999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

鈍齒棒桿菌產(chǎn)乳酸與琥珀酸的代謝調(diào)控

2013-12-23 05:51:38陳小舉姜紹通李興江潘麗軍
食品科學(xué) 2013年11期
關(guān)鍵詞:途徑產(chǎn)量

陳小舉,姜紹通*,李興江,潘麗軍

(合肥工業(yè)大學(xué)農(nóng)產(chǎn)品加工研究院,生物與食品工程學(xué)院,安徽 合肥 230009)

乳酸和琥珀酸廣泛應(yīng)用于食品、化工和醫(yī)藥等產(chǎn)業(yè)[1-2]。隨著時(shí)代的發(fā)展,人類(lèi)越來(lái)越注重環(huán)境的保護(hù),生物可降解材料的制備也因此受到了極大的關(guān)注[3-4]。作為聚乳酸和聚琥珀酸丁二酯的合成前體,乳酸和琥珀酸的生產(chǎn)一直是研究的熱點(diǎn)。目前,主要通過(guò)化學(xué)方法制備琥珀酸,但化學(xué)法制備琥珀酸會(huì)對(duì)環(huán)境造成污染,使其廣泛應(yīng)用受到了限制[5]。近年來(lái),微生物轉(zhuǎn)化再生資源制備琥珀酸的方法倍受重視。通過(guò)微生物轉(zhuǎn)化可再生資源和CO2制備琥珀酸,不僅可以擺脫對(duì)石化原料的依賴(lài),而且還能開(kāi)辟利用溫室氣體CO2的新途徑。工業(yè)規(guī)模的微生物轉(zhuǎn)化可再生資源和CO2制備琥珀酸將成為一個(gè)最具發(fā)展?jié)摿Φ木G色工藝模式[6]。

本研究小組在前期的研究中發(fā)現(xiàn),將鈍齒棒桿菌(Corynebacterium crenatum)在厭氧環(huán)境下進(jìn)行培養(yǎng)時(shí)產(chǎn)生的代謝物為主要乳酸和琥珀酸。與乳酸相比,琥珀酸的產(chǎn)量較低,無(wú)法做到聯(lián)產(chǎn)乳酸和琥珀酸。在厭氧環(huán)境下,與C. crenatum基因同源性很高的谷氨酸棒桿菌(Corynebacterium glutamicum)主要利用兩種途徑生產(chǎn)琥珀酸(圖1):第一條途徑為C4途徑,即由磷酸烯醇式丙酮酸(PEP)到草酰乙酸,然后再通過(guò)TCA循環(huán)的還原途徑(由草酰乙酸經(jīng)蘋(píng)果酸、富馬酸到琥珀酸)產(chǎn)生琥珀酸;第二條途徑為乙醛酸循環(huán)[7]。其中,第一條途徑為生產(chǎn)琥珀酸的主要途徑,磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶(PEPC)是這個(gè)途徑中的關(guān)鍵酶,其酶活的高低對(duì)PEP節(jié)點(diǎn)處碳代謝流的分布有較大的影響。PEPC是一種羧化酶,可將PEP催化生成草酰乙酸,此反應(yīng)須固定一分子CO2。改變發(fā)酵體系中CO2的濃度及其供應(yīng)方式會(huì)對(duì)PEPC的活性和PEP節(jié)點(diǎn)處的代謝流分布產(chǎn)生影響,進(jìn)而實(shí)現(xiàn)調(diào)控羧化反應(yīng)下游產(chǎn)物的生成,如琥珀酸等[8]。鈍齒棒桿菌代謝模型中包括的生化反應(yīng)方程如表1所示。

圖 1 厭氧條件下鈍齒棒桿菌的代謝網(wǎng)絡(luò)Fig.1 Metabolic networks of C. crenatum under anaerobic conditions

