產油脂真菌PJX－29抗氧化活性成分研究

林 濤 楊海燕 劉天行 辛志宏

(南京農業大學食品科技學院1，南京 210095)

(新疆農業大學食品科學與藥學學院2，烏魯木齊 830052)

產油脂真菌PJX－29抗氧化活性成分研究

林 濤1楊海燕2劉天行1辛志宏1

(南京農業大學食品科技學院1，南京 210095)

(新疆農業大學食品科學與藥學學院2，烏魯木齊 830052)

對一株紅樹林來源的產油脂真菌PJX－29發酵產物中的抗氧化成分進行分離和鑒定。利用溶劑萃取、硅膠柱色譜及制備HPLC等分離手段從發酵產物中分離得到2個甘油酯類化合物和其他5個化合物，通過理化性質分析及波譜學方法鑒定其化學結構分別為:十五碳單甘油酯，9″，12″－十七碳二烯酸，十六烷基甘油酯，6－戊基－α－吡喃酮，4，6－二羥基－9，10－二甲基苯乙酮，雙(8－8'－7羥基－4－甲氧基－5－甲基香豆素)，對羥基苯甲酸，6－氨基苯甲醛，并以DPPH法評價了化合物的抗氧化活性，結果表明化合物1，化合物2 和化合物6 具有較強的抗氧化活性，其 IC50分別為:(11.38 ±0.61)、(9.33 ±0.80)和(11.12 ±1.01) μg/mL。

產油脂真菌 發酵產物 抗氧化活性

微生物油脂(microbial oils)，也稱為單細胞油脂，是很多微生物如霉菌、細菌、酵母菌及藻類等在一定條件下產生的油脂，其組成大多與一般植物油脂類似，為C16、C18脂肪酸。早在20世紀40年代，微生物油脂的研究就已經開始［1］，到80年代初，日本的研究已初現成果，成功的利用發酵法生產長鏈二元酸［2］，此后英國在1986年首先推出微生物油脂γ－亞麻酸生產的功能性飲料、保健食品等產品［3］。90年代后，各國對微生物來源的功能性油脂的研究與開發更加關注，且從真菌、細菌、酵母和藻類中陸續尋找到能產生活性油脂的新菌種，為功能性油脂的大量生產提供了技術依據［4］。然而，已發現的能夠產生油脂的微生物種類依然有限，且大多都來源于陸地，產量較低。近年來，隨著海洋科學的發展，人們發現海洋微生物能夠產生化學與活性多樣的化合物，其中，包括產生功能性油脂的藻類和微生物［5］，因此，從海洋微生物中探尋功能性油脂成為現代食品科學的發展方向之一，而紅樹林則是發現海洋微生物的重要來源之一。

紅樹林是指位于熱帶、亞熱帶海岸潮間帶的一種特殊的木本植物群落，處于陸地生態系統與海洋生態系統的過渡帶，是海岸帶極為獨特的生態景觀，孕育了豐富多樣的微生物資源，從而能夠產生結構多樣、生物活性獨特的特殊代謝產物［6］，如源于紅樹林的微藻破囊壺－裂殖壺菌屬(thraustochytrid－Schizochytrium)不僅產生三酰甘油和卵磷脂，而且還產生n－3多不飽和脂肪酸DHA［7］，因此，紅樹林來源的海洋微生物是盛產油脂的重要菌種資源。

本研究以分離自紅樹林泥土的產油脂真菌PJX－29為研究對象，通過大量發酵、有機溶劑提取和分離純化，得到發酵產物中的單體化合物，應用現代波譜學手段對化合物進行結構鑒定，采用DPPH法評價了這些化合物的抗氧化活性，以期為尋找具有抗氧化活性的天然功能性油脂開辟一條新的途徑。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

紅樹林泥土:采自中國南海(海南省海口市);Sephadex LH－20:Pharmacia公司;硅膠H(100～400目):青島海洋化工廠產品;活性測試試劑 DPPH(1，1－diphenyl－2－picrylhydrazyl)、VC:美國 Sigma公司;常規提取分離試劑乙醇、甲醇、丙酮、乙酸乙酯、石油醚、氯仿等均為工業用化學純產品，重蒸后使用，液相色譜甲醇為色譜純。

