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黃梅木提取物對皮膚過敏大鼠腹腔肥大細胞活化的影響

2012-12-17 08:12:10李良昌延光海李光昭沈光海延邊大學醫學部解剖學教研部吉林延吉33000
中國老年學雜志 2012年8期

李良昌 延光海 李光昭 沈光海 (延邊大學醫學部解剖學教研部,吉林 延吉 33000)

肥大細胞膜表面表達IgE高親和力受體,經活化后可產生和釋放多種炎性介質,從而引起多種變態反應癥狀。炎癥反應與肥大細胞脫顆粒密切相關,也是過敏反應過程中的關鍵步驟,抑制肥大細胞脫顆粒和釋放組胺可減輕炎癥反應的強度〔1〕。黃梅木(別名檀香梅)在中國的遼寧、山西、陜西、甘肅、山東、江蘇、安徽、江西、湖北、四川等省亦廣泛分布,名為三鉆風、甘姜、香麗水等,以樹皮人藥,主治跌打損傷、瘀血腫痛;外用鮮樹皮搗爛敷患處〔2〕。本實驗探討黃梅木提取物對肥大細胞的影響。

1 材料與方法

1.1 實驗動物 體重為200~250 g的健康成熟SD雄性大鼠(延邊大學醫學部動物室提供,動物質量合格證:10-1022)。室溫(22±1)℃、相對濕度50% ~60%、光照周期12/12 h環境中適應飼養1 w后實驗。

1.2 試劑 Anti-DNP IgE、DNP人血清蛋白(HSA)、MTT、組胺檢測試劑盒、同位素Ca2+、氮卓斯汀、抗actin抗體以及HEPES均購自美國 Sigma公司,腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、白細胞介素-6(IL-6)、抗核轉移因子(NF-κB)p65多克隆抗體為美國Santa Cruz公司產品。

1.3 主要儀器 酶聯免疫檢測儀(RT-2100C,美國),CO2培養箱(TC23232E,美國),電泳儀及電泳槽(E-C Apparatus Corporation,美國),Western印跡轉膜儀(BioRad公司),核酸/蛋白質含量測定儀(SmartSpec Plus),高速冷凍離心機(TGL-16G),RF-540型熒光分光光度計(日本島津公司)。

1.4 方法

1.4.1 黃梅木提取物制備方法 取干燥的黃梅木樹枝1 000 g(延邊大學藥學院提供)加3 500 ml 70%乙醇,用加熱萃取機萃取4 h,將取得的萃取液用濾紙濾過,然后使用回轉真空濃縮機,上清液在45℃減壓濃縮,經冷凍干燥得粉末80 g,臨用前以蒸餾水或生理鹽水配制。

1.4.2 腹腔肥大細胞的獲取 腹腔肥大細胞的分離提純是采用 Choi等〔3〕的方法。

1.4.3 被動皮膚過敏反應(PCA)實驗〔4〕將健康SD大鼠隨機分為6組:包括正常對照組,模型對照組,黃梅木提取物低、中、高劑量組(100、200、400 mg/ml)及陽性藥物對照組(氮卓斯汀,10 mg/ml),每組10只大鼠。大鼠背部皮內注射200 ng anti-DNP IgE,24 h后大鼠陰部靜脈注射含有100 μg DNP HSA的1%伊文思藍混合液200 μl。注射伊文思藍前24、12、1 h黃梅木提取物高、中、低劑量灌胃治療。30 min后,切開背部皮膚藍色斑點部位,稱量,細切放入HERES-Tyrode溶液在60℃干燥機水浴箱上放置3 h。用分光光度計在620 nm下測定滲出的伊文思藍濃度。

1.4.4 細胞毒性實驗 利用MTT進行檢測黃梅木提取物的細胞毒性〔3〕。

1.4.5 肥大細胞組胺釋放量測定〔3〕在肥大細胞懸液中加入anti-DNP IgE(10 μg/L)致敏,在37℃孵育6 h。然后,分別加入黃梅木提取物高、中、低劑量(100、50、25 μg/L)組,氮卓斯汀(10 μg/L)作為陽性對照,作用10 min,洗凈,各組分別加入DNP-HSA(100 ng/ml),孵育30 min,離心后取適量細胞上清液分別用于測定組胺。

