張 娟,蔣 俊,張 紅,馬龍鳳,包 洪,于 庭*
(1.沈陽市胸科醫(yī)院,遼寧 沈陽110000;2.吉林大學(xué)第二醫(yī)院,吉林 長春 130041)
近年來,隨著耐藥、耐多藥結(jié)核分枝桿菌(Mycobacterium tuberculosis,MTB)的出現(xiàn),使結(jié)核病死灰復(fù)燃,成為全球關(guān)注的公共衛(wèi)生和社會問題,也因此使得結(jié)核病新型疫苗以及新型診斷試劑的研究具有重要意義。
多年來,人們一直將結(jié)核分枝桿菌培養(yǎng)濾液蛋白(culture filtrate proteins CFP)作為結(jié)核病預(yù)防和診斷試劑的抗原成分進行研究[1,2]。經(jīng)過大量研究發(fā)現(xiàn),Ag85復(fù)合物是MTB的主要分泌性蛋白抗原,占分泌蛋白總量的30%。而MPT64蛋白,是存在于MTB早期培養(yǎng)濾液中的一種主要分泌蛋白,占總量的8%,具有超氧化物歧化酶的活性[3],并具有較強的細胞免疫活性,特異性強于純化的結(jié)核菌素蛋白衍生物(purified protein derivative of tuberculin,PPD)。
我們根據(jù)Ag85蛋白和MPT64蛋白的特點,構(gòu)建了Ag85A/MTP64核酸疫苗,通過真核表達,獲得大量純化的蛋白,并通過酶聯(lián)免疫斑點(Enzymelinked Immunospot Assay,ELISPOT)技術(shù)對研究結(jié)果進行了驗證,為進一步研究核酸疫苗在預(yù)防結(jié)核病中的作用奠定了基礎(chǔ)。
1.1 材料PCR系統(tǒng)含pfu Taq DNA聚合酶,dNTPs,buffer,MgCl2等購自上海生工公司;限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ、BamHⅠ、BioLabs T4DNA連接酶試劑盒、DNA Marker購自TaKaRa公司;PCR產(chǎn)品純化試劑盒購自O(shè)mega公司;膠回收試劑盒、質(zhì)粒小量抽提試劑盒購自上海華瞬生物有限公司;細菌基因組DNA抽提試劑盒、酵母提取物、胰化蛋白胨購自上海生工公司;瓊脂糖購自Sigma公司。
1.2 方法
1.2.1 結(jié)核桿菌基因組DNA的提取 取少量結(jié)核菌H37Rv液接種于7H9液體培養(yǎng)基中,37℃培養(yǎng)兩周。取3ml液體培養(yǎng)物12 000r·min-1離心1min,將沉淀重懸于50μl裂解液(10×PCR緩沖液5μl、45g·L-1吐溫-20 5μl、45g·L-1NP-40 5μl、20g·L-1蛋白酶 K0.5μl及水34.5μl)中,55℃水浴1h,沸水浴10min滅活蛋白酶K,12 000 r·min-1離心1min。取上清,先酚/氯仿/異戊醇抽提2次,再酚/氯仿抽提2次,預(yù)冷無水乙醇沉淀,-80℃冰凍10min。溶于50μl TE中,貯于-20℃?zhèn)溆谩?/p>
1.2.2 Ag85A、MPT-64的擴增引物由英駿公司合成,根據(jù)結(jié)核分枝桿菌H37Rv Ag85A、MPT-64基因編碼序列共設(shè)計4條引物,分別為:
P1mpt6 上 游 引 物 5′-GGAATTCCATGGTGCGCATCAAGATCTT-3′含 EcoRⅠ酶切位點和ATG起始密碼子。
P2mpt6 下 游 引 物 5′-GGA TCC CTA GGC CAG CAT CGA GTC-3′含 BamHⅠ酶切位點和TGA終止密碼子。
P3ag85a 上 游 引 物 5′-AGGATCCATGTTTTCCCGGCCGGGCTTG-3′,含BamHⅠ酶切位點和起始碼ATG。
P4ag85a下游引物 5′-GGAATTCCTATGTTCGGAGCTA GGCGCCCTGGG-3′,含 EcoRⅠ酶切位點和終止碼。
PCR反應(yīng)體系:10×buffer 5μl、dNTPs 1μl(2.5mmol·L-1)、DNA 2μl,P1、P2引物各0.5μl(50μmol·L-1)及 Taq酶0.5μl(2U),加水至50 μl。反應(yīng)條件為:95℃變性5min,然后95℃45s,60℃30s,72℃60s,共32個循環(huán),再72℃延伸10 min。擴增產(chǎn)物用0.8%瓊脂糖凝膠電泳進行鑒定。P3和P4的反應(yīng)體系及條件同上。