1.2 主要儀器

Waters 600分析型高效液相色譜(Waters 996二極管陣列檢測器，Empower 2工作站，ODS－C18柱:5!m，4.6 × 250):美國Waters公司;Waters 1525 制備型高效液相色譜(Waters DAD檢測器，WatersBreeze工作站，ODS－C18柱:5!m，10 × 250):美國Waters公司;Mariner API－TOF質譜儀:美國應用生物系統公司;JEOL JNM－ECP600核磁共振儀:日本JEOL公司;Spectra CountTM酶標儀:美國Packard公司;EYELAN－N旋轉蒸發儀:日本東京理化器械株式會社;TC－C－100R搖床:日本高崎科學器械株式會社;潔凈工作臺:蘇凈集團安泰公司。

1.3 菌株的分離與培養

1.3.1 菌株來源

真菌菌株PJX－29是本實驗室從采自中國南海(海南省海口市)紅樹林泥土中分離得到的。

菌株分離采用PDA固體培養基:土豆20%，葡萄糖2%，瓊脂2%，食鹽3%，氯霉素0.1%。

菌株分離:在無菌操作臺中將泥土用無菌水潤濕成糊狀，取適量加入PDA平板上，涂布，平行3個重復，于培養箱中28℃培養。培養3～5 d后，挑取菌落邊緣長出的菌絲，劃線轉接于PDA平板上，經2～3次劃線分離，得到形態完全一致的單菌落，4℃下冰箱保藏。

1.3.2 發酵培養

采用真菌二號液體培養基:麥芽糖2%，味精1% ，KH2PO40.05%，MgSO4· 7H2O 0.03%，葡萄糖1%，酵母膏0.3%，玉米漿0.1%，甘露醇2%，CaCO32% ，pH 6.5，陳海水配制。

將冰箱保藏的菌株PJX－29接種于PDA斜面培養基上，于28℃培養箱中活化培養5～8 d后，接種到盛有300 mL液體培養基的三角培養瓶中，共發酵30 L于28℃溫度下搖床培養10 d。

1.4 發酵產物的提取分離

1.4.1 菌株PJX－29發酵產物的提取

發酵培養液30 L經布氏漏斗過濾，分為菌絲體和發酵液。發酵液用等量的乙酸乙酯萃取3次，減壓濃縮至干，得到發酵液的乙酸乙酯粗提濃縮物。菌絲體用丙酮－水(8∶1)溶液浸泡提取1 h，過濾后的菌絲體再用丙酮－水(8∶1)溶液重復提取2次后，合并提取液，減壓濃縮至不含丙酮后，用等量的乙酸乙酯萃取3次，合并乙酸乙酯萃取液并減壓濃縮至干，得到菌絲體的乙酸乙酯提濃縮物。合并發酵液與菌絲體的乙酸乙酯提濃縮物，用適量的甲醇－水(9∶1)溶解后，加入等量的石油醚萃取3次后，分別得到石油醚層和甲醇水層，分別減壓濃縮至干。

1.4.2 菌株PJX－29發酵產物的分離

用氯仿－甲醇(1∶1)溶解甲醇水層的濃縮粗提物(10 g)，然后拌入35 g 100～200目的硅膠，用旋轉蒸發儀抽干溶劑后裝入已裝好200～300目硅膠的減壓柱中，以石油醚－氯仿、氯仿－甲醇為溶劑進行梯度洗脫，每個梯度用1 000 mL溶劑洗脫，收集不同組分，分別減壓濃縮至干，通過薄層色譜(TLC)將相同的組分合并，最終得到7個組分:記為 Fr.1～Fr.7。

組分 Fr.6經過 Sephadex LH－20純化得到Fr.6 －2(200 mg)。Fr.6 －2 經過硅膠柱分離，石油醚 －丙酮(15∶1)洗脫，再通過半制備HPLC分離(90%甲醇－水、4 mL/min)得到化合物 1(15 mg、tR=17 min)和化合物2(15 mg、tR=20 min)。

組分Fr.5經過Sephadex LH－20純化，半制備型HPLC分離(60%甲醇－水、4 mL/min)得到化合物 3(50 mg、tR=10 min)。

組分 Fr.4經過 Sephadex LH－20純化得到Fr.4 －2(340 mg)、Fr.4 －3(500 mg)。Fr.4 －2 經過硅膠柱分離，石油醚－丙酮(15∶1)洗脫，再通過半制備型HPLC分離制備(55%甲醇－水、4 mL/min)得到化合物 4(20 mg、tR=13 min);Fr.4 －3 經過硅膠柱分離，石油醚－丙酮(10∶1)洗脫，再通過半制備型HPLC分離制備(65%甲醇－水、4 mL/min)得到化合物 5(10 mg、tR=13 min)。

