李彩霞 徐元品 鄒子宏 周曉鴻 (云南省昆明市延安醫院皮膚科,昆明 650051)
麻風病是由麻風分枝桿菌引起,主要累及皮膚和外周神經,是導致人類畸殘的一種重要疾病。在與傳染性麻風患者同等接觸的條件下,只有極個別人發病,夫妻間的發病率也僅為3% ~5%,這是因為麻風病是一種與機體免疫力有關的疾病,大多數健康成人對麻風桿菌有著自然的免疫力。目前對麻風病的發生、發展及發生麻風反應的確切機制仍不清楚,但普遍認為與機體的免疫狀態有關,尤其是細胞免疫在麻風的發病過程中起著重要作用。CD4+CD25+Foxp3+調節性T細胞(Treg)是一類特定亞群的CD4+T細胞,具有免疫調節作用,能通過抑制自身免疫細胞活化而發揮抑制作用。目前,關于麻風患者外周血Treg的研究較少,為此,我們通過檢測麻風病患者外周血中CD4+CD25+Foxp3+/CD4+,以探討其在麻風病發病中的作用。
1.1 實驗分組 治愈組:26例,來源于楚雄州雙柏縣麻風村,均為已治愈的麻風患者[1]。其中男18例,女8例,年齡46~82歲,平均(66.31~10.36)歲;病程 20~65年,平均(47.5±12.76)年;停藥15~54年,平均(40.12±12.06)年。
現癥組:51例,來源于昆明醫科大學第二附屬醫院皮膚科門診、云南昆明市晉寧縣皮膚病防治站、昆明市西山區疾病預防控制中心及昆明市官渡區疾病預防控制中心。其中男38例,女13例,年齡21~68歲,平均(41±12.32)歲,病程 2~20個月,平均(31±30.49)個月;治療時間:1~52個月,平均(19.56 ±10.16)個月。
ENL組:5例,來源于昆明醫科大學第二附屬醫院皮膚科門診,其中男4例,女1例,年齡26~38歲,平均33.2±5.45歲,病程1 ~6個月,平均(3±2)月;治療時間:1~6個月,平均(3±2)個月。
健康對照組:56例,為本院健康體檢人群,其中男31例,女 25例,年齡 25.12~36.25歲,平均(33.2±7.1)歲。血清學及肝腎功能檢查正常,排除感染結核、HBV、HCV、麻風、HIV、患自身免疫系統疾病及腫瘤的人群。
1.2 主要儀器和試劑 熒光素標記的抗體:PerCP標記的抗人CD4抗體、FITC標記的抗人CD25抗體、PE標記的抗人Foxp3抗體及其同型對照FITC-mouse IgG1、PE-mouse IgG1、Human Foxp3 Buffer Set以及緩沖液 Stain Buffer(FBS),購自美國 Becton-Dickinson(B-D)公司。人淋巴細胞分離液 MD-LS-077購自天津美德太平洋科技有限公司。流式細胞儀為Beckman Coulter公司生產的Epics XL型。
1.3 方法 取一流式試管,加入 FITC anti-human CD4/PE,anti-human CD25mAb/AF647,anti-human CD127各2μl,再加100μl新鮮肝素抗凝血,混勻,避光孵育20分鐘,然后加入1 ml溶血素溶血,避光放置5分鐘,以2 ml 1×PBS洗滌2次,上流式細胞儀進行檢測。用FCSExpressV3軟件分析和檢測CD4+T淋巴細胞中CD4+CD25+Foxp3+T/CD4+的百分率。
1.4 統計學分析 數據采用SPSS19.0軟件包進行統計學分析。兩組計量資料符合正態分布及方差齊性者,采用獨立樣本t檢驗進行分析;如方差不齊,則采用t'檢驗。多組計量資料間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LDS檢驗,P<0.05認為有統計學意義。結果以±s表示。
2.1 麻風治愈組和現癥組的Treg比正常對照組高,并且治愈組的Treg又高于現癥組,而ENL組的Treg則低于正常對照組,見表1。
2.2 在現病癥病人中,少菌型及多菌型麻風患者的Treg均高于正常對照組,并且少菌型患者的Treg高于多菌型患者(P<0.05),見表2。

