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脫細胞角膜基質制備方法研究進展

2013-12-29 00:00:00周鑫
科技資訊 2013年10期

摘 要:脫細胞角膜基質作為組織工程角膜的研究新熱點,不僅保持了天然角膜的結構特征和力學性能,且含有人工合成支架所不具備的細胞生長因子等,為種子細胞生長提供了理想的環境,同時也去除了組織中可能引發免疫排斥反應的細胞成分。本文對最近幾年異種脫細胞角膜基質的制備方法進行綜述,并指出了各種方法的優缺點。

關鍵詞:脫細胞角膜基質 組織工程 制備方法

中圖分類號:R32 文獻標識碼:A 文章編號:1672-3791(2013)04(a)-0226-01

異種脫細胞角膜基質作為組織工程角膜的支架具有免疫原性低、含多種細胞因子、機械強度好、可塑性好等優點。近年來,實驗過程中采用兔、牛、犬、豬等多種動物作為角膜供體,并獲得了不同程度的移植效果。理想的脫細胞方法的目的是完全去除組織中的細胞成分及核物質,從而減少移植受者免疫反應,同時保持細胞外基質(ECM)的結構和功能蛋白,維持角膜的透明度,并且能夠支持角膜細胞生長。現就脫細胞角膜基質的制備方法及各方法的優缺點進行綜述。

1 物理制備方法

1.1 反復凍融法

反復凍融法是利用低溫下細胞內部會產生冰晶,剩余的細胞液由于鹽濃度增高而引起溶脹,再室溫融解,反復多次即可使細胞結構破碎,從而使細胞內物質釋放出來。單純使用該方法,脫細胞效果并不理想,因此常聯合其它脫細胞方法。

1.2 高靜壓技術

高靜壓技術(HHP)的主要機理是使組織中細胞的細胞膜損傷,并影響細胞內酶活力及細胞內營養物質和廢棄物的運輸,從而使細胞裂解。利用高靜壓技術對豬角膜進行脫細胞處理,能夠有效去除細胞,并且保持了膠原纖維的排列結構,同時減少糖胺聚糖(GAG)的損失。此外,HHP技術在處理過程中不添加去污劑,沒有細胞毒性,脫細胞的同時去除了角膜中的細菌和病毒。然而這項技術需要昂貴的專業設備,制備成本高,因而限制了其引用和發展。

2 化學制備方法

2.1 去污劑處理法

離子型去污劑能夠破壞蛋白與蛋白之間的連接結構,從而使得蛋白質發生變性作用。最常用的離子型去污劑是十二烷基磺酸鈉(SDS),其作為生物膜的溶解劑,能夠有效去除組織中的細胞成分。Du等[1]研究表明0.5%~1%SDS能夠有效去除細胞,且不破壞ECM的天然組織結構。然而,SDS處理會降低GAG的總含量,損傷基底膜,并且造成膠原結構松散。

非離子型去污劑不破壞蛋白與蛋白之間的連接,而只是破壞脂質與脂質之間和脂質與蛋白之間的結構,且作用溫和,已被廣泛應用于脫細胞研究中。其中最常用的非離子型去污劑是TritonX-100。陳蘋等[2]研究發現1%TritonX-100能夠有效去除角膜基質中的細胞成分,并且能夠維持膠原纖維結構。但也有研究報道濃度為5%的TritonX-100對角膜的脫細胞效果不佳[1]。

兩性離子型去污劑能夠增溶膜蛋白并破壞蛋白-蛋白之間的相互作用,具有離子型及非離子型去污劑的雙重特性。其中最常用的兩性離子去污劑為CHAPS。但Du等[1]利用該去污劑處理豬角膜,發現去除角膜細胞的效果較差,角膜基質中常會殘留細胞碎片。

2.2 酸、堿處理法

酸、堿通常與去污劑和醇類結合使用,能夠引起或是促進生物分子的水解。Ponce Márquez等[3]使用過氧乙酸聯合乙醇對牛角膜進行脫細胞處理,但是脫細胞效果并不理想,組織邊緣仍有細胞殘留,說明該方法仍有待改進。

2.3 高滲溶液、低滲溶液處理法

利用高滲和低滲溶液能夠使細胞內的滲透壓發生變化,如使用去離子水、低離子強度的溶液導致組織的細胞松解和細胞膜的破裂,從而達到脫細胞的目的。該方法操作簡便,對組織的形態結構破壞不明顯,但是脫細胞效果不佳,且所需時間較長,故很少單獨應用。

3 酶消化法

酶消化法主要用于對去污劑未去除干凈的細胞成分進行進一步清除,主要包括蛋白酶和核酸酶。最常用的蛋白酶主要有胰蛋白酶和中性蛋白酶。胰蛋白酶能夠溶解變性的蛋白質,從而破壞細胞的結構。在多項研究中,胰蛋白酶被用于分散角膜的ECM結構,以利于之后的脫細胞試劑滲透進入角膜內部。此外,磷脂酶A2能夠水解細胞的磷脂成分,因而也被應用于脫細胞處理,并取得了良好的脫細胞效果,但是角膜處理后GAG含量會顯著降低。

4 血清處理法

血清中含有核酸酶,能夠降解DNA和RNA。Shao等[4]首先提出單純用人血清對豬角膜進行脫細胞處理。之后,其改進了方法,將人血清處理與電泳法相結合。先將豬角膜在無菌的100%人血清中孵育1天,之后對角膜進行電泳。該方法能夠完全去除細胞,并且保持了角膜的透明度。

5 結語

脫細胞角膜基質是構建組織工程角膜理想的生物材料,具有優良的生物相容性和組織相容性。要獲得比較理想的脫細胞效果,同時最大程度地保留原有組織結構,通常需要多種脫細胞方法聯合應用。建議應用最溫和的方法進行處理,從而將脫細胞過程對ECM的結構、功能產生的影響降低到最小程度。一般先在高滲或低滲溶液浸泡,隨后用去污劑處理,從而獲得理想的脫細胞角膜基質。

參考文獻

[1]Du L,Wu X.Development and characterization of a full-thickness acellular porcine cornea matrix for tissue engineering[J].Artif Organs,2011,35(7):691-705.

[2]陳蘋,傅瑤,范先群.豬角膜脫細胞基質的制備及生物相容性的實驗研究[J]. 眼科研究,2006,24(4):367-370.

[3]Ponce Márquez S,Martínez VS,McIntosh Ambrose W,et al. Decellularization of bovine corneas for tissue engineering applications[J].Acta Biomater.2009,5:1839-1847.

[4]Shao Y,Quyang L,Zhou Y,et al.Preparation and physical properties of a novel biocompatible porcine corneal acellularized matrix[J].In Vitro Cell Dev Biol Anim,2010,46(7):600-605.

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