袁新華,王紅麗,鄧慶先
新生兒發生腦白質損傷受多種因素的影響,但其主要原因是圍生期宮內感染。宮內感染易引起早產,早產兒的主要病理變化為腦白質損傷。研究證實,早期干預可以促進宮內感染致腦損傷仔鼠的神經行為學的改善。
神經黏附分子NB-3是近年發現的黏附分子,屬于免疫球蛋白超家族的Contactin亞家族,集中表達于神經系統,主要表達在神經元的胞體和軸突中[1]。它對中樞和周圍神經元都有作用,可以促神經元黏附以及調節軸突生長;不僅具有軸突導向作用,還可以促進突觸重塑;可以通過促進少突膠質細胞的成熟,進而促進有髓神經纖維髓鞘的形成。本研究探討宮內感染對腦損傷仔鼠腦組織NB-3的表達及其運動功能的影響。
清潔級成熟Wistar大鼠90只,其中雌性大鼠60只,雄性大鼠30只,體重220~300 g,由佳木斯大學醫學院運動實驗室提供;脂多糖(LPS,血清型055:B5):美國SIGMA公司;SABC免疫組化試劑盒、抗神經細胞NB-3特定蛋白抗體:北京博奧森生物工程有限公司。
動物室溫(21±1)℃常規飼養、自由飲食,明暗周期各半。環境適應2周后,于17:00以2∶1(雌∶雄)合籠,次日8:00查陰道涂片,以查得精子為妊娠第0天,孕鼠另籠飼養。孕17 d大鼠予0.1 mg/ml脂多糖380 μg/kg腹腔注射,共2 d;或予等量生理鹽水。孕22 d前分娩的仔鼠為早產鼠,去除。仔鼠出生后,取胎盤行HE染色,觀察宮內感染情況,判斷標準為大量中性粒細胞浸潤。隨機選取脂多糖組仔鼠85只,分為干預組(n=40)和非干預組(n=40);隨機選取生理鹽水組仔鼠40只為對照組。干預組給予豐富康復訓練,對照組和非干預組常規飼養,不給任何干預。1日齡生理鹽水組、脂多糖組各5只取腦組織做病理檢測。1日、7日、14日、21日、28日齡對照組、干預組、非干預組各8只。
1.3.1 早期觸摸 將2日齡干預組仔鼠托至掌心,用毛刷從頭到尾均勻有力刷動,注意不要用力過大,以免產生疼痛。每次20 min,每日1次。同時給予不同強度及頻率的聲音和燈光刺激干預至2周齡。
1.3.2 康復訓練 由于小鼠出生后2周開始睜眼,于15日齡開始給予豐富康復訓練。①豐富環境:每日暴露于豐富環境中2 h,上、下午各1 h。在60×45×45 cm籠內放置不同顏色及形狀的物體,包括轉盤、管道、階梯、搖鈴、秋千、斜坡、杠桿以及不同顏色和大小的圓球等,每周將環境改變2次,以造成新異刺激,第28日齡結束刺激。非干預組和對照組分別飼養于20×30×30 cm標準籠內,不予干預。②平衡木訓練:平衡木長170 cm,寬2 cm,平放距地面7 cm處,讓仔鼠在上面行走,10 min/次。③轉棒訓練:轉棒長150 cm,直徑4.5 cm;中點固定于3 r/min轉動器上,順、逆時針交替轉動,10 min/次。以上每種干預方法至少間隔1 h。
對14日齡、28日齡的仔鼠進行懸吊試驗。在自然光的安靜房間內,使仔鼠前肢抓住距離桌面45 cm的水平玻璃棒(直徑0.5 cm),記錄仔鼠從抓握至掉下的時間。評分標準為:1分:<10 s;2分:10~30 s;3分:30 s~2 min;4分:2~5 min;5分:≥5 min。
不同日齡仔鼠麻醉下從心耳部位進行灌洗后,迅速斷頭、取腦,將完整大腦置于中性甲醛溶液中固定。各例石蠟包埋組織均取5 μm切片6張,5張行NB-3免疫組化染色,1張用PBS代替一抗作陰性對照。采用SABC法進行組化染色。
光鏡(40×10)下NB-3陽性細胞胞體和軸突周圍為棕黃色。每個大鼠取6張切片,40×物鏡下每個切片取相互不重疊的4個視野,應用Image Pro Plus 4.5圖像分析軟件計算NB-3免疫陽性細胞積分光密度(IOD)。
注射脂多糖后,孕鼠的活動、進食均減少,3只提前分娩,5只死亡,其余37只順利生產,共娩出足月活產仔鼠225只,死產仔鼠35只。脂多糖組仔鼠身體顏色青紫、精神萎靡、進食減少、行動遲緩、活動減少、體重低。生理鹽水組孕鼠無異常反應,共娩出足月活產鼠120只,足月仔鼠出生后身體顏色淡紅,反應靈敏,體重正常。
