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SSc-PF小鼠肺組織和外周血中Th2細胞水平、IL-10表達變化及意義

2013-06-14 06:37:12張建全鐘小寧謝佳峻
山東醫藥 2013年16期
關鍵詞:小鼠檢測

李 宇,張建全,鐘小寧,雷 玲,謝佳峻

(廣西醫科大學第一附屬醫院,南寧530021)

系統性硬化病(SSc)是一種病因不明,以局限性或彌漫性皮膚增厚和纖維化為特征,可影響內臟包括心、肺和消化道器官的全身性疾病。其49.4%~90.0%的患者會出現肺纖維化(PF),在各種結締組織中發生率最高,也是病死率增加的一個重要原因[1]。目前,對SSc-PF起始和持續的發病機制仍未完全清楚,尚無有效措施預防或逆轉疾病的進程。Th2細胞是重要的促纖維化細胞,以分泌IL-4、IL-10為特征,可促進成纖維細胞活化、增生,最終導致特發性PF形成[2]。2012年 5~12月,我們觀察了SSc-PF小鼠肺組織及外周血Th2細胞水平和IL-10表達變化,并探討其意義。

1 材料與方法

1.1 材料 實驗動物:雌性 BALB/c小鼠30只,SPF級,6周齡,體質量20 g,由廣西醫科大學實驗動物中心提供,正常飼養。藥品與試劑:注射用鹽酸博萊霉素(BLM,日本化藥株式會社生產,批號491240,15 mg/支),羥脯氨酸(HYP)測試盒(南京建成生物工程研究所),小鼠ELISA檢測試劑盒(武漢博士德生物工程有限公司),DNA純化試劑盒(上海生工生物工程技術服務有限公司),Trizol試劑(美國Invitrogen公司),逆轉錄試劑盒(加拿大MBI Fermentas公司),PCR試劑和引物(日本TaKaRa公司)。

1.2 方法

1.2.1 分組與造模 將小鼠分成3組,A組10只小鼠背部中央區皮下注射PBS作為對照,20只采用BLM皮下局部注射法[3]建立SSc模型,根據PF半定量評分將模型組分為B組(PF≥3分)11只和C組(PF<3分)9只。

1.2.2 標本采集 小鼠通過眶后動脈放血處死,收集外周血1.0 mL,以4 000 r/min 離心 15 min,吸取上層血清,用于檢測血清IL-10。用肝素抗凝管收集小鼠外周血1.5 mL,PBS重懸,用于分離得到外周血單個核細胞(PBMC)。剪下小鼠背部無毛皮膚并分成2份,一份用于檢測羥脯氨酸(HPY)含量,一份投入10%中性甲醛溶液中固定、脫水、石蠟包埋,制成4μm厚切片進行病理觀察。打開小鼠胸腔,取出左肺上葉迅速移至-80℃冰箱保存,用于熒光定量PCR檢測;左肺下葉分2份,一份用10%中性甲醛溶液固定、脫水、石蠟包埋,制成4μm厚的切片進行病理觀察,另一份用于檢測HYP的含量。右肺用于提取單個核細胞(MC)。

1.2.3 皮膚、肺部炎癥及纖維化觀察 皮膚及肺組織切片做Masson和HE染色,用病理圖像分析儀系統軟件測量皮膚厚度[4]。皮膚和肺部炎癥評分:0分沒有,1分少許,2分輕度,3分中度,4分重度。由2位病理科醫生隨機選取左下肺組織切片區域進行單獨閱片,觀察非重復的10個視野,放大200倍,進行Ashcroft半定量PF評分。

1.2.4 HYP測定 采用樣本堿水解法,精確稱取肺組織和皮膚50 mg放入試管中;加入水解液1 mL,混勻,95 ℃水浴 30 min,調整 pH 6.0 ~6.8;加入適量活性炭,充分混勻,離心,取1 mL進行檢測;在波長550 nm處檢測吸光度(A)值,然后換算成HYP含量(μg/mg)。

1.2.5 肺組織及外周血Th2細胞檢測 取出右肺,根據參考文獻[5]提取肺組織中的MC。PBMC采用Ficoll-泛影鈉不連續密度梯度離心法分離得到。采用美國BD公司四色熒光流式細胞儀檢測CD+4IL-4+Th2細胞,Cell Quest流式分析軟件進行分析。