組分 Fr.3經過 Sephadex LH－20純化得到Fr.3 －3(400 mg)、Fr.3 －4(450 mg)。Fr.3 －3 經過硅膠柱分離，石油醚－丙酮(5∶1)洗脫，再通過半制備型HPLC分離(65%甲醇－水、4 mL/min)得到化合物6(10 mg、tR=11 min);Fr.3 －4 經過硅膠柱分離，石油醚－丙酮(5∶1)洗脫，再通過半制備型HPLC分離(65%甲醇－水、4 mL/min)得到化合物7(13 mg、tR=15 min)。

1.5 抗氧化活性測定

抗氧化活性測定采用DPPH法［8］。

1.5.1 抗氧化活性的測定原理

DPPH的乙醇溶液在可見光下為深紫色，在517 nm處有較強吸收，自由基清除劑能與其單電子配對而使其吸收逐漸消失，且褪色程度和與其配對的電子數成比例關系，因而可用分光光度法進行定量分析其自由基清除的程度，該方法快速、簡便，是目前評價抗氧化活性的常用方法之一。

1.5.2 抗氧化活性的測試方法

分別將3 mL 1×10－4mol/L的DPPH乙醇溶液與0.1 mL不同濃度的樣品溶液混合均勻，在室溫條件下暗室反應30 min。用乙醇作為空白對照，在517 nm下測定吸光度(A1)，同時將0.1 mL樣品溶液與3.0 mL 乙醇混合，測定吸光度(A2)，0.1 mL 乙醇與3.0 mL DPPH乙醇溶液混合，測定吸光度(A0)。陽性對照為VC。

1.5.3 抗氧化活性的評價方法

2 結果與分析

2.1 化合物的結構解析

化合物1:無色油狀物，陽離子低分辨ESI－MS在m/z 317［M+H］+處給出準離子峰，提示該化合物的相對分子質量為316，該化合物1H－NMR譜給出丙三醇自旋體系的特征共振信號:δ 4.20(2H，m)，3.81(1H，m)，3.56(2H，m)，說明該化合物為單取代的丙三醇結構。1H－NMR譜在高場區(δ1.13～1.68)出現長鏈烷烴信號，因此初步推斷該化合物為單甘油酯，結合文獻數據確定該化合物為十五碳單甘油酯［9］，結構如圖1所示。該化合物的詳細核磁數據如下所示:1H － NMR(600 MHz，CDCl3)δ:4.20(2H，m，H －1)，3.81(1H，m，H －2)，3.56(2H，m，H －3)，2.33(2H，m，H －2')，1.68(2H，m，H －3')，1.45～ 1.17(20H，m，H － 4'～ 13')，1.14(2H，m，H －14')，0.86(3H，m，H －15')。

圖1 化合物1的結構

化合物2:無色油狀物，陽離子低分辨ESI－MS在m/z 579［M+H］+處給出準離子峰，提示該化合物的相對分子質量為578，由1H－NMR中 δ 4.20、3.91和3.60，并與化合物1的波譜數據進行比較，可知該化合物中也含有丙三醇結構，1H－NMR譜在高場區(δ1.25～2.78)出現長鏈烷烴信號，δ5.35 處出現雙鍵信號，因此推測該化合物為二取代的含有雙鍵的甘油酯，根據文獻［10］并結合化合物1可確定該化合物為9″，12″－十七碳二烯酸，十六烷基甘油酯，結構如圖2所示。該化合物的詳細核磁數據如下所示:1H － NMR(600 MHz，CDCl3) δ:0.88(3H，t，J=6.9 Hz，H － 16')，0.88(3H，t，J=6.9 Hz，H －17″)，1.31(2H，m，H －15')，1.31(2H，m，H －16″)，1.26(16H，m，H －5'～12')，1.29(14H，m，H －3'，13'，14，4″～ 7″，15″)，2.35(4H，m，H － 2'，2″)，3.61(1H，dd，J=5.8，11.4Hz，H － 3)，3.69(1H，dd，J=4.0，11.4Hz，H －3)，4.16(1H，dd，J=6.6，11.2 Hz，H－1)，4.21(1H，dd，J=4.4，11.5 Hz，H －1)，5.35(1H，m，H －2)，5.35(4H，m，H －9″，10″，12″，13″);13C － NMR(150 MHz，CDCl3)δ:14.2(C －16'，17″)，22.7(C －15'，16″)，25.7(C －3'，3″，11″)，27.3(s，C －14″)，27.8(s，C－8″)，29.2～29.7(C －4'～13'，4″～7″)，31.6(s，C －2')，34.2(s，C －2″)，63.4(s，C －3)，65.3(s，C －1)，71.9(s，C －2)，127.9(s，C －10″)，130.1(s，C －12″)，130.3(s，C －13″)，132.5(s，C － 9″)，167.8(s，C － 1″)，174.4(s，C －1')。