脂多糖組孕鼠胎盤可見血管充血、水腫,大量中性粒細胞浸潤。生理鹽水組孕鼠胎盤未見明顯炎癥反應。
脂多糖組新生仔鼠腦組織HE染色可見白質、胼胝體、內囊部位組織疏松,膠質細胞聚集,囊間少突膠質細胞減少,腦室內出血、腦白質內血管擴張充血、腦白質內毛細血管破裂出血。對照組新生仔鼠腦組織HE染色可見白質結構完整,布局有序,核淡,核仁清楚。
14日齡時,與對照組相比,非干預組仔鼠反應遲鈍、活動減少、平衡性差、肌力差、肌張力高,懸吊時肢體自主活動明顯減少,下肢顫抖增多,懸吊持續時間短,測試得分明顯降低(P<0.01);對照組測試得分明顯優于干預組(P<0.01);干預組測試得分優于非干預組(P<0.05)。28日齡時,干預組懸吊時間與對照組接近,測試得分無顯著性差異(P>0.05)。見表1。
1日齡干預組和非干預組NB-3陽性細胞IOD無顯著性差異(P>0.05),其他日齡對照組和非干預組NB-3陽性細胞密度值較干預組低。見表2。

表1 各組仔鼠懸吊試驗評分

表2 各組仔鼠腦組織NB-3陽性細胞表達(IOD)
大腦的發育過程十分復雜,并且具有其獨特的敏感時期。因此,發育中的大腦比成年大腦更容易受到傷害。在發育敏感期內,機體內部或者外部因素的影響都可能使大腦的發育過程推遲或終止。但中樞神經損傷后具有一定程度的可塑性,可塑性與動物物種、年齡、損傷部位和程度、藥物作用、功能訓練和學習等因素密切相關。因此,尋找可塑性的分子證據對豐富可塑性理論具有重要意義。
豐富康復訓練由豐富環境和一般康復訓練組成,兩者共同作用可以使大腦功能達到最佳恢復狀態。研究證明,不同的康復手段會產生不同的康復效果。廣泛的皮質損傷可使腦組織結構和功能發生改變,對損傷區域的刺激可促進功能恢復。但單純增加力量的訓練并不能誘導腦組織重塑,必須配合技巧訓練[2]。研究顯示,簡單運動方式,如強迫性跑籠訓練僅可促進腦血管生成,而復雜技巧訓練如轉棒和雜技可增加腦皮層突觸數量[3-4]。現己證實,腦區所做任務的多少和任務的性質可以決定樹突分支的復雜性。
豐富康復訓練可以誘導腦缺血周邊區神經生長因子(NGF)、腦源性神經營養因子(BDNF)、轉化生長因子(TGF)、堿性成纖維細胞生長因子(bFGF)等神經營養因子的表達;神經營養因子不僅在中樞神經系統發育過程中對神經元的生存、分化、生長起作用,而且在腦損傷時對神經細胞具有重要的保護作用,并能促進神經細胞功能的恢復[4-5]。
本研究顯示,隨著日齡的增加,腦損傷仔鼠的運動功能均有所改善,早期干預可以進一步提高腦損傷鼠運動功能的恢復。
神經細胞黏附分子NB-3是近年發現的黏附分子,也被稱為contactin-6,是一個糖基磷脂酰肌醇相連的免疫球蛋白超家族的contactin細胞亞群的識別分子,并且明確地表達在神經系統,具有促進神經生長、分化的作用[1,6-7]。Takeda等研究發現,無論NB-3以可溶性形式還是以底物形式存在,都具有促神經元軸突生長的作用,并與NB-3的量成正比關系[8]。Cui等發現,NB-3的表達與少突膠質細胞的發育是一致的,并且可以通過一系列機制促進少突膠質細胞的分化及成熟[9]。NB-3在包括小腦在內的腦的大部分區域都有表達,它的表達在出生后突然增高,并且在小鼠出生后第7天達到高峰,第2~3周進入平臺期,這時神經系統的發育已進入最后階段[6,8]。
本研究顯示,1日齡脂多糖組小鼠NB-3表達較生理鹽水組高,7日齡各組總體表達較1日齡高,14日齡較7日齡低,28日齡更低,這與Lee等的研究結果一致。相同時間段上,干預組較非干預組和對照組腦組織NB-3的表達高。提示,隨著年齡的增長,NB-3的表達增高;早期干預可以進一步提高NB-3的表達,在達到高峰后有所下降,并維持在一定水平上。
本研究顯示,早期干預不僅可以改善腦損傷仔鼠的運動功能,還可以提高神經黏附分子NB-3的表達。由于NB-3具有促神經元黏附及軸突導向作用,在中樞神經系統的損傷修復方面具有一定的意義。早期干預對宮內感染致腦損傷鼠的運動功能的提高,機制之一可能是由于通過提高NB-3的表達來實現的。