1.2.3 構(gòu)建和鑒定Ag85A/MPT-64重組質(zhì)粒 取雙酶切的質(zhì)粒pcDNA3.1(+)和PCR產(chǎn)物各6μl,10×T4DNA連接酶緩沖液2μl、T4DNA連接酶2 μl,加水至20μl,22℃過夜,然后轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細胞,涂布于2YT平板(含氨芐青霉素100mg/L),藍白法篩選陽性克隆。隨機挑選白色菌落,分別接種于4ml含氨芐青霉素的2YT培養(yǎng)液中,37℃振蕩培養(yǎng)過夜,堿裂解法提質(zhì)粒DNA。將質(zhì)粒DNA用BamHⅠ和EcoRI雙酶切,進行0.8%瓊脂糖凝膠電泳,觀察有無約978bp大小的Ag85A片段,約738bp大小的MPT-64片段。并對陽性克隆進行測序。
1.2.4 構(gòu)建 Ag85A/MPT-64真核表達載體 用BamHⅠ和EcoRⅠ雙酶切陽性克隆重組質(zhì)粒Ag85A/MPT-64后,進行0.8%的瓊脂糖凝膠電泳,用PCR產(chǎn)物回收試劑盒回收1 716bp大小的酶切產(chǎn)物,溶于35μl H2O中,貯于-40℃?zhèn)溆谩M瑯犹崛≌婧吮磉_載體質(zhì)粒,用BamHⅠ和EcoRⅠ雙酶切后,進行0.8%瓊脂糖凝膠電泳,用瓊脂糖膠回收試劑盒回收,35μl H2O回溶,貯于-40℃?zhèn)溆谩H‰p酶切后的質(zhì)粒和DNA各3μl,10×T4DNA連接酶緩沖液2μl,T4DNA連接酶2μl,加水至20μl,22℃過夜,然后轉(zhuǎn)化BL21感受態(tài)細胞,涂布于2YT平板(含氨芐青霉素100mg·L-1),藍白斑法篩選陽性克隆。用BamHⅠ和EcoRⅠ雙酶切鑒定陽性克隆。
1.2.5 Ag85A/MPT-64DNA 疫苗的制備及其動物免疫 大量培養(yǎng)含Ag85A/MPT-64的BL21菌株后提取質(zhì)粒,酚:氯仿:異戊醇法純化質(zhì)粒[4]。用無菌生理鹽水把其濃度稀釋為1.5g/L。為進行預(yù)處理,用8.5g/L比卡因60μl肌注8只BALB/c小鼠大腿每側(cè),3周后再各肌注Ag85A/MPT-64 60 μl。按同樣方式,分別用空白質(zhì)粒和滅菌生理鹽水各免疫8只BALB/c小鼠作為空白對照和陰性對照。
1.2.6 ELISPOT方法檢測疫苗免疫原性 免疫3周后的小鼠剪尾取血分離血清,用ELISPOT方法檢測定血清中Ag85A/MPT-64抗體的滴度。酶標板用結(jié)核分枝桿菌培養(yǎng)濾液蛋白包被,60μl/孔,4℃過夜。1%小牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)(Sigma公司)37℃封閉45min,不同稀釋度的待檢血清經(jīng)稀釋后加入,辣根過氧化物酶HRP標記的羊抗鼠IgG作為二抗,鄰苯二胺底物顯色后,在波長490nm處測吸光度值(A)。實驗組A值≥3.2為陽性(以正常鼠血清作陰性對照,吸光度值0.0以上)。
模板為結(jié)核桿菌H37Rv的基因組DNA,PCR經(jīng)32個循環(huán)后擴增出特異性條帶。將擴增產(chǎn)物雙酶切后與質(zhì)粒連接再轉(zhuǎn)化入DH5α感受態(tài)細胞。隨機挑選白色菌落提質(zhì)粒,雙酶切后,可見約978bp大小的Ag85A片段,約738bp大小的MPT-64片段,命名為Ag85A/MPT-64。雙向測序所得序列結(jié)果與報道一致[5](圖1A)。
擴大培養(yǎng)陽性克隆后提取質(zhì)粒DNA,雙酶切后回收約1 716bp大小的酶切產(chǎn)物,與用同樣酶切但經(jīng)瓊脂糖膠切膠回收的質(zhì)粒連接,并轉(zhuǎn)化BL21感受態(tài)細胞。在轉(zhuǎn)化后的平板上隨機挑選所需克隆提質(zhì)粒,經(jīng)EcoRⅠ單酶切出約1 716bp大小的片段,經(jīng)雙酶切出約978bp和738bp大小的兩個片段(圖1B)。
測定免疫后的各組小鼠血清中抗Ag85A/MPT-64抗體的水平,免疫鼠血清Ag85A/MPT-64抗體全部為陽性,生理鹽水陰性對照組和質(zhì)粒空白對照組的小鼠血清Ag85A/MPT-64抗體全部為陰性,幾何平均滴度經(jīng)ELISPOT方法檢測為1∶1 700(圖2)。如Bastos等[11]所述,通過ELISPOT可以篩選出有效的激發(fā)機體免疫球蛋白(immunoglobulin Ig)產(chǎn)生和CK產(chǎn)生的疫苗,對于疫苗的研究具有重要意義。此外,通過顯色反應(yīng),在細胞分泌可溶性蛋白的相應(yīng)位置上顯現(xiàn)清晰可辨的斑點,可直接在顯微鏡下人工計數(shù),或通過ELISPOT分析系統(tǒng)對斑點進行計數(shù),進行高通量篩選,效率遠遠高于其他檢測方法[12]。