1.4.6 肥大細胞內鈣攝入量測定〔5〕在肥大細胞懸液中,放入含有 1 μCi45Ca2+/ml的 HERES-Tyrode緩沖溶液(MgCl2、CaCl2除外),再懸浮。加入 anti-DNP IgE(10 μg/L)致敏,在37℃孵育6 h,分別加入黃梅木提取物和陽性對照氮卓斯汀,作用10 min,洗凈,各組分別加入 DNP-HSA(100 ng/ml),孵育30 min。離心后除去上層液,用Triton-100破壞肥大細胞,計算出鈣離子量。

1.4.7 TNF-α、IL-6蛋白測定〔6〕在腹腔肥大細胞中加入anti-DNP IgE(10 μg/L)致敏,在37℃培養基孵育6 h,換洗后,加入黃梅木提取物作用10 min,洗凈,各組分別加入DNP-HSA(100 ng/ml),孵育30 min。離心后除去上層液,加入裂解液,4℃離心,取上清液測蛋白濃度。取20 μg蛋白,經12%SDSPAGE電泳,電轉移至PVDF膜上,在5%脫脂奶粉Tris-緩沖液(TBST)溶液室溫下封閉2 h,分別加入TNF-α及IL-6抗體4℃過夜,洗膜后再用辣根過氧化物酶(HRP)標記的二抗雜交,37℃,1 h。洗膜后在暗室中加增強化學發光法(ECL)試劑,顯影及定影。

2 結果

2.1 黃梅木提取物對PCA的影響 與模型組比較黃梅木提取物各治療組均能減少染料的滲出,其中高、中(400、200 mg/kg)劑量組與模型組比較差異顯著(P<0.05)。見表1。

2.2 MTT測定結果 上述實驗所用黃梅木提取物25~100 μg/L濃度對肥大細胞活性幾乎無影響。見表2。

2.3 黃梅木提取物對肥大細胞組胺生成和鈣攝入量影響 與模型組比較黃梅木提取物各治療組均能抑制組胺生成和鈣攝入量,其中高、中(100、50 μg/L)劑量組與模型組比較,具有顯著性差異(P<0.05)。見表2。

2.4 黃梅木提取物對TNF-α蛋白表達的影響 Western印跡條帶光密度分析顯示模型組TNF-α蛋白表達較對照組增加9.3 倍,黃梅木提取物(25、50、100 μg/L)給藥 10 min 使 TNF-α蛋白表達分別下降7.8%、81%與87%。見圖1。

2.5 黃梅木提取物對IL-6蛋白表達的影響 Western印跡條帶光密度分析顯示模型組 IL-6蛋白表達較對照組增加10倍,黃梅木提取物(10、25、50 μg/L)給藥10 min使 IL-6蛋白表達分別下降8.6% 、84%與87%。見圖2。

表1 黃梅木提取物對被動皮膚過敏反應的影響( s,n=8)

表1 黃梅木提取物對被動皮膚過敏反應的影響( s,n=8)

與模型組比較:1)P<0.05;下表同

組別 劑量(mg/kg)伊文思藍(μg/g)抑制率(%)0 56.25±2.65 -模型組 0 301.65±17.23 -黃梅木提取物組 100 266.32±13.81 14.51黃梅木提取物組 200 184.56±13.69 39.131)黃梅木提取物組 400 131.92±5.35 59.811)氮卓斯汀組 10 115.69±7.63 62.171)正常組

表2 黃梅木提取物對肥大細胞釋放組胺生成和鈣攝入量的影響( s,n=5)

表2 黃梅木提取物對肥大細胞釋放組胺生成和鈣攝入量的影響( s,n=5)

