王 霞, 劉金玲, 高 碩
(1.天津市血液中心,天津300110;2.天津市醫科大學總醫院,天津300052)
泌乳素(prolactin,PRL)是垂體前葉分泌的一種多肽類激素。PRL的正確檢測關系到臨床正確診斷、合理治療和預后的判斷。文獻報道[1-2]巨泌乳素(macroprolactin,MPRL)的存在是導致高PRL的重要原因之一。MPRL能被某些免疫檢測儀誤認為PRL報告給臨床,給高泌乳素血癥(hyperprolactinemia,HPRL)的診斷帶來很大干擾。如何排除干擾,提高PRL檢測的準確性已成為臨床和實驗室關注的重點。
目前,凝膠色譜層析(gel filtration chromatograpy,GFC)法被公認為檢測MPRL的金標準[3],但因檢測技術較復雜,檢測時間長且費用昂貴而不適合臨床常規篩查。相比較而言,聚乙二醇(polyethylene glycol,PEG)沉淀法經濟、簡便、易行。我們對PEG沉淀法與GFC法進行比較,初步探討PEG沉淀法檢測MPRL的可行性。
選自2009年1月至2010年1月就診于天津醫科大學總醫院婦產科及內分泌科的HPRL患者26例,均為女性,年齡18~46歲。所有標本經Bayer ACS180化學發光免疫分析儀測定血清PRL后,留取血清-70℃保存待檢,同時搜集該病例的臨床診斷及影像學資料,根據臨床診斷、影像學資料及實驗室檢測分為真性HPRL組(簡稱真泌組)11例及MPRL血癥組(簡稱巨泌組)15例。
1.凝膠色譜柱 規格1.6 cm×80 cm凝膠色譜柱購自天津嘉悅玻璃制品有限公司。
2.填充介質 Sephadex G100購自美國法瑪西亞生物有限公司。
3.組分定標 蘭葡聚糖(相對分子質量2.5×103),乙醇脫氫酶(相對分子質量150×103),牛血清白蛋白(相對分子質量66×103),碳酸酐酶(相對分子質量29×103),以上標準品均購自美國Sigma-aldrich公司。根據定標體積收集目標組分。
4.洗脫緩沖溶液配制 10 mmol/L Tris緩沖液(pH 值 7.4),含 10 mmol/L Tris、140 mmol/L NaCl、1.25 mmol/L CaCl2、0.5 mmol/L MgCl2及0.02%NaN3。使用前用0.4 μm 濾膜抽濾,4 ℃保存待用。
5.儀器 BS-100A型自動部分收集器及自動恒流泵均購自上海滬西分析儀器有限公司。UV-2501型紫外分光光度檢測儀購自日本島津公司。
6.標本預處理 血清自-70℃取出融化后平衡至室溫,混勻后2 000×g離心10 min,取血清中段,用0.2μm濾膜過濾,吸取血清待用。
7.GFC法上機分離參數 流速0.5 mL/min,上樣量1.0 mL。洗脫相為10 mmol/L Tris緩沖液(pH 值7.4)。
8.收集組分 每收集1.5 mL為一管,每份標本收集100管,經Bayer ACS180化學發光免疫分析儀檢測PRL濃度。將檢測結果錄入EXCEL表格并繪制PRL層析圖。
1.PRL檢測 Bayer ACS180化學發光免疫分析儀及其配套試劑均購自美國拜耳公司,高、中、低值質控品均購自美國伯樂公司。PRL檢測靈敏度為0.3 ng/mL,批內變異系數(CV)為2.5%~3.8%,批間 CV為3.6%~4.5%。
2.MPRL篩查 25%PEG(相對分子質量為6 000)購自北京鼎國生物技術有限公司,溶液4℃保存用作 MPRL的沉淀劑。AllegraTMCentrifuge超速冷凍離心機購自美國貝克曼公司。
3.MPRL篩查方法 每份血清取250μL,加等量的25%PEG溶液,充分混勻后室溫放置30 min,4℃ 2 000×g離心30 min,取上清液分別檢測PRL值。PRL測定回收率=[(PEG沉淀后PRL值×2)/PEG沉淀前PRL值]×100%,回收率≤40%提示該標本含有MPRL[4-6]。
采用SPSS11.5軟件進行統計處理。因數據呈偏態分布,故采用中位數(P2.5~P97.5)表示。多組數據比較采用Wilcoxon符號秩檢驗,組間比較采用非參數Kruskal-Wallis H檢驗,線性回歸分析采用Spearman相關系數。P<0.05為差異有統計學意義。
混合標準品分離結果見圖1。根據目標PRL相對分子質量大小,依據定標體積收集相應組分。MPRL血癥色譜分離結果見圖2,HPRL色譜分離結果見圖3。

