黃燕,張贏予,王好,周艷芳,張國輝,芮濤
(江蘇大學附屬人民醫院心內科,江蘇鎮江212002)
糖尿病心肌病(diabetic cardiomyopathy,DCM)是糖尿病的常見并發癥,其臨床診斷是基于糖尿病患者獨立于冠心病、高血壓和乙醇性心肌病等出現心功能不全[1]。心肌纖維化是糖尿病心肌病發生發展過程中共同的、標志性的病理特征。心肌纖維化主要是心肌成纖維細胞合成細胞外基質蛋白增加,如Ⅰ型膠原蛋白(collagenⅠ),Ⅲ型膠原蛋白(collagen Ⅲ)[2]。微小RNA(microRNA)是由18~24個核苷酸組成的非編碼的小分子RNA,通過與靶mRNA的3'-UTR區域的互補配對結合而抑制靶mRNA的翻譯或促進該mRNA的降解從而降低目標蛋白的表達,進而發揮其生物學功能[3]。以往研究表明,miR-375直接調節胰腺β細胞胰島素的分泌,其表達與糖尿病的形成密切相關[4]。本研究旨在檢測糖尿病狀態下心肌成纖維細胞中miR-375的表達,同時探討miR-375在糖尿病心肌纖維化中的可能作用機制。
C57BL/6小鼠,2~4周齡,雌雄不限,由江蘇大學動物實驗中心提供。DMEM(高糖及低糖)購自美國Gibco公司;標準小牛血清購自美國Hyclone公司,胰酶購自美國Sigma公司;細胞RNA提取試劑盒,RNA反轉錄試劑盒,實時熒光定量 PCR試劑盒,小鼠 miR-375引物,RNU6B購自QIAGEN公司;小鼠miR375抑制劑(熒光素標記)購自上海吉瑪制藥技術有限公司;轉染試劑,無血清培養基購自Invitrogen公司;免疫組化試劑盒購自北京厚德生物科技有限公司;波形蛋白(vimentin)一抗購自武漢博士德生物工程有限公司。
1.2.1 原代心肌成纖維細胞的分離、培養及傳代脫頸法處死C57BL/6小鼠,75%乙醇消毒2次,無菌條件下取出心臟,將其剪成1 mm×1 mm×1 mm左右的組織塊,用無Ca2+-Mg2+的Hank's緩沖液清洗組織塊,0.08%胰酶加0.06%膠原酶37℃水浴消化,收集消化后的上清并用含20%血清的低糖(5 mmol/L)DMEM中和,直至組織塊變透明終止消化。將收集的細胞離心重懸,接種至10 cm2細胞培養皿,37℃ 5%CO2培養箱內培養2 h,差速貼壁法除去未貼壁的其他細胞,用含10%小牛血清的低糖DMEM培養基培養心肌成纖維細胞。當細胞長滿至培養皿的70%~80%時,用0.25%胰酶消化按1∶2的比例進行傳代。
1.2.2 心肌成纖維細胞形態學觀察及鑒定 倒置顯微鏡下觀察第2代心肌成纖維細胞的形態。取第2代的心肌成纖維細胞采用免疫組化法進行波形蛋白鑒定,波形蛋白陽性率作為心肌成纖維細胞純度鑒定的指標,陰性對照用PBS代替一抗。400倍顯微鏡下隨機選取5個視野計數20~30個細胞,計算波形蛋白陽性細胞的比例。
1.2.3 實時定量PCR檢測心肌成纖維細胞中miR-375的表達 心肌成纖維細胞分為2組,即對照組和高糖處理組,對照組采用5 mmol/L葡萄糖的DMEM培養,高糖處理組采用25 mmol/L葡萄糖的DMEM培養。利用細胞RNA提取試劑盒提取總RNA,DEPC水溶解獲得的RNA,核酸蛋白分析儀(Beckman Coulter,USA)檢測 RNA濃度及純度;RNA反轉錄試劑盒將細胞總RNA反轉錄成cDNA;構建miR-375和RNU6B的實時定量PCR反應體系(20 μL):實時定量PCR 混合試劑10 μL、通用引物2 μL、去核糖核酸酶水 4 μL、小鼠 miR-375 引物2 μL、cDNA 模板2 μL;反應條件:95 ℃變性15 min,94 ℃ 15 s、55 ℃ 30 s、70 ℃ 30 s,共 40 個循環,每個樣本均作復管PCR反應,至少重復2次(實時定量PCR儀采用Bio-rad CFX96)。采用RNU6B作為內參照,用RNU6B的拷貝數作為校正基數,通過Light Cycler軟件直接獲得各個樣本中miR-375的ΔCt值;以對照組的 ΔCt值作為校正,得出 - ΔΔCt,按目的基因表達量 =2-ΔΔCt公式計算各個樣本中miR-375的相對表達量。
