正交試驗對原花青素微膠囊工藝進一步優化,考察海藻酸鈉濃度、氯化鈣濃度,以及芯壁比對微膠囊制備的影響。正交設計試驗因素水平見表6和結果見表7。

表6 正交試驗因素水平表Table 6 Orthogonal experiment factors and levels

由表7可知,當以微膠囊包埋率為指標時,綜合評價極差大小結果顯示各因素作用大小順序為海藻酸鈉濃度>芯壁比>CaCl2濃度;銳孔法制備原花青素微膠囊的最佳工藝條件為A3B3C3,即:海藻酸鈉濃度3%,CaCl2濃度3%,芯壁比1∶4(芯材濃度為1.5%)。在此條件下進行3次平行驗證實驗,所得原花青素微膠囊的平均包埋率為77.83%。正交試驗結果與單因素試驗結果存在差別,這可能是由于各因素之間具有交互作用引起的。

2.3 原花青素微膠囊視頻變焦顯微鏡圖

視頻變焦顯微鏡具有超高連續可調的放大倍率并可連續變焦。采用同軸照明的方式,用它觀察樣品,得到原花青素微膠囊的形態圖見圖1。

由圖1可知,原花青素微膠囊具有良好的形態分布。

3 結論

采用銳孔法制備出了原花青素微膠囊,優化了制備工藝,單因素試驗表明針頭孔徑和下滴高度對微膠囊制備影響較小,最優選擇分別為0.45mm 和8cm;正交試驗極差分析表明海藻酸鈉濃度、CaCl2濃度、芯壁比對微膠囊制備效果的影響為海藻酸鈉濃度>芯壁比>CaCl2濃度,最優選擇分別為3%、1∶4和3%;此時原花青素的包埋率為77.83%,與文獻[18]中采用噴霧干燥方法所得最優結果相似。視頻變焦顯微鏡圖顯示,該法制備的原花青素微膠囊具有良好的形態分布。但微膠囊對芯材原花青素的保護效果還有待于進一步研究,下一階段的研究方向將是探討光、熱、氧氣、pH 等環境因素對微膠囊化的原花青素穩定性的影響。

表7 原花青素微膠囊化工藝優化正交設計和結果Table 7 Orthogonal experiment results of proanthocyanidins microencapsulation

圖1 原花青素微膠囊視頻變焦顯微鏡圖(×200)Figure 1 Video zoom microscope photo of proanthocyanidin microcapsules

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