圖2 化合物2的結構

化合物3:淺黃色油狀物，陽離子低分辨ESIMS在m/z 167［M+H］+處給出準離子峰，提示該化合物相對分子質量為166，結合1H－NMR和13CNMR，確定分子式為C10H14O2，DEPT譜顯示化合物含有1個甲基、4個亞甲基、3個次甲基和2個連氧碳，碳譜中 δC166.8推測可能為羰基信號，且 δC143.9、113.0 和102.7 為芳香區域的碳，通過分子式計算不飽和度為4，可推測該化合物中可能含有1個α－吡喃酮基，再結合上面推測的1個甲基和4個亞甲基，并與文獻數據比較［11－12］，確定化合物3為6－戊基－α－吡喃酮，結構如圖3所示。該化合物的詳細核磁數據如下所示:1H－NMR(600 MHz，CDCl3)δ:0.90(3H，t，H －5')，1.29 ～ 1.37(4H，m，H － 3'，H －4')，1.67(2H，m，H －2')，2.48(2H，t，H －1')，6.00(1H，d，J=6.6 Hz，H －5)，6.15(1H，d，J=9.4 Hz，H － 3)，7.28(1H，dd，J=6.6，9.3 Hz，H － 4);13C － NMR(150 MHz，CDCl3)δ:13.9(s，C －5')，22.3(s，C －4')，26.6(s，C －2')，31.2(s，C －3')，33.8(s，C －1')，102.7(s，C －5)，113.0(s，C －3)，143.9(s，C －4)，163.0(s，C －2)，166.8(s，C －6)。

圖3 化合物3的結構

化合物4:無色針狀物，陰離子低分辨ESI－MS在m/z 179［M－H］－處給出準離子峰，提示該化合物相對分子質量為180，結合1H－NMR和13CNMR，確定分子式為 C10H12O3，δH2.02、2.14 和 2.5推測為甲基信號，δH7.52 和碳譜中 δC130.8、116.4、112.6、110.8信號，結合分子式計算出不飽和度為4，提示該化合物中含有一個苯環結構，δH9.58，12.92出現兩個活潑氫信號，推測為—OH信號，碳譜中δC161.2、161.1 提示為連氧碳，δC203.6 提示為羰基碳，再結合氫譜和碳譜，并與文獻數據比較［13－14］，確定化合物4為4，6－二羥基－9，10－二甲基苯乙酮，結構如圖4所示。該化合物的詳細核磁數據如下所示:1H －NMR(600 MHz，DMSO －d6) δ:2.02(3H，s，H －9)，2.14(3H，s，H －10)，2.52(3H，s，H －1)，7.52(1H，s，H － 8)，9.58(1H，s，6 － OH)，12.92(IH，s，4 － OH);13C －NMR(150 MHz，DMSO － d6)δ:8.7(s，C － 10)，16.7(s，C － 9)，26.7(s，C － 1)，110.8(s，C －3)，112.7(s，C －5)，116.4(s，C －7)，130.8(s，C －8)，161.1(s，C －4)，161.2(s，C －6)，203.6(s，C －2)。