表1 Treg在各組人群的百分比Tab.1 The proportion of Treg among each group

表2 現癥麻風患者中少菌型(PB)及多菌型患者(MB)Treg的百分比Tab.2 The proportion of Treg among MB and PB leprosy
目前普遍認同麻風病是一種與機體免疫功能有關的傳染病,其很多損害并不是由麻風桿菌直接引起,而是由于該菌所誘發的宿主免疫應答所致。自1995 年 Sakaguchi[1]首次報道 CD4+CD25+調節性 T細胞(T regulatory cells,Treg)以來,該群細胞受到了廣泛的關注。Treg是體內存在的一群具有免疫調節作用的T細胞亞群,具有免疫無反應性和免疫抑制性兩大特征,在維持免疫系統穩態及免疫耐受方面起著重要作用。Foxp3即叉頭狀/翅膀狀螺旋轉錄因子,是Treg細胞特異性的分子標記,主要作用是抑制轉錄,決定了Treg細胞的免疫抑制功能。其基因突變可引起類似于系統性自身免疫病的IPEX綜合征(X染色體性聯綜合癥),表現為全面的免疫功能失調[2]。關于Treg的作用機制尚存爭議,目前認為主要有以下幾種:細胞接觸依賴、分泌IL-10、IL-2、TGF-β等抑制性細胞因子,表達特異性轉錄因子等[3-9]。
本實驗中,麻風治愈組和現癥組的Treg均比正常對照組高,并且治愈組的Treg又高于現癥組,而ENL組的Treg則低于正常對照組。機體在麻風桿菌的刺激下發生免疫應答,促進了Treg不同程度的分化與增殖,產生了較多的Treg,尤其對于現癥少菌型和已治愈的麻風患者而言,Treg的數量增加更為明顯,這與Attia[10]報道的結果相一致。一方面,增多的Treg通過抑制T細胞的活化、增殖及抑制其效應功能,使機體避免過強的免疫應答對自身組織的損傷,對免疫功能起著一定的保護作用。另一方面,Treg對機體的免疫功能起著抑制作用,這將削弱機體的免疫功能,使機體罹患麻風病的可能性增加。
對于已經治愈的麻風患者來說,雖然臨床癥狀完全消失,連續細菌檢查為陰性,但Treg仍保持在較高水平,抑制了機體的免疫反應,使治愈患者對麻風桿菌仍然存在著易感性,這可能是導致麻風病復發的原因之一,鄭碧忠[11]的研究也證實了這一點。
在麻風病漫長的病程中,由于機體免疫狀態的改變而突然發生病情活躍或加劇的現象,稱為麻風反應。結果表明,發生Ⅱ型麻風反應的患者(ENL組),其Treg明顯低于正常對照組。這可能是由于麻風患者機體的免疫力及微環境在不斷地發生變化,某些因素使Treg的數量急劇減少,導致機體的免疫狀態突然發生改變,從而引發了麻風反應。
總之,在以細胞免疫為主的麻風免疫過程中,Treg不僅能抑制自身免疫性疾病的發生發展,而且還參與誘導免疫耐受及免疫調節,決定了免疫反應的走向是激活免疫還是誘導耐受,對維持麻風患者機體內環境的自穩狀態起著重要作用。隨著對Treg細胞研究的不斷深入,用Treg細胞為靶點的新型免疫調控治療策略已成為研究的熱點[12-18]。檢測Treg的數量是否有助于麻風病的早期診斷?對麻風患者Treg細胞數量與功能進行調整是否有助于麻風病的治療?增強麻風易感人群T細胞的功能是否有助于預防麻風菌感染或防止麻風病復發?Treg是否通過某種信號途徑來調節麻風病的慢性過程?對于這些問題還有待于進一步深入研究。
1 Sakaguchi S,Sakaguchi N,Asano M et al.Immunologic self-tolerancemaintained by activated T cells expressing IL-2 receptorα-chains(CD25).Breakdown of a single mechanism of self-tolerance causes various autoimmune diseases [J]. Immunol,1995;155(3):1151-1164.