我們推測,能誘導NB-3表達增加的因素可能促進腦損傷后神經細胞的修復。神經黏附分子NB-3的表達可能是環境刺激影響發育期腦損傷修復的機制之一。
[1]Ogawa J,Kaneko H,Masuda T,et al.Novel neural adhesion molecules in the Contactin/F3 subgroup of the immunoglobulin superfamily:isolation and characterization of cDNAs from rat brain[J].Neurosci Lett,1996,218(3):173-176.
[2]Studenski S,Carlson MC,Fillit H,et al.From bedside to bench:does mental and physical activity promote cognitive vitality in late life?[J].Sci Aging Knowledge Environ,2006,28:21-23.
[3]Adlard PA,Perreau VM,Pop V,et al.Voluntary exercise decreases amyloid load in a transgenic model of Alzheimer's disease[J].J Neurosci,2005,25:4217-4221.
[4]Kleim JA,Jones TA,Schallert T.Motor enrichment and the induction of plasticity before or after brain injury[J].Neurochem Res,2003,28:1757-1769.
[5]Ding Y,Li J,Clark J,et al.Synaptic plasticity in thalamic nuclei enhanced by motor skill training in rat with transient middle cerebral artery occlusion[J].Neurol Res,2003,25:189-194.
[6]Lee S,Takeda Y,Kawano H,et al.Expression and regulation of a gene encoding neural recognition molecule NB-3 of the contactin/F3 subgroup in mouse brain[J].Gene,2000,245(2):253-266.
[7]Kunie S,Toyoshima M,Takeda Y,et al.Synaptic formation in subsets of glutamatergic terminals in the mouse hippocampal formation is affected by a deficiency in the neural cell recognition molecule NB-3[J].Neurosci Lett,2010,473(2):102-106.
[8]Takeda Y,Akasaka K,Lee S,et al.Impaired motor coordination in mice lacking neural recognition molecule NB-3 of the contactin/F3 subgroup[J].J Neurobiol,2003,56(3):252-265.
[9]Cui XY,Hu QD,Tekaya M,et al.NB-3/Notch1 pathway via Deltex1 promotes neural progenitor cell differentiation into oligodendrocytes[J].J Biol Chem,2004,279(24):25858-25865.