1.2.4 miR-375抑制劑轉染心肌成纖維細胞 在37℃、5%CO2孵育箱中,以含10%胎牛血清的高糖DMEM培養心肌成纖維細胞。轉染前以胰酶消化心肌成纖維細胞,計數后,以105/mL接種于6孔板中,待細胞的融合率達到80%左右時,換為不含血清的高糖DMEM培養液,饑餓細胞6 h,按照說明書轉染細胞,陰性對照組轉染miR-375抑制劑陰性對照。轉染6 h后,換為含10%胎牛血清的高糖DMEM培養液,培養48 h后采用實時定量PCR方法檢測細胞轉染效率。
1.2.5 免疫組化檢測各組心肌成纖維細胞Ⅰ型膠原蛋白的表達 心肌成纖維細胞按105/mL接種于置有無菌蓋玻片的6孔板內進行細胞爬片,細胞貼壁后,用高糖培養基處理6 h,瞬時轉染miR-375抑制劑;轉染48 h后采用免疫組化試劑盒檢測Ⅰ型膠原蛋白的表達。操作步驟:PBS漂洗,3%H2O2-甲醛處理,PBS漂洗,血清封閉,一抗(1∶200,PBS稀釋)孵育過夜,PBS漂洗,二抗孵育,PBS漂洗,SABC孵育,PBS漂洗,DAB顯色,自來水沖洗,蘇木青復染,自來水沖洗,脫水、透明、封片、鏡檢。陰性對照用PBS代替一抗。200倍顯微鏡下隨機選取5個視野,每個視野計數20~30個細胞,計算Ⅰ型膠原蛋白陽性細胞的比例。
用SPSS 16.0統計軟件進行分析。數據采用均數±標準差(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析,進一步兩兩比較采用LSD-t檢驗,兩組比較采用t檢驗,P<0.05為差異有統計學意義。
在倒置顯微鏡下觀察,心肌成纖維細胞呈梭形,多角形,細胞質透明,細胞核大,呈橢圓形,常含有2~3個核。培養第2代的心肌成纖維細胞波形蛋白鑒定,心肌成纖維細胞胞質呈棕黃色,即表達陽性,非心肌成纖維細胞表達陰性,結果顯示心肌成纖維細胞純度達90%。見圖1。

圖1 免疫組化染色鑒定心肌成纖維細胞純度(×400)Fig 1 The purity of cardiac fibroblasts evaluated by immunohistochemical staining with vimentin
實時定量PCR方法檢測結果顯示,心肌成纖維細胞經高糖處理6,12,24 h后,miR-375表達增加(F=91.263,P<0.05),均顯著高于對照組(P均<0.05),見圖2。

圖2 實時定量PCR檢測miR-375的差異性表達Fig 2 The different expression of miR-375 in cardiac fibroblasts detected by qRT-PCR
熒光實時定量PCR檢測結果顯示,miR-375抑制劑轉染心肌成纖維細胞的效率約70%,見圖3。心肌成纖維細胞轉染48 h后用于實驗。

圖3 實時定量PCR檢測miR-375抑制劑轉染效率Fig 3 The transfection efficiency of miR-375 inhibitor detected by qRT-PCR
免疫組化Ⅰ型膠原蛋白陽性心肌成纖維細胞胞質呈棕褐色。Ⅰ型膠原蛋白陽性率=Ⅰ型膠原蛋白陽性細胞數/總細胞數×100%。免疫組化結果表明,miR-375抑制劑組的心肌成纖維細胞Ⅰ型膠原蛋白陽性表達率(37.84±3.34)%顯著低于miR-375抑制劑陰性對照組的(76.20±6.96)%,差異有統計學意義(t=5.346,P <0.05)。見圖4。