2 Paust S,Lu L,McCarty N etal.Engagementof B7 on effector T cells by regulatory T cells prevents autoimmune disease[J].Proc Natl Acad Sci USA,2004;101(28):10398-10403.
3 Alca?s A,Alter A,Antoni G et al.Stepwise replication identifies a low-producing lymphotoxin-alpha allele as amajor risk factor for earlyonset leprosy[J].Nat Genet,2007;39(4):517-522.
4 Fontenot JD,Gavin M A,Rudensky A Y.Foxp3 programs the development and function of CD4+CD25+regulatory T cells[J].Nat Immunol,2003;4(4):330-336.
5 Zheng S G,Wang JH,Stohl W et al.TGF-beta requires CTLA-4 early after T cell activation to induce Foxp3 and generate adaptive CD4+CD25+regulatory cells[J].J Immunol,2006;176(6):3321-3329.
6 Sakaguchi S,Ono M,Setoguchi R et al.Foxp3+CD25+CD4+natural regulatory T cells in dominant self-tolerance and autoimmune disease[J].Immunol Rev,2006;2127-2128.
7 Kim JM,Rudensky A.The role of the transcription factor Foxp3 in the development of regulatory T cells[J].Immunol Rev,2006;212:86-98.
8 吳 奎,畢玉田,王耀麗etal.Foxp3基因轉染對人CD4+CD25+T細胞表型和功能的影響[J].第三軍醫大學學報,2008;30(3):186-188.
9 Chen TC,Cobbold S P,Fairchild P J et al.Generation of anergic and regulatory T cells following prolonged exposure to a harmlessantigen [J].Immunol,2004;172(10):5900-5907
10 Attia E A,Abdallah M,Saad A A etal.Circulating CD4+CD25highFoxp3+T cells vary in different clinical forms of leprosy[J].Int J Dermatol,2010;49(10):1152-1158.
11 鄭碧忠,高錦程,虞海燕 et al.麻風病患者治愈后血清sIL-2R和TNFα 的研究[J].中國免疫學雜志,2003;19(7):576-578.
12 Sakaguchi S,Powrie F.Emerging challenges in regulatory T cell function and biology[J].Science,2007;317(5838):627-629.
13 Betts G J,Clarke S L,Richards H E et al.Regulating the immune response to tumors[J].Adv Drug Deliv Rev,2006;58(8):948-961.
14 Nagai H,Horikawa T,Hara I et al.In vivo elimination of CD25+regulatory T cells leads to tumor rejection of B16F10 melanoma,when combined with interleukin-12 gene transfer[J].Exp Dermatol,2004;13(10):613-620.
15 Nair S,Boczkowski D,Fassnacht M et al.Vaccination against the forkhead family transcription factor Foxp3 enhances tumor immunity[J].Cancer Res,2007;67(1):371-380.
16 Chen A,Liu S,Park D et al.Depleting intratumoral CD4+CD25+regulatory T cells via FasL protein transfer enhances the therapeutic efficacy of adoptive T cell transfer[J].Cancer Res,2007;67(3):1291-1298.
17 Ghiringhelli F,Menard C,Puig P E et al.Metronomic cyclophosphamide regimen selectively depletes CD4+CD25+regulatory T cells and restores T and NK effector functions in end stage cancer patients[J].Cancer Immunol Immunother,2007;56(5):641-648.
18 Sutmuller R P,den Brok M H,Kramer M etal.Toll-like receptor2 controls expansion and function of regulatory T cells[J].JClin Invest,2006;116(2):485-494.