1.2.6 肺組織IL-10 mRNA檢測 采用熒光定量PCR法。取小鼠左肺下葉肺組織100 mg,用Trizol法提取總RNA進行逆轉錄反應。膠回收純化DNA片段作為標準品,β-肌動蛋白作為內參照,SYBR綠色Ⅰ核酸凝膠染料進行熒光定量PCR檢測。各引物序列:β-肌動蛋白上游引物為 5'-ATCCACGAAACTACCTTCAA-3',下游引物為5'-CCAAATTGTATTGCAGATGTTCCAC-3',擴增產物 200 bp;反應條件:94 ℃ 20 s,57.5 ℃ 30 s,72 ℃ 31 s,40 個循環;IL-10上游引物為5'-CCATGGCCCAGAAATCAAGG-3',下游引物為5'-TCTTCACCTGCTCCACTGCC-3',擴增產物129 bp;反應條件:95℃ 30 s,58℃ 30 s,72℃ 30 s,40個循環。采用標準曲線法計算mRNA相對表達量,將IL-10 mRNA與β-肌動蛋白mRNA相對表達量的比值為其mRNA表達量校正值,經均一化處理后得出其相對量。所有樣本均設置3個復孔。

1.2.7 外周血IL-10檢測 采用ELISA法,操作按試劑盒說明書進行。

1.2.8 統計學方法 采用SPSS13.0統計軟件。正態分布的計量資料用ˉx±s表示,組間比較采用方差、秩和和t檢驗分析;相關性檢驗用Spearman相關分析法。P≤0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 皮膚和肺組織病理觀察 A組小鼠背部注射部位皮膚和肺組織結構完整,無明顯的炎癥細胞浸潤和膠原纖維增生;B、C組小鼠皮膚明顯增厚,膠原纖維明顯增生,附屬器萎縮及大量炎癥細胞浸潤;見插頁Ⅰ圖2。B組肺部結構明顯破壞,可見大量淋巴細胞為主的炎癥細胞浸潤,并且有肺泡、肺間質及支氣管壁中度以上纖維性增厚或者有纖維束的形成;C組肺部結構無明顯破壞,肺泡、肺間質及支氣管壁無或僅有少量纖維性增厚。各組小鼠皮膚、肺部病理及HYP水平比較,見表1。

表1 各組小鼠皮膚、肺部病理及HYP水平比較±s)

表1 各組小鼠皮膚、肺部病理及HYP水平比較±s)

注:與 A 組比較,*P <0.01;與 C 組比較,#P <0.01

組別 n 皮膚厚度(μm)炎癥評分(分)HYP(μg/mg)皮膚 肺部A 組 10 40.77 ±12.66 0.40 ±0.52 0.40 ±0.52 0.60 ±0.7皮膚 肺部PF評分(分)0 1.45 ±0.40 0.38 ±0.16 B 組 11 97.87 ±22.02* 2.82 ±0.75* 2.36 ±0.81*# 4.00 ±1.41*# 3.07 ±1.26* 0.64 ±0.08*#C 組 9 91.73 ±15.33* 2.44 ±0.73* 1.33 ±0.50* 1.50 ±0.76* 2.43 ±0.61*0.45 ±0.08

2.2 各組小鼠外周血、肺組織中Th2細胞比例和IL-10水平比較 見表2。

表2 各組小鼠外周血、肺組織中Th2細胞比例和 IL-10 水平比較( ±s)

表2 各組小鼠外周血、肺組織中Th2細胞比例和 IL-10 水平比較( ±s)

注:與 A 組比較,*P <0.05,#P <0.01;與 C 組比較△P <0.05,▽ P <0.01

組別 Th2細胞(%)肺組織IL-10外周血 肺組織外周血IL-10(pg/mL)mRNA A組9.90 ±7.42 7.40 ±4.93 76.82 ±25.74 8.60 ±6.88 B 組 23.23 ±5.32*△ 23.50 ±5.40#△ 126.77 ±42.78#▽ 21.36 ±7.88#C 組 12.28 ±7.10 14.72 ±6.81 76.56 ±27.74 16.00 ±6.56*

