王亞洲,呂建偉(1.廣西醫科大學第四附屬醫院,廣西 柳州 545005;.廣西柳州市中醫院,廣西 柳州 545001)
抗乳腺小葉增生合劑為廣西醫科大學第四附屬醫院院內制劑,處方包括白芍、丹參、甘草、當歸、柴胡、郁金、夏枯草、元胡、生牡蠣等數味中藥,具有散瘀止血、消腫止痛、活血調經等功效[1],臨床用于治療婦女乳腺小葉增生,療效明顯[2],副作用小。原質量標準中只對丹參進行定性鑒別,規定相對密度≥1.02,并無含量測定內容。為進一步提高本制劑質量標準,更好地保證臨床療效,筆者參閱有關文獻[3,4],對處方中的白芍、當歸和丹參進行了薄層色譜(TLC)鑒別,并用高效液相色譜(HPLC)法同時測定抗乳腺小葉增生合劑中芍藥苷、阿魏酸和甘草酸3種成分的含量。
LC-10ATvp HPLC儀(日本Shimadzu公司);752紫外分光光度計(南京麒麟分析儀器有限公司);AB-L電子分析天平(瑞士梅特勒-托利多公司);MP511電子pH計(上海三信儀表廠);B2500S超聲波清洗器(美國Branson公司)。
甘草、柴胡、元胡、生牡蠣藥材(柳州市百草堂中藥飲片廠,批號分別為110817、110922、110812、110825);郁金藥材(國藥控股柳州有限公司,批號:20110914);夏枯草藥材(柳州市神農飲片廠,批號:20110811);芍藥苷、丹參酮ⅡA對照品和白芍、當歸、丹參對照藥材(中國食品藥品檢定研究院,批號分別為110736-200630、110766-200518、 120905-201109、 120927-201014、 120923-200912);阿魏酸、甘草酸標準品(上海源葉生物科技有限公司,批號分別為20110406、YY20101107,含量均≥98%);抗乳腺小葉增生合劑(廣西醫科大學第四附屬醫院制劑室自制,批號:110715、110728、110810);甲醇、乙腈為色譜純,水為重蒸餾水,其他試劑均為分析純。
取本品10mL,加70%甲醇10mL,超聲(功率:120 W,頻率:40 kHz)處理30min,濾過,濾液蒸干,殘渣加乙醇2mL使溶解,作為供試品溶液;稱取白芍對照藥材粉末0.5 g,同法制成對照藥材溶液;按處方組成,取除白芍以外的其余藥材,按工藝要求制成缺白芍陰性樣品,同法制成陰性對照溶液;另取芍藥苷對照品,加甲醇制成每1mL含1mg的溶液,作為對照品溶液。照TLC法[1]試驗,吸取上述4種溶液各10μL,分別點于同一硅膠G薄層板上,以三氯甲烷-乙酸乙酯-甲醇-甲酸(40∶5∶10∶0.2)為展開劑,展開,取出,晾干,噴以5%香草醛硫酸溶液,加熱至斑點顯色清晰。結果,供試品色譜中,在與對照藥材、對照品色譜相應的位置上,顯相同顏色的斑點;陰性對照無干擾。白芍的TLC見圖1。
取本品10mL,用乙醚振搖提取3次,每次10mL,合并乙醚提取液,揮干,殘渣加無水乙醇1mL使溶解,作為供試品溶液;稱取當歸對照藥材粉末0.5 g,同法制成對照藥材溶液;按處方組成,取除當歸以外的其余藥材,按工藝要求制成缺當歸陰性樣品,同法制成陰性對照溶液;另取阿魏酸標準品,加甲醇制成每1mL含1mg的溶液,作為標準品溶液。照TLC法[1]試驗,吸取上述4種溶液各10μL,分別點于同一硅膠G薄層板上,以正己烷-乙酸乙酯(4∶1)為展開劑,展開,取出,晾干,置紫外光燈(365 nm)下檢視。結果,供試品溶液色譜中,在與對照藥材、對照品色譜相應位置上,顯相同顏色的熒光斑點;陰性對照無干擾。當歸的TLC見圖2。