圖1 瓊脂糖電泳檢測PCR產(chǎn)物及載體酶切位點

圖2 ELISPOT檢測DNA疫苗的顯色反應(yīng)
4,400kb的結(jié)核分枝桿菌片段含有4000多基因。它們表達的蛋白能夠引起較強的細胞和體液免疫反應(yīng),因此此類基因被作為篩選DNA疫苗的侯選基因,包括 HSP、MPT-64、Ag85、Esat-6、PstS-3等[6]。
由Ag85A、Ag85B、Ag85C三個成分組成的Ag85復(fù)合物,其相對分子質(zhì)量約為30×103-32×103,在結(jié)核桿菌和BCG的細胞壁和培養(yǎng)濾液中大量存在,Ag85的分枝菌酸轉(zhuǎn)移酶活性在結(jié)核桿菌細胞壁的合成后期具有重要作用。Ag85A、Ag85B、Ag85C三個成分具有高度的同源性,并且Ag85的含量在結(jié)核桿菌的細胞壁蛋白和分泌蛋白中較高,約占總蛋白的31%-45%[7]。Ag85/MPT-64蛋白能夠刺激機體產(chǎn)生大量的INFγ和誘導(dǎo)機體產(chǎn)生較強的T細胞增殖,同樣經(jīng)Ag85/MPT-64免疫的小鼠能夠抵抗結(jié)核桿菌的攻擊。據(jù)報道人感染結(jié)核桿菌后的血清中也可以測到較高含量的Ag85/MPT-64抗體。
有研究分析表明抗原替代型卡介苗是具有可行性的。卡介苗進入膀胱后結(jié)合在腫瘤細胞表面的纖維連接蛋白(FN)或膀胱上皮細胞上,引起免疫反應(yīng)。這種結(jié)合是因Ag85具有與FN結(jié)合的特性,被稱為纖連蛋白結(jié)合抗原[6,7]。研究發(fā)現(xiàn)[8],灌注卡介苗后Ag85進入體內(nèi)可以激活能夠識別Ag85的記憶細胞(這些記憶細胞可能在體內(nèi)已經(jīng)存在),產(chǎn)生免疫反應(yīng)。本實驗已經(jīng)成功地構(gòu)建了Ag85A/MPT-64核酸疫苗,并初步證實動物免疫之后能夠產(chǎn)生抵御結(jié)核桿菌侵襲的特異性抗體[9],為進一步研究核酸疫苗在預(yù)防結(jié)核病和防治膀胱癌中的作用奠定了基礎(chǔ)。
實驗證明ELISPOT試驗比TST有更好的特異性和敏感性,這種方法有助于篩查和監(jiān)測接受抗腫瘤壞死因子(tumor necrosis factor TNF)治療病人的結(jié)核感染情況[10]。也有實驗表明,診斷HIV人群潛伏性結(jié)核病感染(LTBI)使用結(jié)核菌特異性抗原的IFN-γ試驗也是有效的。許多研究已證實ELISPOT及其高敏感性和特異性在結(jié)核病人的篩查中具有重要的作用,作為一個結(jié)核病高發(fā)、BCG接種較普及的國家,應(yīng)用此技術(shù)對有結(jié)核病接觸史的人群進行普查,會排除TST、PPD假陽性、假陰性的影響,及早發(fā)現(xiàn)結(jié)核病潛在感染者,結(jié)合其反應(yīng)程度,必要時進行預(yù)防性治療,無疑會降低發(fā)病率,減少傳染源。
我國結(jié)核病發(fā)生率非常高,且普遍接種BCG,這使傳統(tǒng)的TST試驗診斷結(jié)果的準確性受到很大影響,而研究證實不受BCG影響的ELISPOT試驗技術(shù)由于有著更強的特異性,因而更有研究意義,開展ELISPOT技術(shù)來完善結(jié)核的診斷方法也更有發(fā)展前景。研究證明ELISPOT技術(shù)能發(fā)現(xiàn)早期的結(jié)核感染,且比TST有更好的特異性和敏感性,這種方法有助于臨床醫(yī)師進行篩查和監(jiān)測結(jié)核感染,具有廣闊的應(yīng)用前景。
[1]Havlir DV,Wallis RS,Boom WH,et al.Human immune response to Mycobacterium tuberculosis antigens[J].Infect Immun,1991,59:665.
[2]Weldingh K,Rosenkrands I,Jacobsen S,et al.Two-dimensional electrophoresis for analysis of Mycobacterium tuberculosis culture filtrate and purification and characterization of six novel proteins[J].Infect Immun,1998,66:3492.