通過(guò)向發(fā)酵體系中加入碳酸氫鈉,可以為C. crenatum提供羧化反應(yīng)所需的CO2,強(qiáng)化羧化反應(yīng)的進(jìn)行,進(jìn)而調(diào)節(jié)乳酸和琥珀酸的生成比,達(dá)到增加琥珀酸產(chǎn)量的目的及實(shí)現(xiàn)乳酸和琥珀酸的聯(lián)產(chǎn)。代謝通量分析是代謝工程研究中最重要的一種手段和方法[9]。本實(shí)驗(yàn)在代謝途徑分析及代謝通量計(jì)算的基礎(chǔ)上,調(diào)控C. crenatum細(xì)胞內(nèi)PEP節(jié)點(diǎn)處的代謝流分布,調(diào)節(jié)乳酸和琥珀酸的生成比,為利用C. crenatum轉(zhuǎn)化可再生資源聯(lián)產(chǎn)乳酸和琥珀酸提供數(shù)據(jù)支持。

表 1 鈍齒棒桿菌代謝模型中包括的生化反應(yīng)方程Table 1 Metabolic reactions in C. crenatum metabolic networks

1 材料與方法

1.1 菌株

Corynebacterium crenatum CICC20219 本實(shí)驗(yàn)室保藏。

1.2 培養(yǎng)基

種子培養(yǎng)基:葡萄糖40g/L、尿素2g/L、酵母提取物2g/L、酪蛋白氨基酸7g/L、(NH4)2SO47g/L、KH2PO40.5g/L、K2HPO40.5g/L、MgSO4·7H2O 0.5g/L、FeSO4·7H2O 6mg/L、MnSO4·H2O 4.2mg/L、生物素0.2mg/L、硫胺素0.2mg/L。

發(fā)酵培養(yǎng)基:葡萄糖48g/L、KH2PO40.5g/L、K2HPO40.5g/L、MgSO4·7H2O 0.5g/L、FeSO4·7H2O 6mg/L、MnSO4·H2O 4.2mg/L、生物素0.2mg/L、硫胺素0.2mg/L。加入NaHCO3,使?jié)舛确謩e為0、10、100、200mmol/L。

1.3 儀器與設(shè)備

ELSD 2424、UV 2996高效液相色譜系統(tǒng)、糖檢測(cè)色譜柱 美國(guó)Waters公司;有機(jī)酸檢測(cè)色譜柱 德國(guó)Merck公司;GA92-ⅡD超聲波細(xì)胞破碎機(jī) 無(wú)錫上佳生物技術(shù)公司。

1.4 培養(yǎng)方法

挑取單菌落C. crenatum接種于含30mL種子培養(yǎng)基的250mL搖瓶中,30℃、200r/min培養(yǎng)12h。然后以10%的接種量轉(zhuǎn)接于含1.5L種子培養(yǎng)基的3L發(fā)酵罐中,30℃、300r/min培養(yǎng)10h,通氣量為2.0L/(L·min),pH值為7.5,中和劑為5mol/L NaOH。然后5000r/min、4℃離心10min,去掉上清液收集菌體。將收集后的菌體接種于含1.5L發(fā)酵培養(yǎng)基的3L發(fā)酵罐中,使生物量為10g/L左右,通入氮?dú)猓掷m(xù)5min。然后密封發(fā)酵罐,30℃、150r/min厭氧發(fā)酵,pH值為7.2,中和劑為5mol/L NaOH。每組實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3次。

1.5 檢測(cè)方法

將發(fā)酵液樣品于4℃、10000r/min離心10min,取上清液用于糖、有機(jī)酸等物質(zhì)的分析。糖和有機(jī)酸均采用高效液相色譜法(HPLC)分析。糖檢測(cè)色譜柱為Carbohydrate Analysis (3.9mm×300mm),采用蒸發(fā)光檢測(cè)器ELSD2424,流動(dòng)相為75%乙腈,流速1.000mL/min。有機(jī)酸檢測(cè)色譜柱為Purospher STAR C18(250mm×4.6mm,5μm),采用紫外檢測(cè)器UV2996,流動(dòng)相為5mmol/L H2SO4,流速為1.000mL/min。每組數(shù)據(jù)測(cè)3次,實(shí)驗(yàn)誤差在5%以?xún)?nèi)。

1.6 生物量測(cè)定

生物量以O(shè)D610nm表示。細(xì)胞干質(zhì)量(DCW)采用恒質(zhì)量法測(cè)定[10]。

1.7 酶活力檢測(cè)