圖1 GFC法混合標準品分離結果

圖2 GFC法分離MPRL血癥各組分PRL

圖3 GFC法分離HPRL各組分PRL
真泌組與巨泌組血清處理前總PRL濃度差異無統計學意義(P=0.113),而處理后真泌組明顯高于巨泌組(P<0.05),結果見表1。

表1 真泌組和巨泌組PEG處理前、后PRL濃度比較 (ng/mL)
采用GFC法與PEG沉淀法檢測真泌組和巨泌組單體PRL濃度差異無統計學意義(P<0.05),結果見表2。

表2 GFC法與PEG沉淀法檢測真泌組與巨泌組單體PRL濃度 (ng/mL)
GFC法與PEG沉淀法檢測真泌組與巨泌組單體PRL回收率差異無統計學意義(P>0.05),結果見表3。

表3 GFC法與PEG沉淀法檢測真泌組與巨泌組單體PRL回收率 (%)
PEG沉淀法與GFC法的相關性良好[相關系數(r)=0.844,P=0.000],見圖4。

圖4 GFC法與PEG沉淀法檢測單體PRL的相關性比較
垂體前葉嗜酸性細胞合成的PRL含有199個氨基酸,其中包括6個半胱氨酸。經GFC法確認,主要存在3種不同相對分子質量的PRL,即有活性的23×103的單體PRL、無或低生物活性而有免疫反應性的(45~60)×103的大PRL及>100×103的 MPRL。正常人血清中單體 PRL約占85%~95%,MPRL 僅約占1%[7]。
GFC法作為MPRL血癥經典的確證試驗,最大的優點是能很好的區分MPRL、大PRL及單體PRL,直接證明血清中MPRL的存在,并能通過色譜洗脫曲線峰下面積計算PRL各種分子形式的比例和含量。
本研究中真性HPRL患者與MPRL患者血清總PRL濃度在PEG處理前差異無統計學意義(P=0.113),表明MPRL血癥與真性HPRL在生化指標上很難區分,而PEG處理后真泌組明顯高于巨泌組(P<0.05),提示MPRL具有免疫反應性,對某些檢測系統免疫檢測造成干擾[8]。本研究利用GFC法證實的MPRL血癥與真性HPRL患者單體PRL比例不同,真性HPRL中單體PRL占46.12%~81.73%,MPRL血癥中單體 PRL僅占7.43%~35.95%,二者比較有明顯差異(P=0.000)。
本研究表明PEG沉淀法與GFC法具有良好的相關性(r=0.844,P=0.000),與Lucille 等[3]報道的研究結果相一致(r=0.80),且本研究結果也表明PEG沉淀法具有良好的穩定性。
Quinn等[9]報道在PRL增高患者中有25%存在MPRL,真性HPRL和MPRL血癥不能僅僅根據臨床表現區分。因此,正確診斷HPRL,避免不必要的檢查和不恰當的治療、隨訪,對PRL增高的患者進行篩查是有必要的。盡管GFC法是檢測MPRL的金標準[10],但由于技術復雜、檢測時間長、費用昂貴,限制了其在實驗室中的常規使用。本研究對PEG沉淀法與GFC法進行方法學比較,初步結果表明PEG法與GFC法具有良好的相關性,且簡便、易行。可考慮作為實驗室MPRL血癥的常規篩查方法。
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