圖1 白芍的TLC1~3.供試品;4.芍藥苷對照品;5.對照藥材;6.陰性對照Fig 1 TLC of Paeonia lactiflora1~3.test samples;4.paeoniflorin control;5.reference substance;6.negative control

圖2 當歸的TLC1~3.供試品;4.阿魏酸標準品;5.對照藥材;6.陰性對照Fig 2 TLC of Angelica sinensis1~3.test samples;4.ferulic acid standard;5.reference substance;6.negative control
取本品10mL,加乙醚10mL,振搖,放置1 h后取乙醚液,重復3次上述操作,合并乙醚液,濾液揮干,殘渣加乙酸乙酯1mL使溶解,作為供試品溶液;稱取丹參對照藥材粉末0.5 g,同法制成對照藥材溶液;按處方組成,取除丹參以外的其余藥材,按工藝要求制成缺丹參陰性樣品,同法制成陰性對照溶液;另取丹參酮ⅡA對照品,加乙酸乙酯制成每1mL含1mg的溶液,作為對照品溶液。照TLC法[1]試驗,吸取上述4種溶液各10μL,分別點于同一硅膠G薄層板上,以苯-乙酸乙酯(19∶1)為展開劑,展開,取出,晾干,日光下檢視。結果,供試品色譜中,在與對照藥材、對照品色譜相應位置上,顯相同顏色的熒光斑點;陰性對照無干擾。丹參的TLC見圖3。

圖3 丹參的TLC1~3.供試品;4.丹參酮ⅡA對照品;5.對照藥材;6.陰性對照Fig 3 TLC of Salvia miltiorrhiza1~3.test samples;4.tanshinoneⅡAcontrol;5.reference substance;6.negative control
色譜柱:Inertsil C8(250mm×4.6mm,5 μm);流動相:乙腈-0.1%磷酸-四氫呋喃(18∶80∶2);檢測波長:300 nm;柱溫:30℃;流速:1.0mL·min-1;進樣量:20μL。在此色譜條件下,芍藥苷、阿魏酸和甘草酸的色譜峰均能達到基線分離,其他成分對測定無干擾。芍藥苷保留時間約為10.1min,阿魏酸保留時間約為13.5min,甘草酸保留時間約為21.6min。色譜見圖4。

圖4 高效液相色譜圖A.供試品;B.陰性對照;C.混合對照品;1.芍藥苷;2.阿魏酸;3.甘草酸Fig 4 HPLC chromatogramsA.test sample;B.negative control;C.mixed control;1.paeoniflorin;2.ferulic acid;3.glycyrrhizic acid
稱取經五氧化二磷減壓干燥至恒重的芍藥苷對照品和阿魏酸、甘草酸標準品各適量,精密稱定,置于同一棕色容量瓶中,加50%甲醇制成每1mL分別含芍藥苷1038.6μg、阿魏酸86.2μg和甘草酸1265.2μg的混合對照品溶液。
精密量取抗乳腺小葉增生合劑10mL,置于100mL容量瓶中,加流動相稀釋至刻度,0.45 μm微孔濾膜濾過,即得。
按照處方組成,取除白芍、當歸和甘草以外的其余藥材,按工藝要求制成不含芍藥苷、阿魏酸和甘草酸的陰性合劑,照“3.3”項下方法制成陰性對照溶液。
取上述混合對照品溶液適量,用50%甲醇稀釋成6個濃度,即得芍藥苷濃度分別為 25.96、51.93、103.86、155.79、207.72、259.65μg·mL-1,阿魏酸濃度分別為2.15、4.31、8.62、12.93、17.24、21.55μg·mL-1,甘草酸濃度分別為31.63、63.26、126.52、189.78、253.04、316.3μg·mL-1的溶液,依次進樣,按上述色譜條件測定。再分別以各組分的檢測濃度(X)為橫坐標,峰面積積分值(Y)為縱坐標,繪制標準曲線,得芍藥苷、阿魏酸和甘草酸的回歸方程分別為Y=6037X+769(r=0.9995,n=6)、Y=171526X-11067(r=0.9998,n=6)、Y=23752X+2136(r=0.9996,n=6)。結果表明,芍藥苷、阿魏酸和甘草酸的檢測濃度分別在25.96~259.65、2.15~21.55、31.63~316.30μg·mL-1范圍內與各自峰面積積分值呈良好線性關系。
分別取上述混合對照品溶液1000、500、200μL,置于10mL容量瓶中,用甲醇定容,制備成高、中、低濃度的溶液。分別在同日內連續進樣5次,計算日內精密度;在5 d內連續進樣5次,計算日間精密度。結果,芍藥苷、阿魏酸和甘草酸日內精密度的RSD分別為1.74%、1.05%和1.58%(n均為5);日間精密度的RSD分別為2.76%、2.27%和2.62%(n均為5),表明儀器精密度良好。
取同一批(批號:110715)抗乳腺小葉增生合劑適量,按“3.3”項下方法平行制成6份供試品溶液,照上述色譜條件測定。結果,芍藥苷、阿魏酸和甘草酸的RSD分別為0.92%、1.15%和1.34%(n均為6),表明本方法重復性良好。
取已知含量的同一批(批號:110715)抗乳腺小葉增生合劑適量,共6份,分別置于容量瓶中,再加入一定量的混合對照品溶液,按“3.3”項下方法制成供試品溶液,照上述色譜條件測定,并計算加樣回收率,結果見表1。