取1mL發(fā)酵培養(yǎng)菌懸液于4℃、10000r/min離心10min獲得菌體,用含15%甘油的Tris-HCl (50mmol/L,pH 7.5) 洗滌2次,使用超聲波細(xì)胞破碎機(jī)冰浴超聲90次(超聲2s/間隔5s),功率為200W。4℃、10000r/min冷凍離心15min,上清液即為原始粗酶液。

PEPC酶活力的檢測(cè)方法如文獻(xiàn)[11]所述。一個(gè)酶活力單位(1U)定義為每分鐘催化1μmol/L底物所需要的酶量,單位為U/mg。

1.8 蛋白質(zhì)含量檢測(cè)

總蛋白質(zhì)含量的測(cè)定采用Bradford法[12]。

1.9 代謝通量計(jì)算

代謝網(wǎng)路的建立:因?yàn)殛P(guān)于C. crenatum代謝網(wǎng)路的相關(guān)文獻(xiàn)資料鮮見(jiàn),尤其在厭氧條件下的代謝特征更無(wú)相關(guān)報(bào)道。因此,本實(shí)驗(yàn)參照與C. crenatum基因同源性高達(dá)99%的C. glutamicu的代謝網(wǎng)絡(luò)[7,13-14],構(gòu)建其代謝網(wǎng)絡(luò)模型,如圖1所示。

代謝流計(jì)算:在代謝流計(jì)算過(guò)程中,統(tǒng)一取發(fā)酵時(shí)間為1~3h時(shí)間段的發(fā)酵液進(jìn)行代謝分析。在此時(shí)間段內(nèi),其代謝產(chǎn)物的生成速率比較穩(wěn)定,而且這一部分時(shí)間內(nèi)的平均值與細(xì)胞總體發(fā)酵的平均值比較接近,各個(gè)發(fā)酵批次之間重現(xiàn)性好,所以統(tǒng)一考察該時(shí)間段變量。在代謝產(chǎn)物精確檢測(cè)的條件下,結(jié)合C. crenatum在厭氧條件下的主代謝途徑,能夠推測(cè)出其代謝過(guò)程,并且利用擬穩(wěn)態(tài)假設(shè)的方法,可以求出各個(gè)途徑的代謝通量。

化學(xué)計(jì)量平衡式列于附錄。節(jié)點(diǎn)數(shù)(變量)為27個(gè),方程數(shù)為22個(gè),方程自由度5,需要測(cè)定5個(gè)變量方可計(jì)算代謝網(wǎng)絡(luò)中的代謝流分布。在C. crenatum厭氧發(fā)酵條件下,本實(shí)驗(yàn)離線(xiàn)檢測(cè)胞外代謝物為葡萄糖、乳酸、琥珀酸、乙酸和丙酮酸。

2 結(jié)果與分析

2.1 NaHCO3對(duì)C. crenatum產(chǎn)酸的影響

本實(shí)驗(yàn)細(xì)致研究了NaHCO3對(duì)葡萄糖消耗速率、乳酸和琥珀酸生成速度及其產(chǎn)量的影響。由圖2和表2、3可以看出,厭氧條件下,NaHCO3的加入雖然沒(méi)有改變發(fā)酵體系中C. crenatum的細(xì)胞干質(zhì)量,卻對(duì)葡萄糖消耗速率產(chǎn)生了顯著的影響,結(jié)果顯示加入NaHCO3能明顯加快葡萄糖的消耗速率。當(dāng)NaHCO3濃度為100mmol/L時(shí),葡萄糖的消耗速率達(dá)到了69.14mmol/(L·h),與NaHCO3為0mmol/L時(shí)相比增加了130%。然而繼續(xù)增大NaHCO3的濃度,葡萄糖的消耗速率開(kāi)始略微下降。

表 2 NaHCO3對(duì)鈍齒棒桿菌產(chǎn)酸的影響Table 2 Effects of sodium bicarbonate on organic acids production by C. crenatum