2.3 各指標的相關關系 PF、肺部炎癥評分與皮膚厚度、炎癥評分呈正相關(r分別為0.687、0.791,P均<0.05),外周血、肺部Th2細胞與肺部炎癥、HYP、PF 評分呈正相關(r分別為 0.586、0.535、0.595和0.538、0.423、0.581,P 均 < 0.05)。IL-10 mRNA在肺組織的表達量與肺部炎癥、HYP、PF評分呈正相關(r分別為 0.532、0.460、0.474,P 均 <0.05),血清IL-10水平與肺部炎癥、HYP、PF評分呈正相關(r分別為 0.387、0.461、0.410,P 均 <0.05)。肺部Th2細胞與肺部IL-10 mRNA、外周血IL-10 水平呈正相關(r分別為 0.517、0.363,P 均 <0.05),外周血Th2細胞與肺部IL-10 mRNA呈正相關(r=0.444,P <0.05)。

3 討論

小鼠背部皮下局部注射BLM,導致小鼠局部皮膚硬化并出現PF,產生自身抗體,且組織纖維化和自身抗體的產生與CD+4T細胞激活有關,這一模型很好地模擬了人類SSc-PF的主要特征[3]。本研究使用BLM在小鼠背部皮膚局部注射,與對照組比較,B、C組小鼠皮膚明顯增厚,HYP、皮膚炎癥明顯增多;且B組小鼠出現肺部結構明顯破壞,肺泡、肺間質和支氣管壁纖維不同程度增厚,肺部炎癥和纖維化評分、HYP較A、C組明顯增多。提示造模后小鼠皮膚和肺部出現炎癥與纖維化病變特征,成功再現了SSc繼發性PF的模型。隨著皮膚厚度和炎癥加重,肺部炎癥和纖維化程度也越來越重。

PF是由多種病因引起的慢性、間歇性和廣泛的肺部疾病,其主要病理特點是彌漫性肺泡炎,肺間質纖維細胞增殖,大量細胞外基質積聚,肺泡結構紊亂和PF[6]。T細胞在PF發病機制中起到重要作用。一些研究表明,Th2細胞及其細胞因子對于PF起主要調節作用。Th2細胞及其細胞因子促進肺、皮膚等多種器官的纖維母細胞滋生和細胞外基質產生,加強膠原蛋白、纖連蛋白及肌腱蛋白的合成等[2];此外,IL-4還是成纖維母細胞強有力的趨化因子。有實驗表明,抗氧化轉錄因子Nrf2通過調節肺氧化水平和轉移Th1/Th2細胞間的平衡誘導Th1細胞反應,可以防止BLM致PF[7]。本研究發顯示,與A組比較,B組小鼠外周血和肺部CD+4IL-4+Th2細胞數明顯增多,且與肺部炎癥評分、肺部HYP含量呈正相關,提示Th2細胞參與SSc-PF的發病,可能在PF病變中起促進作用。另外,有研究顯示Th2細胞通過促進成纖維細胞活化、增生,使膠原蛋白合成增加,并且能夠抑制其降解,導致基質蛋白沉積和纖維組織生成,最終形成纖維化[7]。

本研究顯示,B、C組小鼠肺部IL-10 mRNA和B組外周血IL-10水平較A組明顯增高,且肺部IL-10 mRNA表達量、血清IL-10水平與肺部炎癥與纖維化評分、肺部 HYP 顯著正相關。Barbarin 等[8,9]在PF小鼠模型中發現過度表達的IL-10可加重肺纖維化,且IL-10通過激活Th2型細胞因子,增加IL-4、IL-13等表達,促進PF形成[10]。動物實驗研究也證實,IL-10可能通過CCL2/CCR2軸促使纖維細胞聚集和巨噬細胞活化最終導致PF[11]。最近研究表明,IL-10 主要通過上調 TGF-β1、IL-4、IL-13 等表達參與PF發病,這些都提示IL-10在SSc-PF中扮演重要角色。在Th0細胞分化過程中,IL-10可抑制Th0細胞向Th1細胞分化,誘導其向Th2細胞分化,且Th2也能產生IL-10。本研究發現,Th2與IL-10呈正相關,推測IL-10的增高可能與Th2增高有關,兩者在SSc-PF發病中可能起促進作用。

總之,Th2細胞和IL-10在SSc-PF小鼠模型外周血、肺組織表達增高,且與肺部炎癥和纖維化呈正相關,兩者可能促進SSc-PF發病,抑制Th2細胞及其相關的細胞因子將有可能成為未來治療SSc-PF的靶點。

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