表1 加樣回收率試驗結果(n=6)Tab 1 Results of recovery test(n=6)
取3批抗乳腺小葉增生合劑各適量,分別按“3.3”項下方法制備供試品溶液,照上述色譜條件測定,以外標法計算各組分含量,結果見表2。

表2 樣品含量測定結果(n=5)Tab 2 Results of content determination of samples(n=5)
本品共含有10味中藥,試驗選擇其中3味進行了TLC鑒別,其余藥味由于在試驗過程中發現干擾大、重復性較差等因素,故暫不納入標準。
采用HPLC法同時測定制劑中幾種組分的含量時,選擇合適的檢測波長尤為關鍵。筆者對芍藥苷、阿魏酸和甘草酸的對照品溶液分別進行全波長紫外掃描,確定芍藥苷最大吸收波長為230 nm,阿魏酸最大吸收波長為316 nm,甘草酸最大吸收波長為250 nm。在上述色譜條件下,分別于230、250、300、316、350 nm等波長處對供試品溶液進行分析,發現阿魏酸最大吸收波長316 nm附近的300 nm處所得的HPLC圖譜上各組分峰分離效果較好,雜質干擾峰亦被消除,且能較好地兼顧含量較小的阿魏酸的峰形,因此選擇300 nm作為檢測波長。
參考有關文獻[5,6],經過對不同流動相的摸索,發現乙腈-0.1%磷酸-四氫呋喃(18∶80∶2)為流動相時,3組分的出峰時間更合適,峰形好、無拖尾,且不受雜質峰干擾。在流動相中加入少量的四氫呋喃,很好的改善了峰形。但四氫呋喃容易與流動相中的溶解氧形成有紫外吸收的絡合物,此絡合物會提高背景吸收(特別是在260 nm波長以下),導致檢測靈敏度的輕微降低[7],所以試驗流動相必須預先徹底脫氣。四氫呋喃易被氧化從而可能在色譜圖中產生倒峰,故添加四氫呋喃的流動相宜現用現配。
本品中白芍、當歸、甘草等均為主要藥味,方法學研究結果證明,采用TLC法對上述3味藥材進行定性鑒別,色譜斑點清晰、專屬性強。本試驗建立的以HPLC法同時測定芍藥苷、阿魏酸和甘草酸含量的方法靈敏度高、專屬性好,為其他制劑同時測定上述3種組分提供了方法參考。相比于文獻[8]中的調pH值后再用乙醚萃取的方法,本試驗中僅需對合劑稀釋即可進行含量測定,操作簡便易行。對3批樣品分別進行分析,測定結果準確、重復性好,說明筆者建立的質量標準可用于抗乳腺小葉增生合劑的質量控制。
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