乳酸與琥珀酸等有機(jī)酸的生成速率和最終產(chǎn)量在加入NaHCO3后也發(fā)生了明顯的變化,而乳酸和琥珀酸的總酸產(chǎn)量一直在1.9mol/mol(表示每消耗1mol葡萄糖所產(chǎn)生的有機(jī)酸物質(zhì)的量)左右,表明消耗的糖都被轉(zhuǎn)化為乳酸和琥珀酸。由于NaHCO3的加入加快了葡萄糖的消耗速率,有機(jī)酸的生成速率也隨之加快。當(dāng)NaHCO3濃度為100mmol/L時(shí),乳酸的生產(chǎn)速率達(dá)到最大,為100.88mmol/(L·h),是碳酸氫鈉濃度為0mmol/L時(shí)的1.86倍。同時(shí),乳酸的積累濃度也達(dá)到最大,為400mmol/L,與NaHCO3為0mmol/L時(shí)相比升高了84%,而乳酸產(chǎn)量卻由1.84mol/mol下降到1.48mol/mol。繼續(xù)增大碳酸氫鈉的濃度,乳酸的積累濃度開(kāi)始下降。與乳酸不同的是,隨著NaHCO3濃度的不斷增大,琥珀酸的生產(chǎn)速率也隨之越來(lái)越快。當(dāng)NaHCO3濃度為200mmol/L時(shí),琥珀酸的生產(chǎn)速率達(dá)到了30.51mmol/(L·h)。琥珀酸的最終積累濃度為128.05mmol/L,是NaHCO3為0mmol/L時(shí)的9.2倍,琥珀酸產(chǎn)量也由0.14mol/mol升高到0.49mol/mol。同時(shí),隨著NaHCO3濃度的不斷增大,發(fā)酵液中產(chǎn)生的琥珀酸與乳酸的物質(zhì)的量比也在不斷增大,由最初的0.08mol/mol上升到0.34mol/mol。結(jié)果表明,向發(fā)酵體系中加入NaHCO3可以調(diào)節(jié)乳酸和琥珀酸的產(chǎn)量,增加琥珀酸與乳酸的生成比,為最終實(shí)現(xiàn)乳酸與琥珀酸的聯(lián)產(chǎn)奠定了基礎(chǔ)。

表 3 不同NaHCO3濃度下葡萄糖消耗速率與有機(jī)酸產(chǎn)生速率Table 3 Glucose consumption rate and organic acids production rate in the presence or absence of sodium bicarbonate

圖 2 NaHCO3對(duì)鈍齒棒桿菌產(chǎn)酸的影響Fig.2 Effects of sodium bicarbonate on the yield of organic acids in C. crenatum

2.2 NaHCO3對(duì)C. crenatum代謝通量的影響

分析圖1的網(wǎng)絡(luò)代謝模型可以看出,C. crenatum主要利用兩條途徑產(chǎn)琥珀酸:C4途徑和乙醛酸循環(huán)。通過(guò)代謝流分析,研究在NaHCO3加入后細(xì)胞內(nèi)代謝通量的變化,能更深入的了解2種途徑在琥珀酸合成方面的作用,為進(jìn)一步提高琥珀酸產(chǎn)量提供更有力的理論依據(jù)。

研究發(fā)現(xiàn),加入NaHCO3能增加琥珀酸的產(chǎn)量。為了探尋NaHCO3改變C. crenatum細(xì)胞內(nèi)碳代謝流分布、增加琥珀酸產(chǎn)量的機(jī)理,本實(shí)驗(yàn)分析比較了C. crenatum在NaHCO3濃度為0mmol/L和100mmol/L時(shí)代謝通量的變化,并對(duì)計(jì)算結(jié)果進(jìn)行了歸一化處理,代謝通量數(shù)據(jù)單位為mmol/(L·g·h)。由于C. crenatum在厭氧情況下停止了生長(zhǎng),因此在代謝通量計(jì)算過(guò)程中忽略了生物質(zhì)的影響。

表 4 不同NaHCO3濃度下關(guān)鍵節(jié)點(diǎn)的代謝流變化Table 4 Metabolic flux rate of C. crenatum at key points in the presence or absence of sodium bicarbonate

圖 3 NaHCO3濃度為0mmol/L(a)和100mmol/L(b)時(shí)的鈍齒棒桿菌代謝通量分布Fig.3 Metabolic flux distribution in C. crenatum in the presence of 0 mmol/L and 100 mmol/L of sodium bicarbonate