0 1.41±0.70 0.12±0.10 41.52±2.10模型組 0 1.38±0.72 1.32±0.14 150.86±4.96黃梅木組 25 1.41±0.52 1.14±0.15 129.81±4.87黃梅木組 50 1.47±0.59 0.79±0.231) 87.10±3.711)黃梅木組 100 1.48±0.75 0.31±0.311) 67.41±3.361)氮卓斯汀組 10 1.48±0.69 0.29±0.191) 55.63±2.911))正常組

圖1 不同藥物組肥大細胞TNF-α蛋白免疫印跡

圖2 不同藥物組肥大細胞IL-6蛋白免疫印跡

3 討論

抗原致敏機體后,機體免疫系統可對其進行識別并產生特異性抗體IgE,IgE可與肥大細胞表面的高親合性IgE Fc受體(FceRI)結合使細胞致敏。當機體再次接觸抗原時,特異性IgE可與其結合,活化FceRI,從而誘導肥大細胞脫顆粒并釋放多種炎性介質〔5〕。因此,如何有效地抑制肥大細胞脫顆粒就成為抗變態反應藥物研發的重點。

被抗原激活的肥大細胞脫顆粒以后,釋放出TNF-α、IL-6等與Ⅰ型變態反應相關的細胞因子,然后引起過敏炎癥反應〔6〕。TNF-α可由多種細胞合成,是重要的前炎癥因子,它可促使血管內皮細胞表達黏附分子促進炎癥細胞的聚集,并可刺激前列腺素、白三烯等因子的釋放。組胺可增強多種細胞合成分泌IL-6等促炎細胞因子,促進過敏炎癥反應;組胺還可增強嗜酸細胞和肥大細胞的趨化反應,誘導炎癥介質的生成,對炎癥有促進作用〔1〕。據研究報道,調節細胞內鈣的濃度是抑制FceRI誘導肥大細胞脫顆粒的關鍵因素〔7〕。結果顯示黃梅木提取物呈劑量依賴性減少IgE誘導的肥大細胞外鈣內流,由此可抑制肥大細胞脫顆粒和炎癥細胞因子的釋放;從體內及體外觀察到黃梅木提取物抑制肥大細胞脫顆粒的同時,也抑制了組胺、TNF-α、IL-6等與I型變態反應相關的因子,這可能是黃梅木提取物抗I型變態反應的重要機制之一。

近年的研究結果揭示肥大細胞的脫顆粒與Lyn/Syk/LAT及Fyn/Gab2/PI3K兩條信號通路密切相關,黃梅木提取物是通過調節其中一條信號通路,還是對兩條信號通路均有作用,這將是下一步的研究重點。

1 顧 衛,趙力建,趙愛國.杠柳苷元對肥大細胞脫顆粒及釋放組胺影響的研究〔J〕.中國藥房,2008;19(3):166-8.

2 魏圣淑,劉向前,吳世旭.韓國藥用植物黃梅木果實揮發油成分的GC-MS研究〔J〕.中草藥,2004;35(10):1097-8.

3 Choi YH,Yan GH.Silibinin attenuates mast cell-mediated anaphylaxislike reactions〔J〕.Biol Pharm Bull,2009;32(5):868-75.

4 Choi YH,Yan GH,Chai OH,et al.Inhibitory effects of agaricus blazei on mast cell-mediated anaphylaxis-like reactions〔J〕.Biol Pharm Bull,2006;29(7):1366-71.

5 Choi YH,Yan GH.Ellagic acid attenuates immunoglobulin E-mediated allergic response in mast cells〔J〕.Biol Pharm Bull,2009;32(6):1118-21.

6 Kovarova M,Rivera J.A molecular understanding of mast cell activation and the promise of anti-allergic therapeutics〔J〕.Curr Med Chem,2004;11(15):2083-91.

7 Chai OH,Lee HK,Lee YC,et al.Roles of TNF-alpha and IgE in the late phase of contact hypersensitivity induced by trimellitic anhydride〔J〕.Exp Mol Med,2005;37(5):408-17.

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