圖4 免疫組化染色檢測心肌成纖維細胞中Ⅰ型膠原蛋白的表達(×200)Fig 4 Expression of collagenⅠin cardiac fibroblasts evaluated by immunohistochemical staining
糖尿病心肌病是糖尿病的常見并發癥之一,也是導致糖尿病患者致殘率和致死率較高的主要原因。其發病機制至今未明,對該病的治療仍缺乏有效手段。心肌纖維化是糖尿病心肌病的病理性改變之一。心肌纖維化是心肌成纖維細胞合成細胞外基質蛋白,如Ⅰ型膠原蛋白﹑Ⅲ型膠原蛋白等增加,進而在心肌細胞間隙沉積,導致心室壁僵硬,順應性下降,影響心室的舒張和收縮功能,最終導致心力衰竭,甚至死亡。近年來,在探索心肌纖維化發生機制的過程中,微小RNA的作用引人關注。微小RNA是一類非編碼的小分子RNA,通過與靶mRNA特異性以堿基互補配對的方式結合,促進靶mRNA的降解或抑制該mRNA的翻譯而發揮其生物學功能[3]。微小RNA在許多生物學過程中發揮重要的調控作用,如細胞增殖、分化、凋亡、癌癥發生等。最近研究表明,微小RNA也參與調控心血管系統的發育和疾病發生過程。目前已經證明miR-133和miR-30通過靶向作用于結締組織生長因子,一種關鍵的促纖維化蛋白,而參與心肌纖維化的形成[5]。另外,也已證明在冠狀動脈結扎的心肌梗死小鼠模型中miR-29的表達下降與膠原蛋白的表達增加相關,所以被認為參與心肌纖維化[6]。Feng等[7]發現糖尿病心肌 miR-133表達下降導致糖尿病小鼠心肌肥厚。
本課題組前期通過微陣基因序列檢測分析,發現糖尿病小鼠的心肌有多個微小RNA的表達上調,其中包括 miR-375,miR-99a,miR-133a等。miR-375最初被發現在胰腺胰島中表達,調節胰島素的分泌和葡萄糖的代謝[8],影響胰腺α和β細胞的質量并參與胰腺癌的發展[8-10]。最近報道 miR-375與腫瘤的發展有關,其在一些惡性腫瘤中表達下調如肝癌、胃 癌[11-13],頭 頸 部 鱗 狀 細 胞 癌[14-15]、胰 腺癌[16]。但到目前為止,miR-375調節糖尿病心肌纖維化相關的蛋白表達,參與糖尿病心肌纖維化的發生和發展尚未見文獻報道。
本實驗通過體外培養C57BL/6小鼠的心肌成纖維細胞經高糖處理制成DCM模型,發現心肌成纖維細胞經高糖處理6,12,24 h后,miR-375的表達均顯著增加,這一研究結果表明糖尿病高血糖影響心肌成纖維細胞miR-375的表達;另外,高糖處理的心肌成纖維細胞在轉染miR-375抑制劑抑制miR-375表達后,胞質中Ⅰ型膠原蛋白的表達顯著降低,這提示,miR-375在糖尿病心肌纖維化中起一定的作用,其具體的作用機制尚不清楚?;谏镄畔⒐ぞ?,miR-375靶向作用于IL-33的3'-UTR,而新近研究報道IL-33具有抗纖維化的作用。因此,我們推測miR-375可能通過靶向作用于IL-33參與糖尿病心肌纖維化的發生發展。為研究miR-375在糖尿病心肌病心肌纖維化中的確切機制,需明確高血糖是否能導致心肌成纖維細胞IL-33的表達下調從而促進心肌纖維化的發生,以及IL-33mRNA 3-UTR是否為miR-375的靶標。
本研究結果提示miR-375在糖尿病心肌纖維化中起一定的作用,為探討糖尿病心肌病心肌纖維化發病機制提供了新的線索,對糖尿病心肌病心肌纖維化的治療提供了新的理論依據。
[1] Maya L,Villarreal FJ.Diagnostic approaches for diabetic cardiomyopathy and myocardial fibrosis[J].J Mol Cell Cardia,2010,48(3):524 -529.