由表4和圖3a、b可知,C. crenatum消耗的葡萄糖主要用于乳酸的生成,其次是琥珀酸。加入NaHCO3后,Glu-6-P節(jié)點(diǎn)處的代謝流分布發(fā)生了較大的變化。戊糖磷酸途徑(HMP)得到了加強(qiáng),代謝通量由9.7mmol/(L·g·h)增加到35.3mmol/(L·g·h)。理論上每消耗1mol葡萄糖可產(chǎn)生2mol琥珀酸,需要4mol NADH,而每摩爾葡萄糖經(jīng)由EMP途徑只產(chǎn)生2mol的NADH[15]。NADH的不足限制了C. crenatum利用C4途徑生產(chǎn)琥珀酸。因此,細(xì)胞在NADH不足的情況下強(qiáng)化了HMP途徑,使更多的碳源流向HMP途徑,因?yàn)槊磕柶咸烟墙?jīng)HMP途徑后再回到EMP途徑可多產(chǎn)生2mol的NADPH。多產(chǎn)生的NADPH又可以用于生成更多的琥珀酸。

PEP節(jié)點(diǎn)處的碳代謝流也重新進(jìn)行了分布。由PEP到丙酮酸(Pyr)的碳流量流減少18.9%,而流向草酰乙酸(OoA)的碳流量增加了2倍(表3),因此,丙酮酸下游代謝物通量(乳酸、乙酸)出現(xiàn)了不同程度的下降,但乳酸仍為主要產(chǎn)物。代謝通量計(jì)算結(jié)果表明(表4、圖3),C4途徑在產(chǎn)琥珀酸的過(guò)程中起主導(dǎo)作用,經(jīng)由C4途徑產(chǎn)生的琥珀酸占整個(gè)琥珀酸產(chǎn)量的96%。

PEPC是C. crenatum細(xì)胞內(nèi)的主要羧化酶,其催化的反應(yīng)過(guò)程需要CO2的參與。NaHCO3溶于水后會(huì)以CO2-HCO3-的形式存在,提高了溶液中的CO2濃度,可以使更多的CO2參與PEPC催化的羧化反應(yīng)。因此,CO2可利用濃度的高低會(huì)直接影響PEPC的酶活。有研究表明,利用Anaerobiospirillum succiniciproducens厭氧發(fā)酵產(chǎn)琥珀酸時(shí),提高發(fā)酵液中CO2的可利用濃度能增強(qiáng)磷酸烯醇式丙酮酸羧化激酶(PEPCK)的酶活,使更多的碳源流向C4途徑,增加琥珀酸產(chǎn)量[16]。為了驗(yàn)證是因?yàn)镹aHCO3的加入而導(dǎo)致PEPC酶活性的提高,進(jìn)而使PEP節(jié)點(diǎn)處的碳代謝流重新進(jìn)行了分布,并對(duì)PEPC的酶活進(jìn)行了測(cè)定。

由表4可知,加入NaHCO3后,PEPC的酶活力由0.956U/mg升高到1.242U/mg。增強(qiáng)的PEPC酶活可能打破了PEP節(jié)點(diǎn)處的代謝流平衡,并重新分配了此節(jié)點(diǎn)處的代謝流,而將更多的碳代謝流引向C4途徑,從而使細(xì)胞分泌更多的琥珀酸。其次,高酶活的PEPC可以將PEP快速地轉(zhuǎn)化為下游代謝物,減少細(xì)胞內(nèi)的PEP積累量。由于PEP會(huì)對(duì)磷酸果糖激酶產(chǎn)生反饋抑制,進(jìn)而影響糖酵解的速率[17],因此,NaHCO3的加入可以使PEP快速的轉(zhuǎn)化為下游產(chǎn)物,解除了PEP對(duì)對(duì)磷酸果糖激酶產(chǎn)生的反饋抑制,使糖酵解能順利的運(yùn)行下去。