圖4 化合物4的結構

化合物5:無色油狀物，陽離子低分辨ESI－MS在 m/z 411［M+H］+、433［M+Na］+、陰離子低分辨ESI－MS在m/z 409［M－H］－處給出準離子峰，提示該化合物的相對分子質量為410。在1H－NMR中一共出現4個單峰，結合13C－NMR推測為1個甲基，1個甲氧基，2個芳香區域的氫，13C－NMR中一共出現11個碳信號，結合DEPT譜推測其分別為7個季碳，2個次甲基和2個甲基，再根據相對分子質量推測該化合物可能為對稱結構，分子式可能為C22H18O8，結合化合物分子質量計算出不飽和度為14，推測該化合物中至少含有4個環狀結構，在碳譜的低場部分提示含有—OH和羰基的信號，通過與文獻數據比較［15－16］，確定化合物5為雙(8－8'－7羥基－4－甲氧基－5－甲基香豆素)，結構如圖5所示。該化合物的詳細核磁數據如下所示:1H－NMR(600 MHz，DMSO － d6) δ:2.59(3H，s，H － 12/12')，3.93(3H，s，H － 11/11')，5.56(1H，s，H － 3/3')，6.71(1H，s，6 －H/H')，10.27(1H，s，7/7'－ OH);13C －NMR(150 MHz，DMSO － d6)δ:23.3(s，C －12/12')，56.6(s，C －11/11')，86.5(s，C －3/3')，105.8(s，C －10/10')，106.1(s，C － 8/8')，115.7(s，C － 6/6')，137.1(s，C － 5/5')，154.0(s，C － 4/4')，158.7(s，C －7/7')，161.9(s，C －9/9')，169.8(s，C －2/2')。

圖5 化合物5的結構

化合物6:無色油狀物，陽離子低分辨ESI－MS在m/z 139［M+H］+處給出準離子峰，提示該化合物的相對分子質量為138，在1H－NMR中有一組雙二重峰 δH7.79(d，J=8.8 Hz，1H)和 6.83(d，J=8.3 Hz 1H)，提示為苯環上的對位取代，在低場δH11.3左右出現活潑氫信號，推測為－OH信號，結合13CNMR中低場δC167.8處有1個連氧碳信號，推測該化合物中含有一個羧基信號。在低場δC162.1處有一個碳信號，推測該碳原子位于苯環上且與羥基相連，通過與文獻數據比較［17－18］，確定化合物 6為對羥基苯甲酸，結構如圖6所示。該化合物的詳細核磁數據如下所示:1H－NMR(600 MHz，DMSO－d6)δ:7.79(2H，d，J=8.8 Hz，H －2，6)，6.83(2H，d，J=8.3 Hz，H － 3，5)，11.37(2H，brs，4，7 － OH);13C －NMR(150 MHz，DMSO － d6)δ:115.6(s，C －3，5)，122.1(s，C －1)，132.1(s，C － 2，6)，162.1(s，C －4)，167.8(s，C －7)。

圖6 化合物6的結構

化合物7:淡黃色油狀物，陽離子低分辨ESIMS在m/z 122［M+H］+處給出準離子峰，提示該化合物的相對分子質量為121，1H－NMR中 δ 7.42、7.27和7.16處出現4個氫信號，并根據化學耦合常數判斷其為苯環上的氫，根據峰裂分情況(2個二重峰，2個三重峰)，可知其為鄰位取代的苯的衍生物，通過與文獻數據［19－20］比較，可確定該化合物為6－氨基苯甲醛，結構如圖7所示。該化合物的詳細核磁數據如下所示:1H－NMR(600 MHz，CD3OD)δ:7.43(1H，d，J=8.2 Hz，H －2)，7.27(1H，m H －4)，7.18(1H，m，H － 3)，7.16(1H，d，J=7.7 Hz，H －5);13C － NMR(150 MHz，CD3OD)δ:191.4(s，C －1')，141.3(s，C －6)，130.1(s，C －4)，162.1(s，C －4)，126.9(s，C －2)，124.1(s，C －1)，121.1(s，C －3)，111.9(s，C －5)。

圖7 化合物7的結構

2.2 化合物的抗氧化活性

采用DPPH法對菌株PJX－29發酵產物中分離得到的7個化合物進行抗氧化活性評價，測定結果如表1所示。由表1可知，化合物1～化合物7對DPPH均具有一定的清除能力，特別是化合物1、化合物2和化合物6具有較強的抗氧化活性，其IC50分別為(11.38 ±0.61)、(9.33 ±0.80)和(11.12 ±1.01)μg/mL，說明甘油酯類化合物具有較強的抗氧化活性，這可能是由于甘油酯類化合物側鏈中含有不飽和雙鍵的緣故。

表1 7個化合物的抗氧化活性評價結果(以IC50計)