[2] Ban CR,Twigg SM.Fibrosis in diabetes complications:Pathogenic mechanisms and circulating and urinary markers[J].Vasc Health Risk Manag,2008,4(3):575 -596.
[3] Fabian MR,Sonenberg N,Filipowicz W.Regulation of mRNA translation and stability by microRNAs[J].Annu Rev Biochem,2010,79:351 -379.
[4] Poy MN,Eliasson L,Krutzfeldt J,et al.A pancreatic islet-specific microRNA regulates insulin secretion[J].Nature,2004,432(7014):226 -239.
[5] Duisters RF,Tijsen AJ,Schroen B,et al.miR-133 and miR-30 regulate connective tissue growth factor:implications for a role of microRNAs in myocardial matrix remodeling[J].Circ Res,2009,104(2):170 -178.
[6] van Rooij E,Sutherland LB,Thatcher JE,et al.Dysregulation of microRNAs after myocardial infarction reveals a role of miR-29 in cardiac fibrosis[J].Proc Natl Acad Sci USA,2008,105(35):13027 -13032.
[7] Feng B,Chen S,George B,et al.miR133a regulates cardiomyocyte hypertrophy in diabetes[J].Diabetes Metab Res Rev,2010,26(1):40 -49.
[8] Poy MN,Hausser J,Trajkovski M,et al.miR-375 maintains normal pancreatic alpha-and beta-cell mass[J].Proc Natl Acad Sci USA,2009,106(14):5813 -5818.
[9] Kloosterman WP,Lagendijk AK,Ketting RF,et al.Targeted inhibition of miRNA maturation with morpholinos reveals a role for miR-375 in pancreatic islet development[J].PLoS Biol,2007,5(8):e203.
[10] Avnit-Sagi T,Kantorovich L,Kredo-Russo S,et al.The promoter of the pri-miR-375 gene directs expression selectively to the endocrine pancreas[J].PLoS One,2009,4(4):e5033.
[11] Tsukamoto Y,Nakada C,Noguchi T,et al.MicroRNA-375 is downregulated in gastric carcinomas and regulates cell survival by targeting PDK1 and 14-3-3zeta[J].Cancer Res,2010,70(6):2339 - 2349.
[12] Liu AM,Poon RT,Luk JM.MicroRNA-375 targets Hippo-signaling effector YAP in liver cancer and inhibits tumor properties[J].Biochem Biophys Res Commun,2010,394(3):623 -627.
[13] Ding L,Xu Y,Zhang W,et al.miR-375frequently downregulated in gastric cancer inhibits cell proliferation by targeting JAK2[J].Cell Res,2010,20(7):784 -793.
[14] Hui AB,Lenarduzzi M,Krushel T,et al.Comprehensive MicroRNA profiling for head and neck squamous cell carcinomas[J].Clin Cancer Res,2010,16(4):1129 -1139.
[15] Avissar M,Christensen BC,Kelsey KT,et al.MicroRNA expression ratio is predictive of head and neck squamous cell carcinoma[J].Clin Cancer Res,2009,15(8):2850-2855.
[16] Bloomston M,Frankel WL,Petrocca F,et al.MicroRNA expression patterns to differentiate pancreatic adenocarcinoma from normal pancreas and chronic pancreatitis[J].JAMA,2007,297(17):1901 -1908.