3 結(jié) 論

本實(shí)驗(yàn)研究了NaHCO3對(duì)C. crenatum厭氧發(fā)酵產(chǎn)琥珀酸的影響,并對(duì)代謝流進(jìn)行了分析。NaHCO3溶解在發(fā)酵體系中可以為PEPC提供羧化反應(yīng)所需的CO2,因此添加不同濃度的NaHCO3會(huì)對(duì)PEP節(jié)點(diǎn)代謝流分布產(chǎn)生影響,進(jìn)而改變胞外代謝產(chǎn)物的積累濃度。加入NaHCO3能加快C. crenatum利用葡萄糖的消耗速率,提高PEPC的酶活,使PEP節(jié)點(diǎn)的碳代謝流分布發(fā)生變化,使更多的碳源流向C4途徑,增加琥珀酸的產(chǎn)量,增加乳酸和琥珀酸的生成比,為利用C. crenatum轉(zhuǎn)化可再生資源聯(lián)產(chǎn)乳酸和琥珀酸奠定了基礎(chǔ)。下一步將對(duì)C. crenatum厭氧發(fā)酵聯(lián)產(chǎn)乳酸和琥珀酸進(jìn)行發(fā)酵工藝優(yōu)化,循環(huán)利用C. crenatum菌體進(jìn)行多批次發(fā)酵,提高生成效率,降低生產(chǎn)成本。

[1] BEAUPREZ J J, de MEY M, SOETAERT W K. Microbial succinic acid production: natural versus metabolic engineered producers[J]. Process Biochemistry, 2010, 45(7): 1103-1114.

[2] HUANG L, JIN B, LANT P, et al. Biotechnological production of lactic acid production and potato wastewater treatment by Rhizopus arrhizus[J]. Journal of Chemical Technology and Biotechnology,2003, 78(8): 899-906.

[3] LI H, HE Q, WANG X, et al. Nanoscale-controlled enzymatic degradation of poly (L-lactic acid) films using dip-pen nanolithography[J]. Small, 2011, 7(2): 226-229.

[4] AURAS R A, LIM L T, SELKE S E M, et al. Poly (lactic acid): synthesis, structures, properties, processing, and applications[J]. Polymer Science & Technology General, 2010, DOI: 10.1002/9780470649848.

[5] CHOTANI G, DODGE T, HSU A, et al. The commercial production of chemicals using pathway engineering[J]. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Protein Structure and Molecular Enzymology, 2000, 1543(2): 434-455.

[6] LEE S Y, HONG S H, LEE S H, et al. Fermentative production of chemicals that can be used for polymer synthesis[J]. Macromolecular Bioscience, 2004, 4(3): 157-164.

[7] INUI M, MURAKAMI S, OKINO S, et al. Metabolic analysis of Corynebacterium glutamicum during lactate and succinate productions under oxygen deprivation conditions[J]. J Mol Microbiol Biotechnol, 2004, 7(4): 182-196.

[8] LU S, EITEMAN M A, ALTMAN E. Effect of CO2on succinate production in dual-phase Escherichia coli fermentations[J]. Journal of Biotechnology, 2009, 143(3): 213-223.

[9] CHEN X, ALONO A P, ALLEN D K, et al. Synergy between13C-metabolic flux analysis and flux balance analysis for understanding metabolic adaption to anaerobiosis in E. coli[J]. Metabolic Engineering, 2011, 13(1): 38-48.

[10] OKINO S, NOBURYU R, SUDA M, et al. An efficient succinic acid production process in a metabolically engineered Corynebacterium glutamicum strain[J]. Appl Microbiol Biotechnol, 2008. 81(3): 459-464.

[11] WU Hui, LI Zhimin, ZHOU Li, et al. Improved succinic acid production in the anaerobic culture of an Escherichia coli pflB ldhA double mutant as a result of enhanced anaplerotic sctivities in the preceding aerobic culture[J]. Applied and Environmental Microbiology, 2007, 73(24): 7837-7843.

[12] BRADFORD M M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of proteindye binding[J]. Analytical biochemistry, 1976, 72(1/2): 248-254.

[13] PARK S, SINSKEY A, STEPHANOPOULOS G. Metabolic and physiological studies of Corynebacterium glutamicum mutants[J]. Biotechnology and Bioengineering, 1997, 55(6): 864-879.

[14] KISS R D, STEPHANOPOULOS G. Metabolic characterization of a L-lysine-producing strain by continuous culture[J]. Biotechnology and Bioengineering, 1992, 39(5): 565-574.