[3]Asai T,Storkus WJ,Whiteside TL.Evaluation of the modified ELISPOT assay for gamma interferon production in monitoring of cancer patients receiving antitumor vaccines[J].Clin Diagn Lab Immunol,2000,7(2):145.
[4]Kalyuzhny AE.Chemistry and biology of the ELISPOT assay[J].MethodsMol Biol,2005,302:15.
[5]Oettinger T,Holm A,Haslov K.Characterization of the delayed type hypersensitivity inducing epitope of MPT64from Mycobacter ium tubercu losiss[J].Scand J Immunol,1997,45 (5):499.
[6]Sambrook J,F(xiàn)ritsch EF,Maniatis T.Molecular cloning:a laboratory manual[M].2nd.New York:Cold Spring Harbor Laboratory Press,1992:16-69.
[7]Akbarzadeh T,AF,Tafti,et al.Synthesis and cloxacillin antimicrobial enhancement of 2-methylsulfonylimidazolyl-1,4-dihydropyridine derivatives[J].Daru-Journal of Faculty of Pharmacy,2010,18 (2):118.
[8]Wang Z,Potter BM,Gray AM,et al.The solution structure of antigen MPT64from Mycobacterium tuberculosis defines a new family of beta-grasp proteins[J].J Mol Biol,2007,366(2):375.
[9]Choi SS,E Chung,et al.Newly Identified CpG ODNs,M5-30and M6-395,Stimulate Mouse Immune Cells to Secrete TNF-alpha and Enhance Th1-Mediated Immunity[J].Journal of Microbiology,2010,48(4):512.
[10]de Klerk LM.,AL,Michel,et al.BCG vaccination failed to protect yearling African buffaloes(Syncerus caffer)against experimental intratonsilar challenge with Mycobacterium bovis[J].Veterinary Immunology and Immunopathology,2010,137 (1-2):84.
[11]ZlottaAR,Drowar A,Van Vooren JP,et al.Superficial bladder tumors and increased reactivity against myobacterial antigens before bacillus Calmette-Guerin therapy[J].J Urol,1998,159(6):1885.
[12]Lin G,DY Li,et al.Fellutamide B is a potent inhibitor of the Mycobacterium tuberculosis proteasome[J].Archives of Biochemistry and Biophysics,2010,501(2):214.
[13]TakenoM,Murakami S,Ishigatsubo Y,et al.Tuberculosis associated with anti-TNF therapy[J].N ipponR insho,2007,65(7):1308.