抗氧化活性物質常常在自由基清除方面發揮著重要的作用。在正常的生理情況下，機體內的自由基不斷的產生并被不斷清除，處于動態平衡，低濃度的自由基不僅可以保護機體，還具有獨特的生理功能，但在病理和日益衰老的情況下，體內的自由基通常會代謝紊亂，產生量遠遠大于清除量，機體內的動態平衡被破壞，氧化應激過度而損傷機體，產生不良的生物學效應［21－22］，如過量的自由基會破壞體內的生物大分子脂質、DNA、蛋白質等，使機體發生病變［23］。研究已經證實自由基與衰老［24］、高血壓［25］、癌癥［26］、炎癥［27］等疾病有著密切關系，因此，尋找和開發天然抗氧化劑一直是食品科學研究的重要內容之一，而油脂，特別是不飽和油脂，作為人體日常必須攝入的一類物質，對保護人體健康和維持機體生理功能的正常發揮非常重要。

傳統生產油脂的原料主要來源于植物的種子和果實，但受植物生長情況、產量與收獲季節制約，而微生物來源的油脂可通過發酵技術大量生產，不受原料與季節限制，已成為功能性油脂生產的新途徑，特別對一些具有生物活性的不飽和油脂的生產具有重要意義，如γ－亞油酸、花生四烯酸、DHA、EPA等。常用的產油脂菌主要有乳酸菌［28］、瘤胃菌［29］、丙酸菌［30］，以及其他一些通過基因改造產生的工程菌種等［31－33］，但是現有的產油脂微生物種類相對較少，油脂產量較低，且大多來源于陸地。本研究從海洋紅樹林來源真菌PJX－29的發酵產物中分離到7個化合物，其中2個甘油酯類化合物和1個苯的衍生物類化合物具有較強的抗氧化活性，說明紅樹林來源真菌能夠產生功能性油脂與活性化合物，這為尋找產油脂的微生物提供了重要的資源菌和新的生產途徑。

3 結論

利用溶劑萃取、硅膠柱色譜及制備HPLC等分離手段從一株紅樹林來源的產油脂真菌PJX－29發酵產物中分離了2個甘油酯類化合物和其他5個化合物，通過理化性質分析及波譜學方法鑒定其化學結構，并以DPPH法評價了化合物的抗氧化活性，結果表明化合物1，2和6具有較強的抗氧化活性，其IC50分別為(11.38 ±0.61)、(9.33 ±0.80)和(11.12 ±1.01)μg/mL，該研究結果說明紅樹林來源的海洋真菌能夠產生具有抗氧化活性的功能性油脂，拓寬了海洋微生物研究的新領域，為進一步深入研究微生物來源的功能性油脂提供了理論基礎。

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The Study of Antioxidant Components from Oil Producing Fungi PJX－29

Lin Tao1Yang Haiyan2Liu Tianxing1Xin Zhihong1
(College of Food Science and Technology，Nanjing Agricultural University1，Nanjing 210095)
(College of Food Science and Pharmacy，Xinjiang Agricultural University2，Wulumuqi 830052)

The antioxidant components were isolated and identified from the fermentation product of the Oil production fungus PJX －29 derived from Ocean Mangroves.Two glyceride compounds and other five compounds were isolated with solvent extraction，silica gel column chromatography and preparative HPLC and their structures were identified as monoglycerides，9″，12″－ Heptadecadienoic acid，1 － (hydroxymethyl) － 2 － ［(1 － oxohexadecyl)oxy］ethyl ester，6－Pentyl－α －pyrone，4，6－dihydroxy－9，10－dimethylacetophenone，bis［8－8'－(7－hydroxy－4 －methoxy－5－methylcoumarin)］，Hydroxybenzoic acid，6－Aminobenzaldehyde by physicochemical properties and spectral analyses，respectively.The antioxidant activity of the compounds were evaluated by DPPH method，the result showed that compounds 1，2 and 6 have potential antioxidant activity，and their IC50are(11.38 ±0.61)，(9.33 ±0.80)and(11.12 ±1.01) μg/mL，respectively.

oil production fungus，fermentation product，antioxidant activity

TS201.2

A

1003－0174(2012)09－0053－07

國家自然科學基金(31071586)，中央高校基本科研業務費專項(KYZ201118)

2011－11－27

林濤，男，1987年出生，碩士，食品營養與化學

辛志宏，男，1974年出生，副教授，碩士生導師，食品營養與化學