[15] LI Jian, JIANG Min, CHEN Kequan, et al. Effect of redox potential regulation on succinic acid production by Actinobacillus succinogenes[J]. Bioprocess and Biosystems Engineering, 2010, 33(8): 911-920.

[16] SAMUELOV N, LAMED R, LOWE S, et al. Influence of CO2-HCO3-l evels and pH on growth, succinate production, and enzyme activities of Anaerobiospirillum succiniciproducens[J]. Applied and Environmental Microbiology, 1991, 57(10): 3013-3019.

[17] FRY B, ZHU T, DOMACH M M, et al. Characterization of growth and acid formation in a Bacillus subtilis pyruvate kinase mutant[J]. Applied and Environmental Microbiology, 2000, 66(9): 4045-4049.

猜你喜歡
途徑產(chǎn)量
2022年11月份我國(guó)鋅產(chǎn)量同比增長(zhǎng)2.9% 鉛產(chǎn)量同比增長(zhǎng)5.6%
提高玉米產(chǎn)量 膜下滴灌有效
世界致密油產(chǎn)量發(fā)展趨勢(shì)
海水稻產(chǎn)量測(cè)評(píng)平均產(chǎn)量逐年遞增
構(gòu)造等腰三角形的途徑
2018年我國(guó)主要水果產(chǎn)量按省(區(qū)、市)分布
多種途徑理解集合語(yǔ)言
減少運(yùn)算量的途徑
2018上半年我國(guó)PVC產(chǎn)量數(shù)據(jù)
聚氯乙烯(2018年9期)2018-02-18 01:11:34
醫(yī)保基金“可持續(xù)”的三條途徑
主站蜘蛛池模板: 国产欧美日韩视频怡春院| 国产91在线免费视频| 国产成人精品免费av| 91高清在线视频| 免费高清毛片| 天堂成人在线| 亚洲一区毛片| 天天色天天操综合网| 中文字幕人成人乱码亚洲电影| 国产精品亚洲αv天堂无码| 亚洲性网站| 午夜日本永久乱码免费播放片| 国产无码网站在线观看| AV网站中文| 亚洲精品大秀视频| 国产亚洲精品精品精品| 国产一级毛片高清完整视频版| 欧美色图久久| a色毛片免费视频| 四虎永久免费网站| 国产小视频免费观看| 欧美yw精品日本国产精品| 欧美无专区| 欧美日韩综合网| 久久久久久久97| 欧美亚洲国产精品第一页| 欧美中文字幕在线播放| 久久国产免费观看| 亚洲av无码久久无遮挡| 国产在线观看精品| 亚洲AV无码乱码在线观看代蜜桃| 日韩无码视频播放| 国产精品成人啪精品视频| 国产在线视频欧美亚综合| 高清无码不卡视频| 国产视频一二三区| 久久香蕉国产线看观看式| 国产乱人视频免费观看| 波多野结衣久久精品| 成人av专区精品无码国产| 色婷婷在线影院| 午夜视频www| 午夜无码一区二区三区| 一级黄色网站在线免费看| 国产精品播放| 国产乱子伦精品视频| 久久黄色小视频| 国产精品xxx| 风韵丰满熟妇啪啪区老熟熟女| 四虎影视永久在线精品| 国产精品成人AⅤ在线一二三四| 亚洲无码不卡网| 国产精品亚洲片在线va| 久久免费视频播放| 亚洲欧美国产高清va在线播放| yjizz视频最新网站在线| 一级毛片在线直接观看| 日本高清有码人妻| 亚洲成综合人影院在院播放| 日本手机在线视频| 婷婷午夜影院| 亚洲综合18p| 青青国产在线| 亚洲无卡视频| 午夜国产理论| 日本国产精品一区久久久| 亚洲丝袜中文字幕| 国产99视频精品免费观看9e| 国产精品免费露脸视频| 中文字幕2区| 国产不卡国语在线| 在线无码九区| 国产无码性爱一区二区三区| 免费看a级毛片| 久久窝窝国产精品午夜看片| 久久精品视频亚洲| 亚洲无线一二三四区男男| 亚洲一级无毛片无码在线免费视频| 99久久精品国产麻豆婷婷| 欧美a在线看| 91外围女在线观看| 色婷婷综合激情视频免费看|